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雙縮脲法蛋白含量測試盒
閱讀:332 發(fā)布時間:2020-12-1雙縮脲法蛋白質(zhì)含量測定試劑盒說明書
微量法 100T/96S
注意:正式測定之前選擇 2-3 個預(yù)期差異大的樣本做預(yù)測定,確保蛋白濃度在 1~
10mg/ml 范圍內(nèi),。
測定意義:
樣品可溶性蛋白質(zhì)含量常常用于酶活性計算,。此外,,可溶性蛋白質(zhì)含量也用于食品等質(zhì)量分
析。
測定原理:
強堿性溶液中,,雙縮脲與 CuSO4 形成紫色絡(luò)合物;紫色絡(luò)合物顏色的深淺與蛋白質(zhì)濃度成
正比,,而與蛋白質(zhì)分子量及氨基酸成分無關(guān),,故可用來測定蛋白質(zhì)含量,。該方法測定范圍為
1~10mg 蛋白質(zhì),,適用于蛋白質(zhì)濃度高的樣品,,尤其是動物材料。
自備儀器和用品:
離心機,、可見分光光度計/酶標(biāo)儀,、微量石英比色皿/96 孔板、移液器和蒸餾水,。
試劑組成和配制:
試劑一:液體×1 瓶,4℃保存,。
標(biāo)準(zhǔn)品:液體×1 瓶,,5 mg/mL,,4℃保存。
樣品中可溶性蛋白質(zhì)提取:
1. 液體樣品:澄清無色液體樣品可以直接測定,。
2. 組織樣品:按照組織質(zhì)量(g):提取液體積(mL)為 1:5~10 的比例(建議稱取約 0.1g
組織,,加入 1mL 提取液(自備,,根據(jù)需要選用酶提取緩沖液或者蒸餾水或者生理鹽水))
冰浴勻漿,,8000g,4℃離心 10min,,取上清,即待測液,。(動物樣品常常需要稀釋)
3. 細(xì)菌、真菌:按照細(xì)胞數(shù)量(104 個):提取液體積(mL)為 500~1000:1 的比例(建
議 500 萬細(xì)胞加入 1mL 提取液),,冰浴超聲波破碎細(xì)胞(功率 300w,超聲 3 秒,,間隔 7
秒,,總時間 3min),;然后 8000g,4℃,,離心 10min,,取上清置于冰上待測。
測定操作:
1. 分光光度計/酶標(biāo)儀預(yù)熱 30 min,調(diào)節(jié)波長到 540 nm,,蒸餾水調(diào)零,。
2. 空白管:取 0.5mL EP 管,加入 40μL 蒸餾水,,200μL 試劑一,,混勻后室溫靜置 15 min,
取 200μL 于微量玻璃比色皿/96 孔板,,540nm 比色,,記為 A 空白管。
3. 標(biāo)準(zhǔn)管:取 0.5mL EP 管,,加入 40μL 標(biāo)準(zhǔn)液,200μL 試劑一,,混勻后室溫靜置 15 min,,
取 200μL 于微量玻璃比色皿/96 孔板,540 nm 比色,,記為 A 標(biāo)準(zhǔn)管,。
4. 測定管:取 0.5mL EP 管,加入 40μL 待測液,,200μL 試劑一,,混勻后室溫靜置 15 min,
取 200μL 于微量玻璃比色皿/96 孔板,,540nm 比色,,記為 A 測定管。
注意:空白管和標(biāo)準(zhǔn)管只需測定一次,。
樣品中蛋白質(zhì)濃度計算公式:
C 待測(mg/mL)= C 標(biāo)準(zhǔn)管×(A 測定管-A 空白管)÷(A 標(biāo)準(zhǔn)管-A 空白管)
=5×(A 測定管-A 空白管)÷(A 標(biāo)準(zhǔn)管-A 空白管)
注意事項:
1.樣品蛋白濃度須在 1~10mg/ml 范圍內(nèi),,低于 1mg/ml 不能用此法,高于 10mg/ml 須做相
應(yīng)稀釋,。因此測定前用 1~2 個樣做預(yù)實驗,,確保蛋白濃度在 1~10mg/ml 范圍內(nèi)。
2.待測樣品蛋白提取可用生理鹽水,、雙蒸水或不含蛋白的 PBS 提取,。該法受硫酸銨、Tris 緩
沖液干擾,,提取液中應(yīng)不含這些物質(zhì),;否則改用 BCA 蛋白質(zhì)含量測定試劑盒。