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技術(shù)文章

理性闡述qPCR實驗的Ct值的合理范圍

閱讀:986          發(fā)布時間:2018-7-16

理性闡述qPCR實驗的Ct值的合理范圍。(附Ct值過大或過小的解決方法)

 

Ct值是什么,?

Ct值具有什么樣的作用,?

Ct值的正常范圍是多少?

Ct值太大或者太小的原因,?

 

Ct值是熒光定量PCR重要的結(jié)果呈現(xiàn)形式,。它被用于計算基因表達量差異或者基因拷貝數(shù)。那么熒光定量的Ct值多大可被認為是合理,?如何保證Ct值的有效范圍呢?今天就讓小編來為大家解答這個問題,。

Ct值是什么,?

qPCR擴增過程中,擴增產(chǎn)物的熒光信號達到設定的熒光閾值時的所對應的擴增循環(huán)數(shù)(Cycle Threshold),。C代表Cycle,,T代表Threshold。簡單講,,Ct值就是qPCR中起始模板擴增達到一定產(chǎn)物量時,,所對應的循環(huán)數(shù)。所謂“一定產(chǎn)物量”后續(xù)作進一步解釋,。

Ct值有什么作用,?

1.指數(shù)擴增、模板量與Ct值的關(guān)系

理想情況下,,qPCR中的基因經(jīng)過一定的循環(huán)數(shù)被指數(shù)擴增而積累,,擴增循環(huán)數(shù)和產(chǎn)物量之間的關(guān)系是:擴增產(chǎn)物量=起始模板量×(1+En)循環(huán)個數(shù)。然而qPCR反應并不是一直處于理想情況下,,當擴增產(chǎn)物量達到“一定產(chǎn)物量”時,,此時循環(huán)個數(shù)為Ct值,處于指數(shù)擴增時期,。Ct值與起始模板量的關(guān)系:模板的Ct值與該模板的錨點起始拷貝數(shù)的對數(shù)存在線性關(guān)系,。起始模板量濃度越高,Ct值越??;起始模板量濃度越低,Ct值越大,。

 

2.擴增曲線,、熒光閾值與一定產(chǎn)物量

qPCR擴增產(chǎn)物量是以熒光信號的形式直接呈現(xiàn),,也就是擴增曲線。在PCR早期,,擴增處于理想情況下,,循環(huán)數(shù)較少,產(chǎn)物積累少,,產(chǎn)生熒光的水平不能與熒光本底背景明顯地區(qū)別,,之后熒光的產(chǎn)生增加進入指數(shù)期??梢栽?/span>PCR反應剛處于指數(shù)期的某一點上來檢測PCR產(chǎn)物的量,,以此作為“一定產(chǎn)物量”,并且由此來推斷模板初的含量,。因此,,一定產(chǎn)物量對應的熒光信號強度,也就是熒光閾值,。

PCR的后期,,擴增曲線不再呈現(xiàn)指數(shù)擴增,進入線性期和平臺期,。

 

3.Ct值的重現(xiàn)性

PCR循環(huán)在到達Ct值所在的循環(huán)數(shù)時,,剛剛進入真正的指數(shù)擴增期,此時微小誤差尚未放大,,因此Ct值的重現(xiàn)性*,,即同一模板不同時間擴增或同一時間不同管內(nèi)擴增,得到的Ct值是恒定的,。

Ct值的范圍,?

1.擴增效率En

PCR擴增效率是指聚合酶把待擴增基因轉(zhuǎn)變生成擴增子的效率。由1DNA分子轉(zhuǎn)變生成2DNA分子時的擴增效率為100%,。擴增效率常用En表示,。為了方便后續(xù)文章的分析,簡要介紹下影響擴增效率的因素,。

影響因素

解釋

如何判定,?

A.PCR抑制劑

1.模板RNA中可能含有抑制PCR反應的物質(zhì),如蛋白質(zhì)或去污劑等,。

2.反轉(zhuǎn)錄后的cDNA中含有高濃度的模板RNA和反轉(zhuǎn)錄試劑成分,,也可能對后續(xù)PCR存在抑制。

1.可通過測定A260/A280A260/A230比值或RNA電泳,,判斷是否存在污染,。

2.反轉(zhuǎn)錄后cDNA是否按照一定比例進行稀釋,。

B.引物設計不合理

引物不能有效退火

檢查引物是否存在二聚體或發(fā)夾結(jié)構(gòu),、存在錯配,;有時需注意跨內(nèi)含子設計,。

C.反應程序不合適

1.引物不能有效退火,。

2.DNA聚合酶活性未充分釋放,,

3.長期高溫,DNA聚合酶活性下降,。

1.退火溫度高于引物Tm值。

2.預變性時間太短,。

3.反應程序各階段時間過長,。

D.試劑未充分混勻或移液誤差

反應體系中,PCR反應成分的局部濃度過高或不均勻,導致PCR擴增不呈指數(shù)擴增,。

 

E.擴增子長度

擴增子長度太長,,超過300bp,擴增效率低,。

檢查擴增子長度是否在80bp-300bp之間。

F.qPCR試劑的影響

試劑中DNA聚合酶濃度較低或Buffer中離子濃度非優(yōu)化,導致Taq酶活力未達強,。

標準曲線測定引物擴增效率,。

 

2.Ct值的范圍

Ct值的范圍為15-35,。Ct值小于15,,認為擴增在基線期范圍內(nèi),,未達到熒光閾值,。理想情況下,Ct值與模板起始拷貝數(shù)的對數(shù)存在線性關(guān)系,,也就是標準曲線,。通過標準曲線,擴增效率為100%時,,計算出基因單個拷貝數(shù)定量的Ct值在35左右,,若大于35,,理論上模板起始拷貝數(shù)小于1,可認為無意義,。

對于不同的基因Ct范圍,,因起始模板量中基因拷貝數(shù)和擴增效率不同,需做出該基因的標準曲線,,計算出基因的線性檢測范圍,。

 

3.Ct值的影響因素

由擴增循環(huán)數(shù)和產(chǎn)物量之間的關(guān)系:擴增產(chǎn)物量=起始模板量×(1+En)循環(huán)個數(shù),可以看出,,在理想條件下,,起始模板量和En會對Ct值產(chǎn)生影響。模板質(zhì)量或者擴增效率的差異會造成Ct值偏大或過小,。

 

4.Ct值過大或過小

小翊威逼利誘了我公司技術(shù)部的牛牛們,,總結(jié)出Ct值常見的兩類問題的原因和解決方法,以饗讀者,。

問題

可能的原因

解決方法

Ct值過大

1.模板濃度低或存在PCR抑制物

2.擴增效率低

1.提高模板濃度,;或提高RNA或cDNA稀釋比例;或重新制備模板,。

2.降低退火溫度,,或選用二步法擴增;組分和體系充分混勻,;優(yōu)化反應程序,;或嘗試更換試劑。

Ct值過小

1.模板濃度高

2.NTC和NRC存在污染

3.引物設計不合適

1.減少模板RNA量,;或更高比例稀釋cDNA,。

2.重新更換所有試劑,;或使用UDGase防污染試劑,。

3.優(yōu)化程序,避免非特性擴增,。

 

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