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細胞支原體污染的熒光檢測方法

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DNA熒光染色法:

1.原理:利用熒光染劑(bisbenzimide, Hoechst 33258)偵測支原體污染,。此染劑會結合到DNA之Adenosine-Thymidine (A-T) rich區(qū)域,因為支原體之DNA中A-T含量占多數(shù)(55~80%),,所以可將其染色而偵測,。被支原體污染之細胞經(jīng)染色后,在細胞核外與細胞周圍可看到許多大小均一之熒光小點,,即為支原體之DNA,,證明有支原體之污染,。

2.測試步驟用間接步驟,將待測細胞懸浮液或細胞培養(yǎng) 液接種于指示細胞培養(yǎng)液中(indicator cell,,例如Vero cell or 3T6 cell),,然后培養(yǎng)指示細胞再作熒光染色。正負反應對照組亦可以接種于indicator cell內(nèi)作為對照,。

3.待測細胞亦可作直接測試,,但需為吸附型細胞,,培養(yǎng)后直接作熒光染色,。有些細胞易有熒光背景,,而干擾結果判讀,則建議使用接種于指示細胞之步驟,。

4.特點:簡單,、經(jīng)濟與靈敏,廣泛使用,,可作為例行之偵測步驟,??梢詡蓽y不易培養(yǎng)之支原體,,例如M. hyorhinis,,較直接培養(yǎng)法快,約一星期即可知道結果,。

5.缺點:有時仍會有熒光背景,,影響判讀,。

材料:

1.Hanks’ balanced salt solution without NaHCO3 or phenol red (HBSS, GibcoBRL 21250-014:,、bisbenzimide (Hoechst No.33258, Sigma B-2883)、thimerosol (Sigma T-5125),、0.1M citric acid,、02M disodium phosphate、glycerol,、glacial acetic acid、methanol,、strerile H2O,、chamber slide (Nunc 177380)或chamber slide替代物:35 or 60mm sterile plate內(nèi)放置無菌22x22mm蓋玻片:浸于酒精內(nèi),,使用前過火滅菌:,一般吸附型細胞均能吸附在蓋玻片上,。染色后取出蓋玻片,,細胞面朝下放在玻片上觀察。

2.Indicator cells:Vero(African green monkey kidney,ATCC CCL-81 or CCRC 60013) or 3T6(mouse fibroblast, ATCC CCL-96 or CCRC 60070),,細胞須先測試無污染,。αMEM with 10%FBS( medium for Vero cell)

配制試劑:

1.無菌HBSS:配制Hanks’ balanced salt solution,以0.22mm無菌過濾膜過濾滅菌,。勿用高壓蒸汽滅菌,。

2.Hoechst 33258 stock solution(100X):稱取5.0 mg bisbenzimide和10.0 mg thimersol溶于100 ml無菌HBSS,置于棕色瓶中,,室溫下以電磁攪拌器攪拌30分鐘至*溶解后,以1ml分裝至1.5ml小離心管中,,貯存于-20℃,。

3.Hoechst 33258 working reagent:取1 ml Hoechst 33258 stock solution,加入sterile 100 ml HBSS中,,室溫下攪拌45分鐘,置于棕色瓶中并以鋁箔紙包覆,,避免光照,,貯存于4℃,。

4.mounting solution:22.2 ml 0.1 M citric acid和27.8 ml 0.2 M Na2HPO4加入于50 ml glycerol中混合,以1 N NaOH調(diào)整pH至5.5(pH很重要),,貯存于4℃。

5.固定溶液(fixative):冰醋酸與甲醇以1:3之體積比例混合,,使用前才配制,。

步驟:

1.培養(yǎng)Vero細胞: Vero細胞可作長期培養(yǎng)或制作多個冷凍保存管,測試前解凍培養(yǎng),。測試前一周培養(yǎng)Vero細胞。

2.在接種測試樣品前一日,,以trypsin-EDTA溶液處理Vero細胞,制成細胞懸浮液,,以1~2x10^4 cells/ml培養(yǎng)于chamber slide中,每個well加入1ml細胞懸浮液,,于37℃, 5%CO2培養(yǎng),。隔日確定生長良好后,即可接種測試樣品,。

3.接種測試樣品:樣品種類:1ml待測之培養(yǎng)基,1ml待測細胞培養(yǎng) 液(可將細胞稍微刮下:,,0.05~0.1ml冷凍管之細胞懸浮液,。

4.將測試樣品加入chamber slide內(nèi),培養(yǎng)5天后,,進行Hoechst 33258的熒光染色觀察。

5.以Acholeplasma laidlawii ATCC 23206 感染Vero細胞作為正反應對照組:或是已感染支原體之細胞培養(yǎng) 液或冷凍細胞液:,,負反應對照組為Vero cell之新鮮培養(yǎng)基( αMEM +10%FBS),。

6.DNA熒光染色檢測: 
①取出培養(yǎng)5日之Vero細胞,吸除培養(yǎng)液,。于每個well中加入2ml 1:3混合的冰醋酸/甲醇固定液,,靜置10 min后,吸除固定液,。重復上述之步驟,,風干10分鐘。②于每個well中,,加入1ml Hoechst 33258 working solution,,室溫下靜置30min,。③吸掉Hoechst 33258染液后,,以無菌水洗滌3次,風干后加入1滴的mounting solution,,并以蓋玻片覆蓋之,。④以100x-400x熒光顯微鏡觀察。打開水銀光源10 min后,,以UV激發(fā)光束(330~380 nm)之濾光鏡,,觀察細胞核外是否有藍色熒光小點或是絲狀點之熒光物產(chǎn)生,。 
結果判讀:

若有支原體污染,在Vero細胞核外與細胞表面會出現(xiàn)藍色熒光小點或是絲狀點,。其形狀一致,,與細胞殘片染成之不規(guī)則點狀物不同。其熒光可維持數(shù)星期,。
圖例 (A)為negative result : 熒光顯微鏡下,只觀察到Vero細胞的細胞核,,測試樣品沒有支原體的污染,。(為positive result : 在Vero細胞核外與細胞表面會出現(xiàn)藍色熒光小點和絲狀點,表示測試樣品有支原體的污染,。

(A)Negative result 
熒光顯微鏡下,,只觀察到Vero細胞的細胞核,,測試樣品沒有支原體的污染,。

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