細胞如何做好轉染實驗及提高實驗效率

① 從健康細胞開始

Ⅰ 轉染實驗前，細胞解凍后傳代3–4次,。 這使得細胞從解凍過程中恢復過來,，并恢復正常的生長速度。

Ⅱ 僅使用活性 >90%的細胞——使用臺盼藍染色可輕松測定細胞活性,。

Ⅲ 定期傳代細胞,，切勿讓細胞長到匯合狀態(tài)或過度生長。如果讓細胞長到匯合狀態(tài),，可能會改變細胞的生長速度以及形態(tài),。a. 請在匯合率達到90%之前對細胞進行傳代。我們建議您使用胰酶替代物Cellstripper™試劑(Corning 25-056-CI)使細胞脫壁,。Cellstripper™試劑可于室溫下存儲在通風櫥中,。可通過添加過量的Cellstripper™來跳過PBS洗滌的步驟,，然后吸棄全部液體，僅留可覆蓋瓶子表面的液體,。

b. 傳代條件取決于所用的細胞系,。 部分經驗法則：

對于快速生長的細胞，倍增時間為16小時(如HEK-293),，按1：10的比例分瓶,。

對于生長緩慢的細胞，倍增時間為36小時(如原代細胞),，按1：5的比例分瓶,。

Ⅳ 保留凍存的細胞系，并定期解凍新細胞,。 傳代次數(shù)高(>30–40)時,，細胞的生長速度和形態(tài)會改變。

② 進行實驗之前,，請先規(guī)劃您的實驗,。

務必要熟悉實驗方案、確定所需的材料量,，并在開始實驗前確認所需的一切物品條件均已齊備,。

Ⅰ 開始前,，設計好鋪板路線圖，標注好每次處理或實驗條件,。

Ⅱ 計算所需脂質體和DNA的儲備量,，并確認有足夠的下列材料：TransfectGRO減血清培養(yǎng)基(Corning 40-300-CVR)，Lipofectamine® 2000 或Lipofectamine® LTX試劑,，以及DNA (0.5–1 µg/µL),。

③ 轉染時，請使用DNA,。

Ⅰ 使用無內毒素的試劑盒和實驗方案制備DNA,。

Ⅱ 通過測量OD 260/280值來確定DNA純度，測得的OD值應介于1.7–1.9]之間,。數(shù)值過高或過低均說明有雜質,，不宜用于轉染實驗。

Ⅲ 在無DNA/RNA酶的水或TE中稀釋DNA,。

Ⅳ 制備的工作濃度為0.5–1 µg/µL,。 可用SpeedVac®濃縮儀或透析過濾裝置(例如，Millipore Amicon®超濾管)來濃縮DNA,。

④ 轉染當天,，將細胞鋪板。

Ⅰ 如果在轉染前一天或更早時間鋪板,，轉染效率可能下降,。

Ⅱ 轉染時，細胞密度保持在匯合率為70–90%,。

Ⅲ 轉染時,，細胞密度影響轉染效率。 為了簡化轉染優(yōu)化過程或節(jié)省時間,，我們建議細胞鋪成2種不同的密度,，以確保較高的轉染效率。

Ⅳ 細胞的鋪板和轉染可同時進行,，或者通過反向轉染操作進行,。 反向轉染操作中，使用的細胞是正常/正向轉染的2.5倍以上,。

Ⅴ 轉染復合物可以加到含抗生素和血清的培養(yǎng)基中,，且不會影響轉染效率。