以下是細胞計數(shù)板(以常用的血球計數(shù)板為例)的使用方法和注意事項,,內(nèi)容結(jié)合科研場景,,表述專業(yè)且便于實操:
計數(shù)板:常見類型包括改良 Neubauer 計數(shù)板(規(guī)格:1×1×0.1 mm3,,分 9 個大方格),、一次性塑料計數(shù)板(如 CHET4-SD100-002)。
工具:顯微鏡(配備 10× 物鏡),、微量移液器(10~100 μL),、蓋玻片(專用或 22×22 mm 標準玻片)、細胞懸液,、臺盼藍染色液(如需區(qū)分死活細胞),。
清潔:用無水乙醇或 75% 酒精擦拭計數(shù)板表面,再用無塵紙擦干,,避免油脂或雜質(zhì)影響液體鋪展,。
安裝蓋玻片:將蓋玻片平穩(wěn)覆蓋在計數(shù)板的計數(shù)區(qū)上方,,確保無氣泡且邊緣緊密貼合(通過毛細作用固定)。
混勻樣本:用吸管或移液器反復吹打細胞懸液 3~5 次,,確保細胞均勻分散(避免沉淀導致取樣偏差)。
稀釋(如需):若細胞濃度過高(如 >1×10? cells/mL),,需用培養(yǎng)基或 PBS 按比例稀釋(如 1:10),,使計數(shù)時每個中方格細胞數(shù)控制在 5~50 個(便于統(tǒng)計)。
用微量移液器吸取 10~20 μL 細胞懸液,,沿蓋玻片邊緣緩慢滴加(避免直接滴在計數(shù)區(qū)中央),。
液體通過毛細作用自動鋪展并覆蓋計數(shù)區(qū),,確保無氣泡,、無液滴溢出邊緣(若有氣泡需重新清潔計數(shù)板并加樣),。
低倍鏡定位:先用 10× 物鏡找到計數(shù)板的中央大方格(含 25 個中方格或 16 個中方格,根據(jù)計數(shù)板類型而定),。
高倍鏡計數(shù):切換至 20× 或 40× 物鏡,,按對角線原則選擇 4 個角的中方格 + 中央中方格(共 5 個中方格)進行計數(shù)。
壓線細胞處理:遵循 “計上不計下,,計左不計右" 原則,,避免重復計數(shù)。
死活細胞區(qū)分:若加入臺盼藍,,活細胞透明,死細胞染成藍色,,需分別計數(shù)并計算存活率(存活率 = 活細胞數(shù) / 總細胞數(shù) × 100%),。
避免細胞損傷:吹打懸液時力度適中,,避免劇烈震蕩導致細胞破裂(尤其對貼壁細胞或脆弱細胞)。
加樣量精準:移液器需定期校準,,加樣時保持垂直角度,,避免液體殘留于槍頭或管壁。
溫度控制:細胞懸液和計數(shù)板需保持室溫(20~25℃),,避免溫度差異導致細胞活性變化或液體揮發(fā),。
重復計數(shù):同一懸液制備 2~3 個計數(shù)板樣本,取平均值(若單次結(jié)果偏差 >10%,,需重新實驗),。
適宜濃度范圍:理想計數(shù)濃度為 1×10?~1×10? cells/mL,,濃度過低時建議離心富集(如 500×g 離心 5 分鐘,棄上清后重懸),。
一次性計數(shù)板:開封后立即使用,,避免長時間暴露于空氣中導致灰塵污染。
玻璃計數(shù)板:使用后及時用清水沖洗(勿用硬物刮擦),,晾干后存放于干燥盒中,,避免霉菌滋生。
生物安全:處理感染性樣本(如病毒轉(zhuǎn)染細胞)時,,需在生物安全柜中操作,,計數(shù)板用后需高壓滅菌再丟棄。
記錄計數(shù)日期,、樣本信息,、稀釋倍數(shù)、各中方格細胞數(shù)及死活細胞比例,,便于溯源和誤差分析,。
若結(jié)果異常(如與歷史數(shù)據(jù)偏差 >20%),需排查懸液混勻度,、加樣氣泡,、計數(shù)板清潔度等因素,必要時更換新計數(shù)板,。
問題 | 可能原因 | 解決方法 |
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計數(shù)區(qū)液體未鋪滿 | 蓋玻片未壓實或加樣量不足 | 重新安裝蓋玻片,加樣量增至 20 μL |
細胞重疊嚴重 | 懸液濃度過高 | 增大稀釋倍數(shù)(如從 1:10 調(diào)整為 1:20) |
計數(shù)結(jié)果波動大 | 取樣不均勻或操作手法差異 | 取樣前充分混勻,,培訓標準化加樣流程 |
背景雜質(zhì)干擾 | 計數(shù)板清潔 | 用酒精棉球反復擦拭,,必要時用超聲波清洗 |
常規(guī)細胞計數(shù):適用于懸浮細胞(如 PBMC,、酵母)和消化后的貼壁細胞(如 HEK293,、HeLa)。
高精度需求場景:若需自動化計數(shù)或減少人為誤差,,可選用熒光細胞計數(shù)板(配合熒光顯微鏡)或自動細胞計數(shù)儀(如 TC20,、Countess III)。
通過嚴格遵循上述流程,,可顯著提升細胞計數(shù)的準確性和可重復性,,為細胞培養(yǎng)、轉(zhuǎn)染,、動物實驗等下游操作提供可靠數(shù)據(jù)支持,。