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禽流感病毒H5和H7亞型雙重實(shí)時(shí)熒光RT-PCR 試劑盒說(shuō)明書(shū)
閱讀:532 發(fā)布時(shí)間:2018-8-1提 供 商 | 上海雅吉生物科技有限公司 | 資料大小 | 31.2KB |
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禽流感病毒H5和H7亞型雙重實(shí)時(shí)熒光RT-PCR 試劑盒說(shuō)明書(shū)用途 本試劑盒采用實(shí)時(shí)熒光 RT-PCR 方法檢測(cè)禽組織,、分泌物,、排泄物及尿囊液中禽流感病毒 H5
(AIV-H5)和 H7 亞型(AIV-H7)的 RNA,,適用于 AIV-H5、AIV-H7 的檢測(cè),、診斷和流行病學(xué)調(diào)查,。 原理 利用離心柱內(nèi)硅基質(zhì)膜提取樣品總 RNA,在反轉(zhuǎn)錄酶的作用下,,以 RNA 為模板,,以引 物為起點(diǎn)合成與 RNA 模板互補(bǔ)的 cDNA 鏈,。在熱啟動(dòng) Taq 酶的作用下,經(jīng)高溫變性,、中溫退火及 延伸的循環(huán),,使特異 DNA 片段的拷貝數(shù)放大一倍,經(jīng)熒光素標(biāo)記的探針與擴(kuò)增的 DNA 雜交,,利用 Taq 聚合酶的 5'→3'外切活性,,使熒光探針的報(bào)告基團(tuán)與淬滅基團(tuán)分離,發(fā)出特異性熒光信號(hào),,利用 熒光 PCR 儀檢測(cè)特異性熒光信號(hào),,根據(jù)樣品 Ct 值的大小及擴(kuò)增曲線(xiàn)的形成情況判定結(jié)果。
禽流感病毒H5和H7亞型雙重實(shí)時(shí)熒光RT-PCR 試劑盒說(shuō)明書(shū)試劑盒組成
名稱(chēng) | 50 頭份 | 貯藏條件 |
裂解液 | 30 mL |
室溫(A 盒) |
洗液 | 60 mL | |
洗脫液 | 10 mL | |
吸附柱和收集管 | 50 套 | |
陰性對(duì)照 | 1 mL |
-20 ℃(B 盒) |
陽(yáng)性對(duì)照 | 600 µL | |
無(wú)菌無(wú)核酸酶水 | 600 µL | |
RT-PCR 反應(yīng)液 | 600 µL | |
酶混合液 | 25 µL | |
熒光探針 | 140 µL |
保存期 本產(chǎn)品有效期為 12 個(gè)月,。
需要自備的器材
1.儀器:分析天平,、離心機(jī)、熒光 PCR 擴(kuò)增儀,、組織研磨器,、-20 ℃冰箱、可調(diào)移液器(2 µL,、20
µL,、200 µL、1000 µL),。
2.耗材:熒光 PCR 反應(yīng)管,、眼科剪、眼科鑷,、生理鹽水,、1.5 mL 經(jīng)焦碳酸二乙酯(DEPC)水 處理的滅菌離心管、吸頭(10 µL,、200 µL,、1000 µL)、滅菌雙蒸水,。
禽流感病毒H5和H7亞型雙重實(shí)時(shí)熒光RT-PCR 試劑盒說(shuō)明書(shū)使用注意事項(xiàng)
1.所有接觸病料的物品均應(yīng)合理處置,,以免污染實(shí)驗(yàn)室。
2.PCR 整個(gè)試驗(yàn)分配液區(qū),、模板提取區(qū),、擴(kuò)增區(qū)。流程順序?yàn)榕湟簠^(qū)→模板提取區(qū)→擴(kuò)增區(qū),。嚴(yán) 禁器材和試劑倒流,。
3.所有試劑應(yīng)在規(guī)定的溫度儲(chǔ)存。-20℃保存的各試劑管使用前應(yīng)*融化,,8000 rpm 離心 15 s,, 使液體全部沉于管底,,放于冰盒中,吸取液體時(shí)移液器吸頭盡量在液體表面層吸取,,使用后立 即放回-20 ℃,。
4.在 RNA 提取過(guò)程中,避免 RNA 酶污染,,盡量縮短操作時(shí)間,。
5.注意防止試劑盒組分受污染。不要使用超過(guò)有效期限的試劑,,試劑盒之間的成分不要混用。
6.嚴(yán)格遵守操作說(shuō)明可以獲得好的結(jié)果,。操作過(guò)程中移液,、定時(shí)等全部過(guò)程必須。
7.反應(yīng)體系應(yīng)在特定配液區(qū)或者超凈工作臺(tái)中配制,,整個(gè)實(shí)驗(yàn)過(guò)程嚴(yán)格控制污染,。
8.反復(fù)凍融試劑將降低檢測(cè)靈敏度,本試劑盒應(yīng)在 3 次內(nèi)用完,,請(qǐng)嚴(yán)格按試劑盒說(shuō)明書(shū)操作,。
樣品制備
1 樣品采集:病死或撲殺禽,取喉氣管,、腦,、胸肌、心肌和肺等組織,;待檢活禽,,用棉拭子取呼吸 道分泌物或排泄物,置于 50%甘油生理鹽水中,。2~8 ℃保存,,送實(shí)驗(yàn)室檢測(cè)。(要求送檢病料新鮮,, 嚴(yán)禁反復(fù)凍融,。)
2 樣品處理:每份樣品分別處理。
2.1 組織樣品處理:每份組織分別從三個(gè)不同的位置稱(chēng)取樣品約 1g,,用手術(shù)剪剪碎混勻后取 0.02 g 于研磨器中研磨,,加入 1.5 mL 生理鹽水繼續(xù)研磨,待勻漿后轉(zhuǎn)至 1.5 mL 滅菌離心管中,,8000 rpm 離心 2 min,,取上清液 100 µL 于 1.5 mL 滅菌離心管中。
2.2 陽(yáng)性對(duì)照處理:取陽(yáng)性對(duì)照 100 µL,,置 1.5 mL 滅菌離心管中,。
2.3 陰性對(duì)照處理:取陰性對(duì)照 100 µL,,置 1.5 mL 滅菌離心管中。
禽流感病毒H5和H7亞型雙重實(shí)時(shí)熒光RT-PCR 試劑盒說(shuō)明書(shū)操作步驟
1 病毒 RNA 的提取
1.1 取已處理的樣品,、陰性對(duì)照和陽(yáng)性對(duì)照,,分別加入裂解液 600 µL,充分顛倒混勻,,室溫靜置 3~
5 min,。
1.2 將液體吸入吸附柱中(吸附柱要套上收集管,吸取液體時(shí)盡量不要吸到懸浮雜質(zhì),,以免離心時(shí) 堵塞吸附柱),,13000 rpm 離心 30 s。
1.3 棄去收集管中液體,,加入 600 µL 洗液,,13000 rpm 離心 30 s。
1.4 重復(fù)步驟 1.3,。
1.5 棄去收集管中液體,,13000 rpm 空柱離心 2 min,以除去殘留的洗滌液,。
1.6 將吸附柱移入新的 1.5 mL 離心管中,,向柱中央加入洗脫液 50 µL,室溫靜置 1 min,,13000 rpm
離心 30 s,,離心管中液體即為模板 RNA。
2 實(shí)時(shí)熒光 RT-PCR 操作
設(shè)被檢樣品,、陰性對(duì)照和陽(yáng)性對(duì)照總和為 N,,每份總體積 20µL,反應(yīng)體系配制如下
:
試劑 | 體系 |
無(wú)菌無(wú)核酸酶水 | 2.3(N+1)µL |
RT-PCR 反應(yīng)液 | 10(N+1)µL |
酶混合液 | 0.4(N+1)µL |
熒光探針 | 2.3(N+1)µL |
將以上配制的反應(yīng)體系充分混勻后,,分裝每個(gè)反應(yīng)管中各 15 µL,。
分別取 5 µL 模板 RNA,加入相應(yīng)反應(yīng)管中,,混勻并作好標(biāo)記,,其中 AIV-H7 熒光報(bào)告基團(tuán)為 FAM,AIV-H5 為 HEX,,淬滅基團(tuán)均為 None(如果儀器沒(méi)有 HEX 校正過(guò),,可暫時(shí)用 VIC 代替)。在 熒光 PCR 儀上進(jìn)行以下反應(yīng):45 ℃ 15 min,,95 ℃ 1min,;95 ℃ 5 s,60 ℃ 35 s,,在每個(gè)循環(huán)第二步
(60℃ 35s)收集熒光信號(hào),,共 40 個(gè)循環(huán),。
結(jié)果判定
1 結(jié)果分析條件設(shè)定 閾值設(shè)定原則:閾值線(xiàn)設(shè)定于剛好超過(guò)陰性對(duì)照擴(kuò)增曲線(xiàn)的高點(diǎn)。不同儀器可根據(jù)儀器噪音
情況進(jìn)行調(diào)整,。
2 結(jié)果描述及判定
陽(yáng)性對(duì)照 Ct 值≤30 并出現(xiàn)特定的擴(kuò)增曲線(xiàn),,陰性對(duì)照無(wú) Ct 值并且無(wú)特定擴(kuò)增曲線(xiàn),實(shí)驗(yàn)結(jié) 果成立,;被檢樣品若 FAM 熒光信號(hào) Ct 值≤30 并出現(xiàn)特定的擴(kuò)增曲線(xiàn)為 H7 陽(yáng)性,;被檢樣品若 Hex 熒光信號(hào) Ct 值≤30 并出現(xiàn)特定的擴(kuò)增曲線(xiàn)為 H5 陽(yáng)性;被檢樣品 30<Ct<35 并出現(xiàn)特定的擴(kuò)增曲線(xiàn),, 需重新取樣提取 RNA,,擴(kuò)增后進(jìn)行結(jié)果判定,如仍是可疑,,可判定為陽(yáng)性,;被檢樣品 Ct 值≥35 時(shí), 超過(guò)本方法檢測(cè)靈敏度范圍,,判定為陰性;對(duì)于某些未呈現(xiàn) S 型曲線(xiàn),,但本底較高的樣品,,應(yīng)為陰 性。
禽流感病毒H5和H7亞型雙重實(shí)時(shí)熒光RT-PCR 試劑盒說(shuō)明書(shū)