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流式細胞術急性分離小鼠小膠質細胞

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實驗步驟

1. 小鼠用pH值7.4,,0.1M PBS*穿心灌注。
2. 用剪刀去頭,。
3. 剝開頭骨的軟組織,。
4. 除去下頜骨,。
5. 除去頭骨延髓到上頜骨之間的組織。
6. 手術剪刀,,取出頭骨頂部,,順時針方向切割,開始和結束于右后鼓膜鉤,。
7. 舀出大腦,,維持組織的完整性。
8. 立即將腦組織置于預冷的流式細胞術緩沖液中(1%BSA 1mM的EDTA的 pH值7.4 0.1M PBS,,50U/ml DNAseI),。如果計劃標記神經元,應在緩沖液中添加l-谷氨酸以防止在制備過程中的神經細胞死亡,。
9. 用杜蒙5#鑷子從大腦的外表面仔細剝離腦膜(硬腦膜,、蛛網膜和軟腦膜)。
10. 使用手術刀作冠狀切口分離大腦和小腦/腦干,。
11. 使用鑷子分離小腦和腦干,小心剝離出第四腦室腦膜襯砌,。
12. 使用手術刀,,縱向平分,小心剝離出大腦脈絡叢及相關的腦膜組織,。
13. 進一步解剖到所需分析的腦區(qū)(如海馬,,大腦皮層等)。
14. 將腦組織轉移到15MLTenbroeck homogenizer中,,其中含有10毫升冰冷的FACS緩沖液,。
15. 輕柔震蕩3次破碎組織。
16. 粗勻漿,,經過70微米尼龍網狀帶有塑料柱塞的細胞過濾裝置,,每柱2次,產生單細胞懸液,。
17. 離心細胞,4ºC,, 1200 轉/10min,,棄掉上清液,再加上細胞流式細胞儀的緩沖液,。
18. 用Miltenyi AutoMACS除去髓磷脂,,根據指示髓鞘去除珠。
19. 1× 流式細胞儀緩沖液洗細胞,,4ºC,,1100轉/10min,棄掉上清液,。細胞重置在100 UL預冷的,,細胞流式細胞術的緩沖液中再轉至細胞流式細胞儀管中。
20. 把細胞標記上帶有抗CD11b,,CD45的細胞外的小膠質標記物,、可修復的LIVE/DEAD染料或者任何其他所需標記(例如GFAP,NeuN,,CD3e等),,4度避光反應30min。
21. 洗滌細胞2次,,如步驟19所示,。
22. 在100-400uL含1%PFA PBS溶液(0.1M,PH=7.4)中重新懸浮細胞,。4℃避光存儲,。
23. 在流式細胞儀檢測細胞。
24. 首先用LIVE/DEAD設置gate,選擇活細胞,,然后依據脈沖寬度與面積比選擇線性分布細胞,,依據前向散射與側散射比來消除碎屑。然后依據不同細胞類型的相應標記來獲得等效和準確的細胞計數,。


小膠質細胞分離流程示意圖,,如圖1

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