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細(xì)胞培養(yǎng)中主要過程說明
1.準(zhǔn)備工作
準(zhǔn)備工作的內(nèi)容包括器皿的清洗,、干燥與消毒,，培養(yǎng)基與其他試劑的配制、分裝及滅菌,，無菌室或超凈臺的清潔與消毒,，培養(yǎng)箱及其他儀器的檢查與調(diào)試等。
2.取材
在無菌環(huán)境下從機體取出某種組織細(xì)胞（視實驗?zāi)康亩ǎ?，?jīng)過一定的處理（如消化分散細(xì)胞,、分離等）后接入培養(yǎng)器血中，這一過程稱為取材,。如是細(xì)胞株的擴大培養(yǎng)則無取材這一過程,。機體取出的組織細(xì)胞的培養(yǎng)稱為原代培養(yǎng),。理論上講各種動物和人體內(nèi)的所有組織都可以用于培養(yǎng),，實際上幼體組織（尤其是胚胎組織）比成年個體的組織容易培養(yǎng)，分化程度低的組織比分化高的容易培養(yǎng),，腫瘤組織比正常組織容易培養(yǎng),。取材后應(yīng)立即處理，盡快培養(yǎng),，因故不能馬上培養(yǎng)時,，可將組織塊切成黃豆般大的小塊，置4℃的培養(yǎng)液中保存,。取組織時應(yīng)嚴(yán)格保持無菌,，同時也要避免接觸其他的有害物質(zhì)。取病理組織和皮膚及消化道上皮細(xì)胞時容易帶菌，為減少污染可用抗菌素處理,。
3.培養(yǎng)
將取得的組織細(xì)胞接入培養(yǎng)瓶或培養(yǎng)板中的過程稱為培養(yǎng),。如系組織塊培養(yǎng)，則直接將組織塊接入培養(yǎng)器皿底部,，幾個小時后組織塊可貼牢在底部,，再加入培養(yǎng)基。如系細(xì)胞培養(yǎng),，一般應(yīng)在接入培養(yǎng)器皿之前進行細(xì)胞計數(shù),，按要求以一定的量（以每毫升細(xì)胞數(shù)表示）接入培養(yǎng)器皿并直接加入培養(yǎng)基。細(xì)胞進入培養(yǎng)器皿后,，立即放入培養(yǎng)箱中,，使細(xì)胞盡早進入生長狀態(tài)。
正在培養(yǎng)中的細(xì)胞應(yīng)每隔一定時間觀察一次,，觀察的內(nèi)容包括細(xì)胞是否生長良好,，形態(tài)是否正常，有無污染,，培養(yǎng)基的PH 是否太酸或太堿（由酚紅指示劑指示）,，此外對培養(yǎng)溫度和CO2 濃度也要定時檢查。
一般原代培養(yǎng)進入培養(yǎng)后有一段潛伏期（數(shù)小時到數(shù)十天不等）,，在潛伏期細(xì)胞一般不分裂,，但可貼壁和游走。過了潛伏期后細(xì)胞進入旺盛的分裂生長期,。細(xì)胞長滿瓶底后要進行傳代培養(yǎng),，將一瓶中的細(xì)胞消化懸浮后分至兩到三瓶繼續(xù)培養(yǎng)。每傳代一次稱為“一代”,。二倍體細(xì)胞一般只能傳幾十代,，而轉(zhuǎn)化細(xì)胞系或細(xì)胞株則可無限地傳代下去。轉(zhuǎn)化細(xì)胞可能具有惡性性質(zhì),，也可能僅有不死性（Immortality）而無惡性,。培養(yǎng)正在生長中的細(xì)胞是進行各種生物醫(yī)學(xué)實驗的良好材料。
4.凍存及復(fù)蘇
為了保存細(xì)胞,，特別是不易獲得的突變型細(xì)胞或細(xì)胞株,，要將細(xì)胞凍存。凍存的溫度一般用液氮的溫度－196℃,，將細(xì)胞收集至凍存管中加入含保護劑（一般為二甲亞砜或甘油）的培養(yǎng)基,，以一定的冷卻速度凍存，終保存于液氮中,。在極低的溫度下,，細(xì)胞保存的時間幾乎是無限的。
復(fù)蘇一般采用快融方法，即從液氮中取出凍存管后,，立即放入37℃水中,，使之在一分鐘內(nèi)迅速融解。然后將細(xì)胞轉(zhuǎn)入培養(yǎng)器皿中進行培養(yǎng),。
凍存過程中保護劑的選用,、細(xì)胞密度、降溫速度及復(fù)蘇時溫度,、融化速度等都對細(xì)胞活力有影響,。