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技術(shù)文章

噬菌體的檢查及效價(jià)測(cè)定

閱讀:546          發(fā)布時(shí)間:2018-8-20

1,、目的:
1.1 了解噬菌體效價(jià)的含義及其測(cè)定原理,。
1.2 學(xué)會(huì)檢查噬菌體的方法,。
1.3 掌握用雙層瓊脂平板法測(cè)定噬菌體效價(jià)的操作技能,。
2、原理:
噬菌體是一類專性寄生于細(xì)菌和放線菌等微生物的病毒,,其個(gè)體形態(tài)極其微小,,用常規(guī)微生物計(jì)數(shù)法無法測(cè)得其數(shù)量。當(dāng)烈性噬菌體侵染細(xì)菌后會(huì)迅速引起敏感細(xì)菌 裂解,釋放出大量子代噬菌體,,然后它們?cè)贁U(kuò)散和侵染周圍細(xì)胞,,終使含有敏感菌的懸液由混濁逐漸變清,或在含有敏感細(xì)菌的平板上出現(xiàn)肉眼可見的空斑──噬 菌斑,。了解噬菌體的特性,,快速檢查、分離,,并進(jìn)行效價(jià)測(cè)定,,對(duì)在生產(chǎn)和科研工作中防止噬菌體的污染具有重要作用。
檢樣可以是發(fā)酵液,、空氣,、污水、土壤等(至于無法采樣而需檢查的對(duì)象,,可以用無菌水浸濕的棉花涂拭表面作為檢查樣品),。為了易于分離可先經(jīng)增殖培養(yǎng),使樣品中的噬菌體數(shù)量增加,。
采用生物測(cè)定法進(jìn)行噬菌體檢查,,約需12h左右,因而不能及時(shí)判斷是否有噬菌體污染,。通過快速檢查可大致確定是否有噬菌體污染,,以采取必要的防治措施。根 據(jù)正常發(fā)酵(培養(yǎng))液離心后菌體沉淀,,上清液蛋白含量很少,,加熱后仍然清亮;而侵染有噬菌體的發(fā)酵(培養(yǎng))液經(jīng)離心后其上清液中因含有自裂解菌中逸出的活 性蛋白,,加熱后發(fā)生蛋白質(zhì)變性,,因而在光線照射下出現(xiàn)丁達(dá)爾效應(yīng)而不清亮。此法簡(jiǎn)單,、快速,,對(duì)發(fā)酵液污染噬菌體的判斷亦較準(zhǔn)確。但不適于溶源性細(xì)菌及溫合 噬菌體的診斷,,對(duì)侵染噬菌體較少的一級(jí)種子培養(yǎng)液也往往不適用,。
噬菌體的效價(jià)即1mL樣品中所含侵染性噬菌體的粒子數(shù)。效價(jià)的測(cè)定一般采用雙層瓊脂平板法,。由于在含有特異宿主細(xì)菌的瓊脂平板上,,一般一個(gè)噬菌體產(chǎn)生一個(gè) 噬菌斑,故可根據(jù)一定體積的噬菌體培養(yǎng)液所出現(xiàn)的噬菌斑數(shù),,計(jì)算出噬菌體的效價(jià),。此法所形成的噬菌斑的形態(tài)、大小較一致,且清晰度高,,故計(jì)數(shù)比較準(zhǔn)確,因 而被廣泛應(yīng)用,。
3,、材料:
3.1菌種:
敏感指示菌(大腸桿菌)、大腸桿菌噬菌體(從陰溝或糞池污水中分離),。
3.2培養(yǎng)基:
二倍肉膏蛋白胨培養(yǎng)液,,上層肉膏蛋白胨半固體瓊脂培養(yǎng)基(含瓊脂0.7%,試管分裝,,每管5mL),,下層肉膏蛋白胨固體瓊脂培養(yǎng)基(含瓊脂2%),1%蛋白胨水培養(yǎng)基,。
3.3儀器和器具:
無菌的試管,、培養(yǎng)皿、三角瓶,、移液管(1,、5mL),恒溫水浴鍋,,離心機(jī),、721分光光度計(jì)等。
4,、流程:
4.1噬菌體的檢查
4.2噬菌體效價(jià)的測(cè)定
5,、方法:
5.1 噬菌體的檢查:
5.1.1 樣品采集
將2~3g土樣或5mL水樣(如陰溝污水)放入滅菌三角瓶中,加入對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期的敏感指示菌(大腸桿菌)菌液3~5mL,,再加20mL二倍肉湯蛋白胨培養(yǎng)液,。
5.1.2 增殖培養(yǎng)
30℃振蕩培養(yǎng)12~18h, 使噬菌體增殖。
5.1.3 離心分離
將上述培養(yǎng)液以3000rpm離心15~20min, 取上清液,,用pH7.0,,1%蛋白胨水稀釋至10-2~10-3,用于噬菌體檢查及效價(jià)測(cè)定,。
5.1.4 生物測(cè)定法
5.1.4.1雙層瓊脂平板法
5.1.4.1.1 倒下層瓊脂
融化下層培養(yǎng)基,,倒平板(約10mL/皿)待用。
5.1.4.1.2倒上層瓊脂
融化上層培養(yǎng)基,,待融化的上層培養(yǎng)基冷卻至50℃左右時(shí),,每管中加入敏感指示菌 (大腸桿菌) 菌液0.2mL,待檢樣品液或上述噬菌體增殖液0.2~0.5mL,,混合后立即倒入上層平板鋪平,。
5.1.4.1.3恒溫培養(yǎng)
30℃恒溫培養(yǎng)6~12h觀察結(jié)果。
5.1.4.1.4 觀察結(jié)果
如有噬菌體,則在雙層培養(yǎng)基的上層出現(xiàn)透亮無菌圓形空斑──%26not;%26not;%26not;%26not;噬菌斑,。
5.1.4.2 單層瓊脂平板法
省略下層培養(yǎng)基,,將上層培養(yǎng)基的瓊脂量增加至2%,融化后冷卻至45℃左右,,如同上法加入指示菌和檢樣,,混合后迅速倒平板。30℃恒溫培養(yǎng)6~16h后觀察結(jié)果,。
5.1.5 離心分離加熱法(快速檢查)
取大腸桿菌正常培養(yǎng)液和侵染有噬菌體的異常大腸桿菌培養(yǎng)液,,4000rpm離心20min,分別取兩組發(fā)酵液的上清液(A1),,一部分于721分光光度計(jì)上測(cè)定OD650光密度值,,另外各取5mL上清液于試管中,置水浴中煮沸2min(A2),,檢測(cè)A2溶液OD650光密度值,,記錄結(jié)果。
5.2 噬菌體效價(jià)的測(cè)定:
5.2.1 倒平板
將融化后冷卻到45℃左右的下層肉膏蛋白胨固體培養(yǎng)基傾倒于11個(gè)無菌培養(yǎng)皿中,,每皿約傾注10mL培養(yǎng)基,,平放,待冷凝后在培養(yǎng)皿底部注明噬菌體稀釋度,。
5.2.2 稀釋噬菌體
按10倍稀釋法,,吸取0.5mL大腸桿菌噬菌體,注入一支裝有4.5mL1%蛋白胨水的試管中,,即稀釋到10-1,,依次稀釋到10-6稀釋度。
5.3 噬菌體與菌液混合:
將11支滅菌空試管分別標(biāo)記10-4,、10-5,、10-6和對(duì)照。分別從10-4,、10-5和10-6噬菌體稀釋液中吸取0.1mL于上述編號(hào)的無菌試管 中,,每個(gè)稀釋度平行做三個(gè)管,在另外兩支對(duì)照管中加0.1mL無菌水,,并分別于各管中加入0.2mL大腸桿菌菌懸液,,振蕩試管使菌液與噬菌體液混合均勻, 置37℃水浴中保溫5min,,讓噬菌體粒子充分吸附并侵入菌體細(xì)胞,。
5.4 接種上層平板:
將11支融化并保溫于45℃的上層肉膏蛋白胨半固體瓊脂培養(yǎng)基5mL分別加入到含有噬菌體和敏感菌液的混合管中,迅速搓勻,,立即倒入相應(yīng)編號(hào)的底層培養(yǎng)基平板表面,,邊倒入邊搖動(dòng)平板使其迅速地鋪展表面,。水平靜置,凝固后置37℃培養(yǎng),。
5.5 觀察并計(jì)數(shù):
觀察平板中的噬菌斑,,并將結(jié)果記錄于 計(jì)算公式:N=Y/V%26#8226;X
(N:效價(jià)值,Y:平均噬菌斑數(shù)/皿,,V:取樣量,,X:稀釋度)
例如:當(dāng)稀釋度為10-6時(shí),取樣量為0.1 mL/皿,,同一稀釋度中3個(gè)平板上的噬菌斑的平均值為186個(gè),則該樣品的效價(jià)為:N=186/0.1%26#215;10-6=1.86%26#215;109,。
6,、結(jié)果:
6.1、噬菌體檢查
6.1.1離心分離加熱法
處理方法OD650光密度值
正常發(fā)酵液(對(duì)照) 異常發(fā)酵液(試驗(yàn))
離心上清液(A1)
離心上清液加熱煮沸后(A2)
A2/A1
6.1.2 繪出平板上的噬菌斑檢測(cè)結(jié)果,,指出噬菌斑和宿主細(xì)菌,。
6.2、噬菌體效價(jià)測(cè)定
6.2.1 平板上噬菌斑數(shù)目
噬菌體稀釋度10-4,、10-5,、10-6 對(duì)照
噬菌斑數(shù)(個(gè))/皿
平均每皿噬菌斑數(shù)目
6.2.2 計(jì)算噬菌體效價(jià)(即噬菌斑形成單位pfu, plague-forming unit).

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