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考馬斯亮藍(lán)G-250法測(cè)定蛋白質(zhì)含量
一、目的
學(xué)習(xí)和掌握考馬斯亮藍(lán)G-250測(cè)定蛋白質(zhì)含量的原理和方法,。
二,、原理
考馬斯亮藍(lán)G-250(Coomassie brilliant blue G-250)法測(cè)定蛋白質(zhì)含量屬于染料結(jié)合法。考馬斯亮藍(lán)G-250在游離狀態(tài)下呈紅色,,zui大光吸收在465nm;當(dāng)它與蛋白質(zhì)結(jié)合后變?yōu)榍嗌?,該結(jié)合物在595nm波長(zhǎng)下有zui大光吸收,。在一定蛋白質(zhì)濃度范圍內(nèi)(0~1000ug/mL),其光吸收值與蛋白質(zhì)含量成正比,,因此可用于蛋白質(zhì)的定量測(cè)定,。蛋白質(zhì)于考馬斯亮藍(lán)G-250結(jié)合在2min左右的時(shí)間內(nèi)達(dá)到平衡,完成反應(yīng)十分迅速,;其結(jié)合物在室溫下1h內(nèi)保持穩(wěn)定,。該法是1976年由Bradford建立的,試劑配制簡(jiǎn)單,,操作簡(jiǎn)便快捷,,反應(yīng)非常靈敏,可測(cè)定微克級(jí)蛋白質(zhì)的含量,,是一種常用的對(duì)微量蛋白質(zhì)進(jìn)行快速測(cè)定的方法,。
三、實(shí)驗(yàn)用品
(1),、分析天平、臺(tái)式天平,。
(2),、分光光度計(jì)。
(3),、離心機(jī),。
(4)、研缽1套,。
(5),、離心管:10mL×1。
(6),、刻度試管:10mL×1或量筒:10mL×1。
(7),、移液管:5mL×1 , 2mL×1,,1mL×2,0.1mL× 3.
(8),、試管:10mL× 14,,試管架,洗耳球。
3,、試劑
(1),、牛血清白蛋白標(biāo)準(zhǔn)溶液:準(zhǔn)確稱取100mg牛血清白蛋白,溶于100mL蒸餾水中,,即為1000ug/mL的標(biāo)準(zhǔn)蛋白質(zhì)溶液,。
(2)、考馬斯亮藍(lán)G-250:稱取100mg考馬斯亮藍(lán)G-250,,溶于50mL95%的乙醇中,,加入85%(m/V)的磷酸100mL,zui后用蒸餾水定容到1000mL,。此溶液在常溫下可放置一個(gè)月,。
四、操作步驟
1,、標(biāo)準(zhǔn)曲線制作
(1),、0~100ug/mL標(biāo)準(zhǔn)曲線的制作;取6支10mL的試管加入試劑,,配制不同濃度的蛋白質(zhì)標(biāo)準(zhǔn)液,。
另取6支15mL的試管,從上述各試管中分別吸取0.1mL溶液,,加入5mL考馬斯亮藍(lán)G-250,,充分混勻,放置2min后用1cm光徑的比色杯在595nm波長(zhǎng)下比色,,記錄各試管測(cè)定的光密度值并作標(biāo)準(zhǔn)曲線,。
(2)、0~1000ug/mL標(biāo)準(zhǔn)曲線的制作
取6支10mL的試管,,加入試劑,。
其余步驟同操作步驟1,作出蛋白質(zhì)濃度為0~1000ug/mL的標(biāo)準(zhǔn)曲線,。
2,、樣品提取液中蛋白質(zhì)濃度的測(cè)定
(1)、待測(cè)樣品制備
稱取新鮮綠豆芽下胚軸2g放入研缽中,,加2mL蒸餾水研磨成勻漿,,轉(zhuǎn)移到離心管中,再用6mL蒸餾水分次洗滌研缽,,洗滌液收集于同一離心管中,,放置0.5~1b以充分提取,然后在4000r/min離心20min,,棄去沉淀,,上清液轉(zhuǎn)入10mL的刻度試管,,并以蒸餾水定容至刻度,即得待測(cè)樣品提取液,。
(2),、測(cè)定
另取2支10mL的試管,分別吸取樣品提取液0.1mL(至少重復(fù)一次),,加入5mL考馬斯亮藍(lán)G-250試劑,,充分混合,放置2min后用1cm光徑的比色杯在595nm下比色,,記錄各管測(cè)定的光密度值,并通過過標(biāo)準(zhǔn)曲線查得待測(cè)樣品提取液中蛋白質(zhì)的含量X(ug),。以標(biāo)準(zhǔn)曲線1號(hào)試管做空白,。
五、附注
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請(qǐng)輸入密碼
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