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貼壁細(xì)胞傳代及細(xì)胞凍存的方法

閱讀:1877        發(fā)布時(shí)間:2021/1/7
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對于貼壁細(xì)胞傳代可參考以下方法:

1、棄去培養(yǎng)上清,,用不含鈣,、鎂離子的PBS潤洗細(xì)胞1-2次。


2,、力口 2m丨消化液(0.25%Trypsin-0.53mMEDTA)于培養(yǎng)瓶中,,置于37°C培
養(yǎng)箱中消化1-2分鐘,然后在顯微鏡下觀察細(xì)胞消化情況,,若細(xì)胞大部 分變圓并脫落,,迅速拿回操作臺(tái),輕敲幾下培養(yǎng)瓶后加少量培養(yǎng)基終止消化,。

3,、按6-8ml/瓶補(bǔ)加培養(yǎng)基,輕輕打勻后吸出,,在1000RPM條件下離心4分 鐘,,棄去上清液,補(bǔ)加l-2mL培養(yǎng)液后吹勻。
將細(xì)胞懸液按1: 2到1: 5的比例分到新的含8ml培養(yǎng)基的新皿中或者 瓶中,。

細(xì)胞凍存:待細(xì)胞生長狀態(tài)良好時(shí),,可進(jìn)行細(xì)胞凍存。
下面T25瓶為例:

1,、細(xì)胞凍存時(shí),,棄去培養(yǎng)基后,PBS清洗瓶底1-2次后加入lml胰酶,,細(xì) 胞變圓脫落后,,加入2ml*培養(yǎng)基終止消化,可使用血球計(jì)數(shù)板計(jì)數(shù),。

2,、1000RPM離心5分鐘去掉上清。用血清重懸浮,,加DMSO至終濃度為 10%,。加入DMSO后迅速混勻,按每lml的數(shù)量分配到凍存管中,,注意凍存 管做好標(biāo)識(shí),。本公司按每個(gè)凍存管細(xì)胞數(shù)目大于1X106個(gè)細(xì)胞凍存。

3,、將凍存管置于程序降溫盒中,,放入-80度冰箱,至少2個(gè)小時(shí)以后轉(zhuǎn)入液 氮灌儲(chǔ)存,。記錄凍存管位置以便下次拿取,。

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