一,、實驗原理

利用熒光素酶與底物結(jié)合發(fā)生化學(xué)發(fā)光反應(yīng)的特點,，把感興趣的基因轉(zhuǎn)錄的調(diào)控元件克隆在螢火蟲熒光素酶基因（firefly luciferase）的上游,，構(gòu)建成熒光素酶報告質(zhì)粒,。然后轉(zhuǎn)染細(xì)胞,，適當(dāng)刺激或處理后裂解細(xì)胞,，測定熒光素酶活性。通過熒光素酶活性的高低判斷性刺前后或不同刺激對感興趣的調(diào)控元件的影響,。

同時,，為了減少內(nèi)在的變化因素對實驗準(zhǔn)確性的影響，將帶有海腎熒光素酶基因（Rinilla luciferase)的質(zhì)粒作為對照質(zhì)粒與報告基因質(zhì)粒共轉(zhuǎn)染細(xì)胞,，提供轉(zhuǎn)錄活力的內(nèi)對照,，使測試結(jié)果不受實驗條件變化的干擾。

二,、實驗材料

1. 實驗器材

2. 試驗主要試劑

三,、實驗操作步驟：

DLA檢測

1. 細(xì)胞培養(yǎng)及細(xì)胞傳代

1. 倒置顯微鏡觀察細(xì)胞，評估細(xì)胞匯合的程度以及確認(rèn)無細(xì)菌和真菌污染,；
2. 移去培養(yǎng)皿（瓶）中的培養(yǎng)液,；
3. 加入相當(dāng)于培養(yǎng)液體積一半的PBS清洗單層細(xì)胞，一般三次即可,；
4. 按1ml/25cm2表面積的量加入0.25%胰酶消化單層細(xì)胞,。搖晃培養(yǎng)皿（瓶）使其胰蛋白酶覆蓋細(xì)胞單層，倒出多余的胰蛋白酶,；
5. 將培養(yǎng)瓶放回培養(yǎng)箱,，放置2-10 min;
6. 用倒置顯微鏡觀察細(xì)胞以確保所有細(xì)胞都分離且漂浮，輕拍培養(yǎng)皿（瓶）的一側(cè)來釋放殘留的貼壁細(xì)胞,；
7. 用少量的含新鮮血清的培養(yǎng)液重懸細(xì)胞以滅活胰蛋白酶,，取出100-200μl用于計數(shù)；
8. 將所需數(shù)量的細(xì)胞移至一個新標(biāo)記好的溫育過培養(yǎng)液的培養(yǎng)皿（瓶）中,；選擇適當(dāng)培養(yǎng)條件培養(yǎng)細(xì)胞系,；
9. 按照細(xì)胞系的生長特性重復(fù)該步驟,，知道細(xì)胞狀態(tài)良好,、無污染，可以鋪板使用,，其余選擇凍存,。

1. 活細(xì)胞計數(shù)

1. 取一瓶傳代的細(xì)胞，待長成單層以后使用,；細(xì)胞懸液的制備方法：用0.25%的胰酶消化,、PBS洗滌后,，加入培養(yǎng)液吹打制成待測細(xì)胞懸液。
2. 蓋好蓋玻片,，取一套血球計數(shù)槽,，制備計數(shù)用的細(xì)胞懸液：用吸管吸適量細(xì)胞懸液到離心管中，加入等體積臺盼藍(lán)染液,，加入染液后就可以在顯微鏡下區(qū)別活細(xì)胞和死細(xì)胞,。若僅是單純的進(jìn)行細(xì)胞計數(shù)，不考慮細(xì)胞的活力,，則可不使用臺盼藍(lán)染色,。
3. 將細(xì)胞懸液滴入計數(shù)板，注意蓋玻片下不要有氣泡,，也不要懸液流入旁邊槽中,。
4. 統(tǒng)計四個大格的細(xì)胞數(shù)，將血球計數(shù)板放于顯微鏡的低倍鏡下觀察,，并移動計數(shù)板,，當(dāng)看到鏡中出現(xiàn)計數(shù)方格后，數(shù)出四角的大格（每格含有16個中格）中沒有被染液染上色的細(xì)胞數(shù)目,。
5. 計算原細(xì)胞懸液的細(xì)胞數(shù),。按照下面公式計算細(xì)胞密度：
6. （細(xì)胞懸液的細(xì)胞數(shù)）/ml = (四個大格子細(xì)胞數(shù)/4）×2×10⁴

1. Dual-Luciferase® Reporter Assay試劑盒檢測步驟

1. 細(xì)胞轉(zhuǎn)染：按照上述實驗分組的情況，采用lipo2000轉(zhuǎn)染試劑盒的方法進(jìn)行質(zhì)粒轉(zhuǎn)染,，轉(zhuǎn)染12小時后更換新鮮培養(yǎng)基,；
2. 樣品裂解：轉(zhuǎn)染72小時后PBS清洗細(xì)胞兩次，每孔加入250ul 1×PLB裂解液,，搖床上裂解細(xì)胞,；
3. 樣品檢測：在96孔黑色板中加入100ul的LAR II試劑，后加入20ul的裂解液后檢測讀數(shù),；
4. 內(nèi)參檢測：10s內(nèi)加入100ul的Stop & Glo底物,，檢測讀數(shù)；
5. 結(jié)果分析：導(dǎo)出數(shù)據(jù)后采用GraphPad prism 5軟件進(jìn)行結(jié)果分析并制圖,；