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外周血單個核細胞攻略

閱讀:683      發(fā)布時間:2023-9-25
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外周血單個核細胞(Peripheral Blood Mononuclear Cells,,PBMC)是外周血(即除骨髓以外的血液)中具有單個核的細胞的混合細胞群體,,包括自然殺傷細胞(natural killer cell,NK),、T淋巴細胞(70%-90%),、B淋巴細胞。能夠進一步分離純化,,是免疫細胞的主要來源,。

 

表1 PBMC組分及占比


組分

占比

單核細胞

10-30%

淋巴細胞

70-90%

T淋巴細胞(CD3+)

45-70%

CD4+T淋巴細胞

CD3+T淋巴細胞的25-60%

CD8+T淋巴細胞

CD3+T淋巴細胞的5-30%

B淋巴細胞

5-15%

自然殺傷細胞

5-10%

樹突狀細胞

1-2%

干細胞

0.1-0.2%




 






單核細胞(monocyte)是血液中最大的白細胞,來源于骨髓中的造血干細胞,,并在骨髓中發(fā)育,,當它們從骨髓進入血液時仍然是尚未成熟的細胞,與各種細胞因子一起培養(yǎng),,可定向分化為巨噬細胞或樹突狀細胞等,。注意不要把單個核細胞和單核細胞兩者的概念混淆。


圖1 單核細胞(左)和淋巴細胞(右)

 

PBMC是免疫系統(tǒng)的關鍵組成部分,,作為免疫學,、惡性腫瘤、疫苗研發(fā),、移植治療等方向最基礎的實驗原料被廣泛使用,。分離外周血單個核細胞成為了免疫細胞研究的基礎,外周血單個核細胞比重為1.070左右,,而紅細胞和多核白細胞的比重超過1.080,。這樣利用介于兩者比重之間的溶液做密度梯度離心,,就可得到單個核細胞。常用的是聚蔗糖和泛影酸鈉混合比重為1.070±0.001的溶液,,國內常用泛影葡胺代替泛影酸鈉,。


圖2 PBMC分離提取示意圖

 

PBMC分離提取操作步驟:

 

1)用無菌稀釋液將血樣稀釋2-4倍;
2)在50ml錐底離心管中先加入15-20ml分離液,,然后緩慢加入20-30ml經稀釋的全血或組織細胞懸液至分離液液面之上,。(適當增加分離液的使用量,將有利于提高單個核細胞純度),;
3)室溫400g離心15-30min,,保證轉子速度平穩(wěn)下降;
4)將離心管小心地從離心機中取出,,緩緩地吸去最上層,,避免接觸單個核細胞層;
5)將單個核細胞層緩慢轉移到另一支50ml錐底離心管中,;
6)加入無菌洗滌液并混勻后,,室溫下300g離心10min,小心棄掉上清,;
7)為了去除殘余血小板,可將細胞重懸于30-50ml無菌洗滌液中,,室溫200g離心10-15min,,小心棄掉上清;
8)可選擇地重復第7步,,將會去除絕大部分血小板,;
9)將細胞用緩沖液或培養(yǎng)基重懸后進行檢測、培養(yǎng)等后續(xù)操作,。

 

此法操作得當,,單個核細胞得率可達80%-90%,影響得率最重要的因素是分層液的比重,。



圖3 分離培養(yǎng)的PBMC

 

PBMC激活:

 

PBMC一般需要加細胞因子刺激,,否則很快就會凋亡。推薦使用包被法,。

 

1)六孔板 5μg/mL CD3 800μL(室溫2h 或 4℃過夜),;

2)加入 RPMI-1640培養(yǎng)基(abs9484)+優(yōu)級胎牛血清(abs972)+1μg/mL CD28+100IU/mL IL-2細胞密度建議1-2×106/ml, 刺激2-3d,;

細胞因子濃度,、種類及細胞數量可根據自身實驗目的調整。

 

PBMC凍存:

 

10% DMSO(abs9187)+FBS(abs972)

 

1)制備含20%DMSO的FBS溶液,,置于冰上,。(100%DMSO在冰上會形成冰晶);
2)確保PBMC為單細胞懸液。300×g離心10min,棄上清,;
3)按1-20×106cells/mL的濃度將PBMC重懸于預冷的FBS中,;
4)按1:1的比例將細胞和含20%DMSO的FBS混合??焖賹?mL的細胞懸液轉移到凍存管,;
5)將凍存管立即放入梯度降溫盒中,在-80℃的冰箱中放置過夜后立即轉入液氮,。

 

PBMC離體之后越快冷凍越能保證其活性及功能,。當全血離體一段時間后,再使用Ficoll進行分離,,中性粒細胞會被活化,,從而嚴重影響密度梯度離心得到PBMC的效率,從靜置24h后的模擬運輸環(huán)境中分離得到的PBMC,,其組分中T細胞和NK細胞含量會發(fā)生明顯變化,,對刺激的反應也會弱化。

 

今天的文章就到這里啦,,PBMC還有很多相關實驗,,歡迎大家公主號“愛必信生物"后臺留言,一起探討更多細胞培養(yǎng)問題,。

 

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* 注:文中圖片來自網絡,僅供學習參考用

 


參考文獻


Gebauer B S, Hricik D E, Atallah A, et al. Evolution of the enzyme‐linked immunosorbent spot assay for post‐transplant alloreactivity as a potentially useful immune monitoring tool[J]. American journal of transplantation, 2002, 2(9): 857-866.


 

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