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Elabscience一步法TUNEL原位細(xì)胞凋亡檢測(cè)試劑盒怎么用?
Elabscience一步法TUNEL原位細(xì)胞凋亡檢測(cè)試劑盒是一款靈敏度高且能快速簡(jiǎn)便的檢測(cè)細(xì)胞凋亡的產(chǎn)品。本試劑盒適用于組織樣本(石蠟切片、冰凍切片)和細(xì)胞樣本(細(xì)胞涂片,、細(xì)胞爬片)的原位凋亡檢測(cè),檢測(cè)結(jié)果可通過熒光顯微鏡直接觀察,。那么你知道Elabscience一步法TUNEL原位細(xì)胞凋亡檢測(cè)試劑盒該怎么用嗎,?讓我們一起來看看吧!
一,、試劑配制
1) 1×蛋白酶K工作液:取1μL Proteinase K (100×) 加入99μLPBS中,,混勻?,F(xiàn)用現(xiàn)配。
2) 1×DNase I Buffer 工作液:按照 9:1 的比例用 ddH2O 將DNase I Buffer (10×) 稀釋待用?,F(xiàn)配現(xiàn)用,。
3) DNase I 工作液(200 U/mL):用 1×DNase I Buffer 工作液,按照 99:1 稀釋比將 DNase I (20 U/μL) 稀釋待用?,F(xiàn)配現(xiàn)用,。
注:DNase I 會(huì)在劇烈混合下變性,建議不要渦旋
DNase I 溶液,。
4) DAPI工作液:取4μLDAPI Reagent(25μg/mL)加入96μL PBS中混勻?,F(xiàn)配現(xiàn)用。
二,、固定與通透
1. 細(xì)胞樣本
1) 細(xì)胞爬片:將細(xì)胞爬片浸入PBS漂洗1次,,濾紙吸干周圍水分,再浸入固定液(自備),,室溫固定 15~20 min 或4°C固定1~2 h,。
細(xì)胞涂片:收集細(xì)胞,加入一定體積的 PBS 重懸細(xì)胞沉淀,,然后加入和PBS等體積的固定液(自備),,室溫固定15~20 min 或 4°C固定1~2 h。600×g 離心 5 min,,PBS重懸,,取25~50μL細(xì)胞懸液涂片在載玻片上晾干。
注:細(xì)胞固定是分析凋亡樣本的重要步驟,。未固定的細(xì)胞可能會(huì)丟失較小的 DNA片段,,導(dǎo)致較低的信號(hào)。
2) 固定好的樣本浸入 PBS 漂洗 3 次,,每次 5 min,。
3) 將樣本浸入通透液(自備)中,37°C 作用 10 min,。
4) 將通透好的樣本浸入 PBS 漂洗 3 次,每次 5 min,。
2. 石蠟切片
1) 用常規(guī)方法將切片脫蠟水化。將切片浸入二甲苯(自備)脫蠟2次,,每次10 min,;無水乙醇(自備)浸泡切片2次,每次5 min,;90%,、80%,、70%的乙醇水溶液(自備)各一次,每次 3 min,。
注:低溫可能影響二甲苯脫蠟效果,。當(dāng)室溫低于 20°C 時(shí),二甲苯脫蠟時(shí)間可延長至 20 min,。
2) 脫蠟好的樣本浸入PBS漂洗3次,,每次5 min。
3) 濾紙吸干切片組織周圍的水分,,每個(gè)樣本上滴加100 μL 1×蛋白酶 K 工作液,,37°C 反應(yīng) 20 min。
注:不同組織或物種的樣本反應(yīng)時(shí)間可能不同,。建議進(jìn)行預(yù)實(shí)驗(yàn),確定反應(yīng)時(shí)間,。
4) 將通透好的樣本浸入 PBS 漂洗3次,,每次5min,。
3. 冰凍切片
1) 取出冰凍切片,平衡至室溫,,再浸入固定液(自備),,室溫(15~25°C)固定 30 min,。
2) 固定好的樣本浸入 PBS 漂洗2次,,每次5 min,。
3) 每個(gè)樣本上滴加100 μL 1×蛋白酶K工作液,,37°C 反應(yīng)10~20 min。
注:不同組織或物種的樣本反應(yīng)時(shí)間可能不同,。建議進(jìn)行預(yù)實(shí)驗(yàn),,確定反應(yīng)時(shí)間。
4) 將通透好的樣本浸入PBS漂洗3次,,每次5 min,。
三,、標(biāo)記
1. 分組設(shè)置
分組 | 樣本選擇 | 特點(diǎn) | 目的 |
陽性對(duì)照 | 任選一張實(shí)驗(yàn)組切片 | 可選做,,DNase I處理切斷 DNA,產(chǎn)生暴露的 3'-OH末端,,作為陽性樣本 | 驗(yàn)證實(shí)驗(yàn)流程和試劑的有效性 |
陰性對(duì)照 | 任選一張實(shí)驗(yàn)組切片 | 可選做,,標(biāo)記工作液中不含 TdT酶 | 排除樣本自發(fā)熒光及樣本和染色試劑的非特異性染色,;調(diào)整曝光強(qiáng)度 |
實(shí)驗(yàn)組 | 待檢測(cè)切片樣本 | 必做,孵育標(biāo)記工作液,,保持實(shí)驗(yàn)檢測(cè)條件的一致性 | 實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)來源 |
陽性對(duì)照
1) 滴加100 μL 1×DNase I Buffer工作液到已通透的樣本上, 室溫平衡5 min,。
2) 用吸水紙去除樣本上多余的液體。加入100 μL稀釋后的DNase I工作液(200 U/mL),,37°C孵育10~30 min,。
3) 樣本浸入 PBS 漂洗3次,每次5 min,。
陰性對(duì)照
1) 滴加 100 μL 1×DNase I Buffer工作液到已通透的樣本上,,室溫平衡 5 min。
2) DNase I Buffer孵育陰性樣本,,37°C 孵育10~30 min,。
3) 樣本浸入PBS漂洗3次,每次 5 min,。
實(shí)驗(yàn)組
1)實(shí)驗(yàn)組通透完成后在PBS中靜置,,等待陽性對(duì)照和陰性
對(duì)照處理后共同進(jìn)行標(biāo)記染色。
2. 標(biāo)記工作液的配制
計(jì)算好樣本量集中配置,,每個(gè)樣本用量按照下表配制,,充分混勻,現(xiàn)用現(xiàn)配,。
組分 | 陽性對(duì)照/實(shí)驗(yàn)組 | 陰性對(duì)照 |
TdT Equilibration Buffer | 35 μL | 40 μL |
Labeling Solution | 10 μL | 10 μL |
TdT Enzyme | 5 μL | 0 μL |
3. 標(biāo)記步驟
1) 每個(gè)樣本滴加100 μL TdT Equilibration Buffer,,37°C 濕盒中平衡 10~30 min。
2) 吸水紙吸除TdT Equilibration Buffer(注意不要干片),。每個(gè)樣本滴加50 μL標(biāo)記工作液,,放入濕盒中37°C避光反應(yīng)60 min。
注:如果信號(hào)強(qiáng)度較弱,,則可延長 DNA 標(biāo)記反應(yīng)的培養(yǎng)時(shí)間,。某些系統(tǒng)可能需要在37°C下反應(yīng)4小時(shí)。
3) 樣本浸入 PBS 漂洗3次,,每次5 min,。
4) 吸水紙吸干水分后滴加DAPI工作液,室溫避光孵育5min,,對(duì)細(xì)胞核進(jìn)行復(fù)染,。
5) 樣本浸入PBS漂洗4次,每次 5 min,。
6) 用吸水紙吸干多余的液體,,用含抗熒光淬滅劑(自備)的封片劑封片。
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