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活性氧（ROS）檢測技術(shù)實驗是通過多種方法測量細胞內(nèi)或組織內(nèi)ROS水平的關(guān)鍵手段，其核心原理基于ROS與特定探針的氧化反應(yīng)生成可檢測信號,。以下是詳細的實驗方法及注意事項：

一,、常用檢測方法

1. 熒光探針法（DCFH-DA法）

• 原理：DCFH-DA穿透細胞膜后,，被細胞內(nèi)酯酶水解為無熒光的DCFH，后者被ROS氧化生成綠色熒光的DCF,。熒光強度與ROS水平成正比,。

• 儀器：流式細胞儀、熒光顯微鏡,、熒光分光光度計或熒光酶標儀,。

• 激發(fā)/發(fā)射波長：不同試劑盒參數(shù)略有差異，常見激發(fā)波長488-502 nm,，發(fā)射波長525-530 nm,。

2. 組織及液體樣本檢測

• 組織樣本：使用008 ROS探針（紅色熒光，激發(fā)/發(fā)射波長510/610 nm）,，需優(yōu)先使用新鮮組織,，凍存樣本可能導(dǎo)致ROS損失。

• 液體樣本：采用BBoxiProbe® O11探針（綠色熒光,，激發(fā)/發(fā)射波長488/516 nm）,，適用于細胞培養(yǎng)基等液體環(huán)境。

3. 線粒體特異性檢測

• 使用高內(nèi)涵儀器結(jié)合化合物（如魚藤酮）干預(yù)線粒體功能,，或采用MitoSOX Red探針（紅色熒光）靶向線粒體超氧化物,。

4. 其他方法

• 電子順磁共振（EPR） ：檢測O??、·OH等自由基,，需結(jié)合自旋捕獲技術(shù),。

• 化學(xué)發(fā)光法：利用Lucigenin等探針檢測超氧化物，無需激發(fā)光源,。

二,、實驗步驟（以DCFH-DA法為例）

1. 樣本準備

• 細胞類型：貼壁或懸浮細胞需調(diào)整探針裝載方式。貼壁細胞建議檢測時匯合度達50-70%,。

• 組織樣本：優(yōu)先使用新鮮組織,，凍存樣本需驗證ROS殘留量。

2. 探針裝載

• 濃度：DCFH-DA工作液通常為5-20 μM（按1:250至1:1000稀釋母液）,。

• 孵育條件：37℃避光孵育20-40分鐘,，懸浮細胞需后續(xù)洗滌去除未進入探針。

• 順序調(diào)整：

• 短刺激（<4小時）：先裝載探針,，后處理細胞,。

• 長刺激（>4小時）：先處理細胞，后裝載探針,。

3. 檢測與參數(shù)設(shè)置

• 儀器選擇：根據(jù)樣本量選擇熒光酶標儀（高通量）或共聚焦顯微鏡（亞細胞定位）,。

• 陽性對照：使用Rosup（50-100 mM）驗證實驗有效性。

4. 數(shù)據(jù)分析

• 熒光強度通過軟件（如ImageJ）量化，對比處理組與對照組的差異,。

三,、注意事項

1. 樣本處理

• 避免反復(fù)凍融，尤其是組織樣本,，否則ROS易降解,。

• 檢測前用無血清培養(yǎng)基或PBS清洗細胞，減少背景干擾,。

2. 實驗條件控制

• 溫度：光照實驗需控制溫度在20-29℃，避免溫度波動影響ROS生成,。

• 避光操作：探針及樣本需全程避光,，防止熒光淬滅。

3. 探針優(yōu)化

• 根據(jù)細胞類型調(diào)整探針濃度,，避免濃度過高導(dǎo)致毒性或背景信號,。

• 縮短探針裝載后至檢測的時間（建議<1小時），減少假陽性,。

4. 質(zhì)量控制

• 設(shè)置無探針對照組,、陽性對照組（Rosup）及空白組，排除自發(fā)熒光影響,。

四,、應(yīng)用場景

• 疾病機制研究：如氧化應(yīng)激與神經(jīng)退行性疾病、癌癥的關(guān)系,。

• 藥物評價：通過ROS水平變化評估藥物抗氧化效果,。

• 環(huán)境毒理學(xué)：檢測污染物（如紫外線、化學(xué)物質(zhì)）誘導(dǎo)的ROS累積,。