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原代培養(yǎng)是直接從生物體獲取細(xì)胞進(jìn)行培養(yǎng),，由于細(xì)胞剛剛從活體組織分離出來，故更接近于生物體內(nèi)的生活狀態(tài),。這一方法可為研究生物體細(xì)胞的生長,、代謝、繁殖提供有力的手段,，同時也為以后傳代培養(yǎng)創(chuàng)造條件,。用的原代培養(yǎng)有組織塊培養(yǎng)和分散細(xì)胞培養(yǎng),。組織塊培養(yǎng)是將剪碎的組織塊直接移植在培養(yǎng)瓶壁上,，加入培養(yǎng)基后進(jìn)行培養(yǎng),。分散細(xì)胞培養(yǎng)則是將組織塊用機械法或化學(xué)法使細(xì)胞分散。從胎兒或新生兒的組織分離到活性好的游離細(xì)胞,，經(jīng)典的方法是用蛋白水解酶(如胰蛋白酶和膠原酶)消化細(xì)胞間的結(jié)合物，或用金屬離子螯合劑(如EDTA)除去細(xì)胞互相粘著所依賴的Ca²⁺，再經(jīng)機械輕度振蕩,，使之成為單細(xì)胞。

孕鼠(胚胎小鼠) 新生1～3天乳鼠

1640培養(yǎng)液 PBS 胰蛋白酶 EDTA混合消化液 乙醇

手術(shù)器械 平皿 培養(yǎng)瓶 吸管 離心管 煤氣燈 燒杯 超凈工作臺 二氧化碳培養(yǎng)箱 倒置顯微鏡

1.  取材
 

用頸椎脫位法使胎大鼠迅速死亡。然后,，把整個動物浸入盛有75％乙醇的燒杯中數(shù)秒鐘消毒,，取出后放在大平皿中攜入超凈臺。用消過毒的剪刀剪開用碘酒和乙醇再次消毒后的皮膚,，剖腹取出肝臟或腎臟,，置于無菌平皿中。

2.  切割
 

用滅菌的PBS 液將取出的臟器清洗三次,，然后用眼科手術(shù)剪刀仔細(xì)將組織反復(fù)剪碎,，直到成1 mm³ 左右的小塊，再用PBS 清洗,，洗到組織塊發(fā)白為止,。移入無菌離心管中，靜置數(shù)分鐘,，使組織塊自然沉淀到管底,，棄去上清。

3.  消化,、接種培養(yǎng)
 

吸取0.25％胰蛋白酶一0.02％EDTA 混合消化液1 ml,，加入離心管中，與組織塊混勻后,，加上管口塞子,，37 ℃水浴中消化8～10 分鐘，每隔幾分鐘搖動一下試管,，使組織與消化液充分接觸,，靜止，吸去上清,，向離心管中加入5～10 ml 含10％小牛血清的1640 培養(yǎng)基,，用吸管吹打混勻，移入二個培養(yǎng)瓶中,，置于二氧化碳培養(yǎng)箱中培養(yǎng),。

1. 嚴(yán)格進(jìn)行動物皮膚消毒．使用三套器械取材,。新生動物皮膚先用2％碘酊液消毒，成年鼠先用3％～5％碘酊液消毒后用75％乙醇消毒,。

2. 嚴(yán)格進(jìn)行無菌操作,，防止細(xì)菌、真菌,、支原體污染,，避免化學(xué)物質(zhì)污染。

3. 吸取液體前,，瓶口和吸管進(jìn)行火焰消毒,；經(jīng)火焰消毒后的吸管一定要用Hank’S液冷卻。防止?fàn)C傷,、燙死細(xì)胞,。吸取液體時，避免瓶口和吸管接觸碰撞,。

4. 離心管入臺前,，管口、管壁應(yīng)消毒,。