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ATCC細胞培養(yǎng)及外源基因導入的實驗步驟

時間:2017/12/12閱讀:558
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ATCC細胞的傳代培養(yǎng)(*天) 
   1) 顯微鏡觀察母細胞的生長狀態(tài),確定傳代比例,。 
為了獲得較高的轉染效率,,必需保證細胞處于合適的生長密度,因此應根據母細胞的生長密度調整傳代比例,。磷酸鈣轉染的合適細胞密度為50%-70%,,本實驗中使用的293細胞長成致密單層后一般按照1:6傳代即可,。 
   2) 在酒精燈旁打開培養(yǎng)皿蓋,倒去皿中的細胞營養(yǎng)液,,加入2mlHank’s液,,輕輕搖動,將溶液倒出,。 
   3) 消化與分裝,。 
在培養(yǎng)皿中加入1ml消化液(0.53mMEDTA, 0.05%胰蛋白酶液),37°C靜置5分鐘左右,,顯微鏡觀察,,如果細胞變圓且彼此分離表明消化*,此時可加入10ml營養(yǎng)液終止消化,,吹打數次,,使培養(yǎng)皿壁上的細胞全部脫落下來,并分散形成均勻的細胞懸液,。按照傳代的比例補加適當體積的營養(yǎng)液,,吹打混勻后分裝到新的培養(yǎng)皿中。 
在分裝好的細胞培養(yǎng)皿上做好標記,,置于37°C二氧化碳培養(yǎng)箱中培養(yǎng),。 
2. 用磷酸鈣介導的外源質粒轉染法在293細胞中過量表達TNF-R1(第二天) 
   1) 顯微鏡觀察待轉染細胞的生長狀態(tài) 
      a. 觀察細胞是否污染 
      b. 觀察培養(yǎng)液顏色的變化 
      c. 觀察細胞的生長密度 
   2) 轉染 
      a. 用微量移液器在1.5ml離心管中依次加入10μg(1μg /μl, 10μl)質粒DNA(實驗組為TNF-R1的哺乳動物細胞表達載體,對照組為空載體),,350μl超純水,,40μlCaCl2(2.5M)溶液,,混勻,。 
      b. 在另一1.5ml離心管中加入400μl2×HBS,將A液分三次緩慢加入,,每次加入A液后用吹氣泡的方法混勻,。室溫靜置5分鐘。 
      c. 將A,,B混合液均勻地滴加在待轉染的293細胞培養(yǎng)液中,,輕輕晃動使混勻。將培養(yǎng)皿置于37°C二氧化碳培養(yǎng)箱中,。 
3. ATCC細胞的形態(tài)觀察,,“DNA Ladder”的提取及瓊脂糖電泳分析(第三天) 
   1) 顯微鏡觀察過量表達TNF-R1(實驗組)和空載體(對照組)的293細胞形態(tài)上的差異。 
   2) 用10ml玻璃吸管將實驗組和對照組培養(yǎng)皿中的細胞輕輕吹打下來,,收集到15ml離心管中,,2000rpm離心5分鐘,沉淀用1mlPBS重懸,,轉移到1.5ml離心管中,,2000rpm離心3分鐘,,去除上清液,加入200μlPBS(0.2mg/ml 蛋白酶 K),,重懸細胞,,再加入200μlPBS(2%NP40),顛倒混勻,,4°C作用30分鐘,,期間顛倒數次。12,000rpm離心2分鐘,,吸出上清,,加入1ml乙醇,顛倒混勻,,-20°C靜置10分鐘,,12,000rpm離心10分鐘,沉淀溶于50μl水中,,加入RNaseA(10mg/ml),,37°C靜置20分鐘。 
   3) 在DNA溶液中加入10μlDNA上樣緩沖液,,取出50μl進行2%瓊脂糖凝膠電泳,,紫外凝膠成像儀拍照。
100mg    130409-201011    阿莫西林    含量測定
100mg    130410-200706    氨芐西林    含量測定
100mg    130411-200307    新霉胺    雜質檢查
50mg    130412-200902    頭孢哌酮S異構體    系統(tǒng)適應性
100mg    130413-200303    醌式利福平    檢查
50mg    130414-8702    3-甲基利福霉素SV    檢查
50mg    130415-200904    α-苯甘氨酸    雜質檢查
50mg    130416-201006    7-氨基去乙酰氧基頭孢烷酸    雜質檢查
100mg    130417-8701    無味氯霉素A晶型    檢查
ATCC細胞

 

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