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和元李記(上海)生物技術(shù)...

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脂質(zhì)過氧化傳感器檢測原理、使用方法與注意事項

閱讀:430      發(fā)布時間:2024-10-25
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脂質(zhì)過氧化是脂類的氧化降解過程,,其主要由活性氧類(ROS)引發(fā),。脂質(zhì)過氧化傳感器(Lipid Peroxidation Sensor)是通過一種 C11-BODIPY 581/591 試劑的氧化來檢測活細胞中的脂質(zhì)過氧化情況,。 C11 BODIPY 581/591 本質(zhì)上是一種親脂熒光染料,,具有良好的光穩(wěn)定性、低熒光偽影特質(zhì),,能積累在膜內(nèi),。 一旦染料的多不飽和丁間二烯基被氧化,熒光最大發(fā)射波長峰值從約 ~590 nm 偏移至約 ~510 nm,,活細 胞的熒光從紅色變?yōu)榫G色,,但仍維持親脂性,從而反映膜的脂質(zhì)過氧化水平,。這種傳感器通常用于熒光顯 微鏡和流式細胞分析中,,可視化監(jiān)測脂質(zhì) ROS 的生成和動態(tài)變化。

測定原理

LPO在酸性條件下加熱,,產(chǎn)生小分子終產(chǎn)物 MDA,,MDA與TBA,生成紅色產(chǎn)物,,在 535nm有最大吸收峰,。

使用方法

1. 流式細胞分析:

(1) 懸浮細胞:800 g 離心5 min 收集細胞沉淀;隨后PBS 洗滌細胞兩遍,。

(2) 貼壁細胞:棄培養(yǎng)液,,用常溫PBS 或培養(yǎng)液輕洗細胞2 次,隨后胰酶消化,,800g 離心5 min 收集細胞沉淀,,隨后PBS 洗滌細胞兩遍,每個樣本收集1~5 ×105 個細胞,?!咀ⅰ浚翰僮鬟^程中輕柔吹打細胞,消化時間不宜過長,,劇烈吹打或胰酶消化過度會影響實驗結(jié)果,。

(3) 脂質(zhì)過氧化傳感器用于脂質(zhì)過氧化檢測的推薦濃度為終濃度5μM;配制方法:用新鮮空白培養(yǎng)液配制終濃度為5μM 的脂質(zhì)過氧化傳感器染色液待用,,DMSO 含量≤5‰,。【注】:該步操作建議在消化細胞前準備好,,以免細胞消化后久置影響實驗結(jié)果,。

(4) 將事先配置好的脂質(zhì)過氧化染色液加入收集的細胞沉淀中,,推薦體積為500μL,隨后置于37℃孵箱,,染色30min,,期間5-10min 間隔輕彈細胞使其懸浮保證染色更充分。

(5) 染色結(jié)束后,,800 g 離心5 min,,棄上清,隨后用PBS 清洗細胞2 次,,加入200μLPBS 重懸細胞用于流式分析,。

2. 原位成像:

(1) 接種適當密度的細胞于20mm 規(guī)格的蓋玻片上(也可用共聚焦小皿替代),給予實驗藥物處理適當時

(1)間后,,吸去培養(yǎng)液,,用PBS 洗滌細胞一遍;加入500 μL 配制好的脂質(zhì)過氧化染色液,,于37℃染色30min,;配制方法參考流式分析中的染色液配制。

(2) 棄培養(yǎng)液,,PBS 洗滌細胞兩遍后于熒光顯微鏡或激光共聚焦下進行成像檢測,。細胞在染色后應(yīng)在1 h

(2)之內(nèi)完成檢測。

檢測條件

該分子探針在還原狀態(tài)下最佳激發(fā)波長為 581 nm, 發(fā)射為 591nm,;被 Lipid ROS 氧化后最佳激發(fā)波長 為 500 nm,,發(fā)射在 510nm。因此,,在流式分析中檢測通道為 FL1-A,;激光共聚焦檢測:氧化態(tài)激發(fā)波長可 選 488nm(FITC)通道;還原態(tài)激發(fā)波長可選 561 nm(TRITC)通道,。

注意事項

1,、臨用前注意試劑二是否溶解,如未溶解,,可以 70℃-90℃加熱,,并振蕩以促進溶解。

2,、使用前小心離心數(shù)秒取用,,需佩戴手套操作,注意避免與皮膚,、眼睛和黏膜接觸,。

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