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技術(shù)文章

IHC實驗疑難解析大匯總

閱讀:595          發(fā)布時間:2020-12-28

本周小編將帶來IHC系列培訓(xùn)的,后一講,,IHC實驗中各種常見問題的原因分析和解決方案,。希望通過本次課程,,您可以了解到 IHC 實驗中出現(xiàn)異常情況時您可采取的措施。

一,、切片無染色 

IHC 中可能遇到的一個主要問題是無染色,。出現(xiàn)這一問題的原因主要有三個:

  • 蛋白表達(dá)量低/無表達(dá)

  • 樣本制備不良

  • 試劑/方案問題

1、表達(dá)量低/無表達(dá)

 

  • 了解目標(biāo)蛋白表達(dá)的種屬特異性和組織特異性,,有時候目標(biāo)蛋白在一些常見種屬(如:人)有表達(dá),,并不表示在其他種屬上也有表達(dá)。

解決方案:

  • 在實驗前查詢文獻(xiàn),,確定您待檢測的目標(biāo)種屬和組織的表達(dá)量情況,;;

  • 在實驗方案中添加陽性對照組織樣本,,驗證實驗體系的正確性,;

  • 陽性對照的細(xì)胞系,一些情況下,,可以選擇確定會表達(dá)目標(biāo)蛋白的細(xì)胞系作為陽性對照,;

  • 質(zhì)量優(yōu)良的抗體說明書上會給出建議的陽性對照樣本,可以作為參考,。

圖1,、人體不同組織的表達(dá)分布,來源:

2,、樣本制備不良

  • 固定步驟:過度固定組織或固定時間不夠,;固定時使用福爾馬林和多聚甲醛固定劑可能會遮蔽抗體識別的表位。

解決方案:

  • 不同的抗原修復(fù)方法暴露表位(用 pH 6 或 pH 9 緩沖液熱修復(fù),、酶修復(fù)等),。

  • 如果過度固定,則需要縮短固定時間,。

  • 可能脫蠟不充分

解決方案:

  • 延長脫蠟時間,,且需要使用新鮮二甲苯

 

圖2 ,、不同修復(fù)液對染色效果的影響

3,、試劑/方案問題

  • 一抗問題:

  • 濃度太低:按照說明書上的建議,梯度稀釋抗體后實驗,,選擇合適的濃度,。

  • 孵育時間不夠:嘗試在 4°C 孵育更長時間(例如過夜)。

  • 抗體可能不適用于IHC應(yīng)用,,因為其可能無法識別蛋白質(zhì)的天然(3D)構(gòu)象,。

檢查抗體數(shù)據(jù)表,查看其是否在 IHC 中得到了驗證及其 IHC 的類型(石蠟切片、冰凍切片等),??贵w在免疫細(xì)胞化學(xué)(ICC)或免疫沉淀(IP)中的成功使用暗示了抗體能夠識別蛋白質(zhì)的天然構(gòu)象。

  • 二抗問題:

  • 使用的二抗為抗一抗宿主的抗體(例如,,如果在兔中生產(chǎn)一抗,,則使用抗兔二抗)。檢查一抗的亞型是否被二抗識別,。

  • 用其他蛋白的一抗檢測二抗效果,,確保二抗正常使用。

二,、高背景

免疫組化染色之后的高背景是困擾很多實驗者的常見現(xiàn)象,,如果您遇到類似問題,可以對照下表的分析,,嘗試相應(yīng)的解決方案,。

可能的問題原因

解決方案

沒有封閉或封閉不足

  • 增加封閉時間,考慮更換封閉劑,。如果使用血清,,Abcam 推薦使用二抗種屬來源的正常血清(10%)封閉 1 小時。

  • 試用商業(yè)化封閉緩沖液,。

  • 另一種選擇是嘗試預(yù)吸附二抗,。

  •  

一抗?jié)舛瓤赡苓^高

滴定抗體至濃度,進(jìn)一步稀釋抗體并在 4℃ 孵育(緩慢孵育,,但有針對性地結(jié)合效果),。

 

孵育溫度可能過高

  • 4°C 下孵育切片。

  •  

二抗可能是非特異性結(jié)合

  • 使用不加一抗只加二抗的對照,。

  • 如果您只看到二抗非特異性染色,,請更換二抗,或者使用預(yù)吸附二抗,。

  •  

組織沖洗不充分,仍殘留固定劑

  • 所有步驟之間用 PBS 充分沖洗,。

  •  

內(nèi)源性過氧化物酶具有活性

  • 用酶抑制劑,,使用左旋咪唑 (2 mM) 抑制堿性磷酸酶,或用H2O2(0.3% v/v) 抑制過氧化物酶,。

  •  

檢測系統(tǒng)是熒光顯微鏡,,固定過程引起自發(fā)熒光

  • 福爾馬林/PFA 通常在綠色光譜中出現(xiàn)自發(fā)熒光,因此可試用在紅光譜內(nèi)的熒光基團(tuán),。

  • 如果您有紅外檢測系統(tǒng),,可以使用紅外范圍內(nèi)的熒光基團(tuán)。

  •  

信號擴(kuò)增過多(間接技術(shù))

  • 減少擴(kuò)增孵育時間,稀釋二抗或擴(kuò)增試劑盒試劑,。

  •  

應(yīng)用過多底物(酶檢測)

  • 更大倍數(shù)稀釋底物,,減少底物孵育時間。

  •  

色原與組織樣本中PBS 反應(yīng)(酶檢測)

  • 在與底物孵育前使用 Tris 緩沖液清洗切片,。

  •  

通透破壞細(xì)胞膜并去除膜蛋白(膜蛋白)

  • 更換通透劑(如用 Tween® 20 代替 Triton™ X-100)

  • 使用不含通透劑的緩沖液,。

三、非特異性染色

非特異性染色也是小編在日常工作中被問到頻率較高的問題,,希望下面這些建議一次性解答您的各種疑問,。

  • 一抗/二抗?jié)舛瓤赡苓^高。

    • 嘗試降低抗體濃度和/或縮短孵育期,??梢耘c不表達(dá)靶蛋白的陰性組織進(jìn)行比較。

  • 內(nèi)源性過氧化物酶具有活性,。

    • 用酶抑制劑,,使用左旋咪唑 (2 mM) 抑制堿性磷酸酶,或用 H2O2 (0.3% v/v) 抑制過氧化物酶,。

  • 一抗是抗染色組織來源物種的抗體(例如在小鼠組織樣本上使用小鼠一抗),。當(dāng)應(yīng)用二抗時,其與組織樣本結(jié)合,,因為其為抗該種屬抗體,。

    • 使用的一抗為針對與您組織來源物種不同物種的抗體。

    • 使用商業(yè)化試劑盒(例如,,mouse on mouse 試劑盒:ab127055),。

  • 切片/細(xì)胞已經(jīng)干燥。

    • 將切片/細(xì)胞保持在高濕度下以防變干,。

總結(jié)

您現(xiàn)在應(yīng)該已經(jīng)*了解了 IHC 的常見疑難問題知識,,包括:

1、切片無染色的原因及解決方法,;

2,、遇到高背景染色結(jié)果時的處理方案;

3,、排除非特異性染色時的做法,。

希望您通過這次系列培訓(xùn)了解所有相關(guān)實驗知識,使您可以順利完成所有實驗,。IHC 的培訓(xùn)到這里就結(jié)束了,。請務(wù)必把這些信息保存在安全的地方,以備日后參考,。

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