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當前位置:上海信帆生物科技有限公司>>實驗代測服務項目>> 免疫熒光實驗
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更新時間:2024-10-22 15:40:37瀏覽次數(shù):1103次
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免疫熒光是一種將抗原、抗體的結合反應與形態(tài)學相結合的方法,。該法把血清學的特異性,、熒光色素的敏感性、顯微鏡檢查法集為一體,,擴大了免疫學診斷的效果,,是近代免疫學的一種重要研究手段??贵w球蛋白標記上熒光色素,,即成為熒光抗體。這是利用某些熒光色素在一定條件下可與抗體分子結合,,但不影響抗體的免疫活性,。用熒光抗體浸染可能含抗原的細胞或組織切片,如有相應抗原存在,,則抗原與標記抗體特異性結合,,形成的免疫復合物固定于細胞上,不容易洗脫,,在熒光顯微鏡下成為發(fā)出熒光的可見物體,,可達到診斷及定位的目的。
將不影響抗原抗體活性的熒光色素標記在抗體(或抗原)上,,與其相應的抗原(或抗體)結合后,,在熒光顯微鏡下呈現(xiàn)一種特異性熒光反應。
免疫熒光細胞化學是根據(jù)抗原抗體反應的原理,,先將已知的抗原或抗體標記上熒光素制成熒光標記物,,再用這種熒光抗體(或抗原)作為分子探針檢查細胞或組織內的相應抗原(或抗體)。在細胞或組織中形成的抗原抗體復合物上含有熒光素,,利用熒光顯微鏡觀察標本,,熒光素受激發(fā)光的照射而發(fā)出明亮的熒光(黃綠色或桔紅色),可以看見熒光所在的細胞或組織,,從而確定抗原或抗體的性質,、定位,以及利用定量技術測定含量,。
三,、實驗流程
免疫熒光單標記方法
免疫熒光單標記是指只標記一種蛋白質分子,方法比較簡單,只要按照染色步驟去做,,通常不存在太多的問題,。但要注意固定液的選擇,固定液選擇的合適與否,,可能會直接影響染色結果,。具體染色方法如下。
1,、所需材料與試劑
a, 培養(yǎng)在蓋玻片或玻璃培養(yǎng)皿中融合程度達到60%-70%的細胞,。
b, 一抗、FITC或TRITC標記的二抗,。
c, 4%多聚甲醛固定液或冷丙酮固定液 (-20℃預冷20 min),。
d, 封閉液。
e, 0.01mol/LPBS緩沖液,。
2,、染色方法
a, 取出培養(yǎng)有細胞的蓋玻片或glass-bottom培養(yǎng)皿,用0.01MPBS洗2-3遍,。
b, 加入0.3%的Tritonx-100, 37℃, 30 rain
c, 加入4%多聚甲醛試問固定30 min或冷丙酮4℃固定10 min,。
d,正常阻斷血清1:20封閉試問20-30 min,,抑制IgG的非特異性結合,。阻斷血清必須選擇與二抗同一種屬的正常血清。
e, 去掉正常血清,,直接加入一抗,,37℃孵育1 h或4℃過夜??贵w以0.01 mo/LPBS稀釋(理想的抗體濃度需經(jīng)試驗而定),。
f, 0.3% TritonX-100洗5 min,0.01 mol/IPBS洗5 min,,0.3% TritonX 5 min,,0.01 M PBS洗5 rain。
g, 加入FITC-二抗或TRITC-二抗,,37℃,,孵育1h。
h, 0.3%TritonX-100洗5rain,,0.01 mol/LPBS洗5min,,0.3% Triton X 5min,0.01mol/LPBS洗5 min,,用濾紙吸干,。
i, 90%甘油(PBS配制)封片。
j, 激光掃描共焦顯微鏡下觀察,或于4℃避光保存,。
免疫熒光雙標記方法
免疫熒光的雙標記是指同時標記細胞內兩種蛋白質分子,,當懷疑某種配體與已知受體結合后可用此方法加以證明。此方法稍微復雜一些,,首先應注意所用的一抗必須是來自不同種屬動物的兩種特異性抗體(例如:A抗體為多克隆抗體,,來自家兔,;B抗體為單克隆抗體,,來自小鼠)。其次,,兩種二抗所帶熒光素的發(fā)射光不應重疊,,且盡量遠離,通??梢赃x擇FITC和TRITC,、Alex488和TRITC、FITC和Cy5,,或Cy3和Cy5等來組合,。通常情況下,染色時兩種一抗可以同時孵育,,然后可以同時孵育兩種二抗,。但當染色結果一種顏色非常弱,而另一種顏色比較強時,,應考慮先孵育顏色較弱的二抗,。其他步驟同免疫熒光單標記。
四,、客戶提供
細胞株或細胞爬片,。(注:細胞爬片不宜太密;細胞必須固定,。)組織切片,,一抗
五、公司提供
實驗步驟,、實驗試劑,、樣品處理、圖片及圖片分析,,熒光顯微鏡或共聚焦顯微鏡拍攝
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