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技術(shù)文章

雙縮脲法蛋白含量測試盒

閱讀:332          發(fā)布時間:2020-12-1

雙縮脲法蛋白質(zhì)含量測定試劑盒說明書

 微量法 100T/96S

注意:正式測定之前選擇 2-3 個預(yù)期差異大的樣本做預(yù)測定,確保蛋白濃度在 1~

10mg/ml 范圍內(nèi),。

測定意義:

樣品可溶性蛋白質(zhì)含量常常用于酶活性計算,。此外,,可溶性蛋白質(zhì)含量也用于食品等質(zhì)量分

析。

測定原理:

強堿性溶液中,,雙縮脲與 CuSO4 形成紫色絡(luò)合物;紫色絡(luò)合物顏色的深淺與蛋白質(zhì)濃度成

正比,,而與蛋白質(zhì)分子量及氨基酸成分無關(guān),,故可用來測定蛋白質(zhì)含量,。該方法測定范圍為

1~10mg 蛋白質(zhì),,適用于蛋白質(zhì)濃度高的樣品,,尤其是動物材料。

自備儀器和用品:

離心機,、可見分光光度計/酶標(biāo)儀,、微量石英比色皿/96 孔板、移液器和蒸餾水,。

試劑組成和配制:

試劑一:液體×1 瓶,4℃保存,。

標(biāo)準(zhǔn)品:液體×1 瓶,,5 mg/mL,,4℃保存。

樣品中可溶性蛋白質(zhì)提取:

1. 液體樣品:澄清無色液體樣品可以直接測定,。

2. 組織樣品:按照組織質(zhì)量(g):提取液體積(mL)為 1:5~10 的比例(建議稱取約 0.1g

組織,,加入 1mL 提取液(自備,,根據(jù)需要選用酶提取緩沖液或者蒸餾水或者生理鹽水))

冰浴勻漿,,8000g,4℃離心 10min,,取上清,即待測液,。(動物樣品常常需要稀釋)

3. 細(xì)菌、真菌:按照細(xì)胞數(shù)量(104 個):提取液體積(mL)為 500~1000:1 的比例(建

議 500 萬細(xì)胞加入 1mL 提取液),,冰浴超聲波破碎細(xì)胞(功率 300w,超聲 3 秒,,間隔 7

秒,,總時間 3min),;然后 8000g,4℃,,離心 10min,,取上清置于冰上待測。

測定操作:

1. 分光光度計/酶標(biāo)儀預(yù)熱 30 min,調(diào)節(jié)波長到 540 nm,,蒸餾水調(diào)零,。

2. 空白管:取 0.5mL EP 管,加入 40μL 蒸餾水,,200μL 試劑一,,混勻后室溫靜置 15 min,

取 200μL 于微量玻璃比色皿/96 孔板,,540nm 比色,,記為 A 空白管。

3. 標(biāo)準(zhǔn)管:取 0.5mL EP 管,,加入 40μL 標(biāo)準(zhǔn)液,200μL 試劑一,,混勻后室溫靜置 15 min,,

取 200μL 于微量玻璃比色皿/96 孔板,540 nm 比色,,記為 A 標(biāo)準(zhǔn)管,。

4. 測定管:取 0.5mL EP 管,加入 40μL 待測液,,200μL 試劑一,,混勻后室溫靜置 15 min,

取 200μL 于微量玻璃比色皿/96 孔板,,540nm 比色,,記為 A 測定管。

注意:空白管和標(biāo)準(zhǔn)管只需測定一次,。

樣品中蛋白質(zhì)濃度計算公式:

C 待測(mg/mL)= C 標(biāo)準(zhǔn)管×(A 測定管-A 空白管)÷(A 標(biāo)準(zhǔn)管-A 空白管)

 =5×(A 測定管-A 空白管)÷(A 標(biāo)準(zhǔn)管-A 空白管)

注意事項:

1.樣品蛋白濃度須在 1~10mg/ml 范圍內(nèi),,低于 1mg/ml 不能用此法,高于 10mg/ml 須做相

應(yīng)稀釋,。因此測定前用 1~2 個樣做預(yù)實驗,,確保蛋白濃度在 1~10mg/ml 范圍內(nèi)。

2.待測樣品蛋白提取可用生理鹽水,、雙蒸水或不含蛋白的 PBS 提取,。該法受硫酸銨、Tris 緩

沖液干擾,,提取液中應(yīng)不含這些物質(zhì),;否則改用 BCA 蛋白質(zhì)含量測定試劑盒。

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