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總蛋白和膜蛋白提取方法
閱讀:450 發(fā)布時(shí)間:2018-7-12膜蛋白具有多種功能,在細(xì)胞識(shí)別,、細(xì)胞信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo),、運(yùn)輸?shù)扔兄兄匾慕巧虼艘彩堑乃幬锇悬c(diǎn),。抽提膜蛋白主要是進(jìn)行蛋白組分析:常用的實(shí)驗(yàn)是非變性膠電泳,、酶活分析、SDS-PAGE,、western blot 等,。本文敘述了總蛋白的抽提方法、和膜蛋白的提取方法,。
一,、從新鮮樣品中提取總蛋白(簡(jiǎn)易法)
1. 自配裂解液(pH 8.5-9.0):50 mM Tris-HCl,2 mM EDTA , 100 mM NaCl,,0.5% Triton X-100,,調(diào)pH值至8.5-9.0備用;用前加入100 μg/ml 溶菌酶,1 μl/ml 的蛋白酶抑制劑PMSF,。該裂解液用量為10-50 ml 裂解液/1 g濕菌體,。
2. 將40 ml 菌液在12000 g,4 ℃下離心15分鐘收集菌體,,沉淀用PBS懸浮洗滌2遍,,沉淀加入1 ml裂解液懸浮菌體。
3. 超聲粉碎,,采用300 w,10 s超聲/10 s間隔,,超聲20 min,,反復(fù)凍融超聲3次至菌液變清或者變色。
4. 1000 g離心去掉大碎片,,上清可直接變性后PAGE電泳檢測(cè),,或者用1% SDS溶液透析后凍存。
缺點(diǎn):Western blotting結(jié)果表明,,疏水性跨膜蛋白提取效率有限,。
二、從Trizol裂解液中分離總蛋白
1. Trizol溶解的樣品研磨破碎后,,加分層,,2-8 ℃下10000 g離心15 min,,上層水相用于RNA提取,體積約為總體積的60%,。
2. 用乙醇沉淀中間層和有機(jī)相中的DNA,。每使用1 ml Trizol加入0.3 ml無水乙醇混勻,室溫放置3 min,,2-8 ℃不超過2000 g離心5 min,。
3. 將上清移至新的EP管中,用異丙醇沉淀蛋白質(zhì),。每使用1 ml Trizol加入1.5 ml異丙醇,,室溫放置10 min,2-8 ℃下12000 g離心10 min,,棄上清,。
4. 用含有0.3 M 鹽酸胍的95%乙醇洗滌。每1 ml Trizol加入2 ml洗液,,室溫放置20 min,, 2-8 ℃下7500 g離心5 min,棄上清,,重復(fù)洗滌2次,。后加入2 ml無水乙醇,渦旋后室溫放置20 min,,2-8 ℃下7500 g離心5 min,,棄上清。
5. 冷凍干燥5-10 min,,1%SDS溶液溶解,,反復(fù)吹打,50 ℃溫浴使其*溶解,,2-8 ℃下10000 g離心10 min去除不溶物,。
6. 替代方案:將3中的酚醇上清液移至小分子量透析袋中,在2-8 ℃的1% SDS溶液中透析3次,,1000 g離心10 min去除沉淀,,上清可直接用于蛋白實(shí)驗(yàn)。
三,、從新鮮樣品中提取疏水性膜蛋白(Triton X-114去污劑法)
1. 配制疏水性蛋白提取液(非裂解液):1% Triton X-114,,150 mM NaCl, 10 mM Tris-HCl,1 mM EDTA,,調(diào)pH值至8.0備用,。
2. 菌液于4 ℃條件下15000 g離心15 min收集菌體;用1 ml 含有5 mM MgCl2 的PBS洗滌3次,后于4 ℃條件下15000 g離心15 min收集菌體,。
3. 菌體沉淀加入1 ml冷提取液,,于4 ℃條件下放置2 h,,17000 g離心10 min,去除沉淀取上清,。
4. 將上述上清中的Triton X-114含量增加到2%,,再加入20 mM的CaCl2抑制部分蛋白酶活性,37 ℃條件下放置10 min使其分層,。室溫下1000 g離心10 min使液相和去污相充分分層,。
5. 將液相和去污相分開,分別用10倍體積的冷丙酮在冰上沉淀45 min,。
6. 于4 ℃條件下17000 g離心30 min,,用去離子水洗滌沉淀3次。
7. 將沉淀溶解在1% SDS溶液中,,測(cè)定蛋白濃度,,比較液相和去污相中蛋白提取效率,一般是去污相中疏水性膜蛋白較多,,適于進(jìn)一步蛋白實(shí)驗(yàn),。
8. SDS-PAGE進(jìn)一步分析液相和去污相的蛋白圖譜。