OMG！免疫組化染色呈陰性結(jié)果的原因原來是這樣的,！

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1、抗體濃度和質(zhì)量問題以及抗體來源選擇錯誤,。不知抗體是進(jìn)口的還是國產(chǎn)的工作液,，怎么這么高稀釋度也沒能做出陽性結(jié)果?另外，不是抗體濃度越高就越易出現(xiàn)陽性結(jié)果,，抗原抗體反應(yīng)有前帶和后帶效應(yīng),，必須摸索*濃度。

2,、抗原修復(fù)不全,，對于甲醛固定的組織必須用充分抗原修復(fù)來打開抗原表位，以利于與抗體結(jié)合;建議微波修復(fù)用高火4次*6min試試,。有人做過實驗，這是*的時間和次數(shù),。若不行,，還可高壓修復(fù)。

3,、組織切片本身這種抗原含量低;

4,、血清封閉時間過長。

5,、DAB孵育時間過短,。

6、細(xì)胞通透不全,，抗體未能充分進(jìn)入胞內(nèi)參與反應(yīng),。

7、開始做免疫組化,，我建議你一定要首先做個陽性對照片,，排除抗體等外的方法問題,。

實際解決方案：

1、首先,，排除組織切片內(nèi)的抗原有無丟失及其含量多少,。免疫組化中兩個zui重要的因素是抗原和抗體。(1)抗原有無丟失主要看組織切片的新鮮程度,，一般切片室溫保存超過3-6個月,，可能切片內(nèi)的抗原丟失很嚴(yán)重(有文獻(xiàn)支持)，此時可以通過重新用石蠟塊切片來進(jìn)一步驗證(蠟塊需要低溫保存),。(2)石蠟切片在制作過程中可能因醛基對抗原決定族的封閉,，這需要通過抗原修復(fù)來充分暴露，從而增加抗原抗體結(jié)合反應(yīng),，提高陽性率,，我一般用6min*4次中火微波抗原修復(fù)，用枸櫞酸鈉緩沖液,。(3)組織切片中本身抗原含量的多少?這方面我有教訓(xùn)的,，我做胎鼠睪丸間質(zhì)細(xì)胞鑒定，用1：200一抗效果很好;但我用1：200一抗孵育成年睪丸間質(zhì)細(xì)胞檢測,，幾乎呈陰性,，后來證實是因為兩者抗原含量相差甚遠(yuǎn)，則一抗也要適當(dāng)提高濃度,。

2,、其次，檢查抗體有無選擇錯誤和抗體孵育條件是否不適,。(1)一抗選擇單克隆抗體易出現(xiàn)陰性結(jié)果,，因為靈敏度低但特異性好;一抗的species reactivity中無檢測組織的種屬，這是比較常見的錯誤;一抗選擇rat,，而二抗是抗mouse/rabbit等均有可能出現(xiàn)陰性結(jié)果,。(2)抗體孵育時間過短，容易導(dǎo)致陰性結(jié)果,。一般一抗我建議4度孵育過一夜和37度復(fù)溫45min;二抗我一般37度30min,。我不喜歡參照二抗染色試劑盒說明書。(3)抗體濃度過低,。這是陰性結(jié)果的zui可能原因,。必須提高稀釋度，我一般初次做一種新抗體,，喜歡先用說明書建議的低濃度和高濃度做一次,，然后決定是向高還是低方向摸索。一般先決定二抗的濃度(工作液就好辦了，直接滴加),，重點摸索一抗的zui適濃度,。注意：免疫反應(yīng)中存在前帶和后帶效應(yīng)，這提示不是濃度越高,，陽性率就越高,，反之亦然。(4)重要原因排除之后,，也不要忽視抗體的質(zhì)量：原裝抗體一般比較穩(wěn)定,，效果較好;而進(jìn)口分裝次之;工作液可能要注意質(zhì)量問題。

3,、同時,，DAB的孵育時間可能要適當(dāng)延長，在鏡下觀察,，有時可延長至30min,。但一般3-10min，此時背景也較淺,。否則,，說明抗體濃度不合適。

4,、zui后,，血清封閉時間也可相應(yīng)縮短。一般10-30min,，但這個時間可以調(diào)整,，封閉主要是降低切片的總體背景著色。

5,、此外,，細(xì)胞通透也不可忽視。許多戰(zhàn)友認(rèn)為石蠟切片一般不需細(xì)胞通透,，因為切片時可能已經(jīng)把細(xì)胞切開了,，但對于胞核蛋白，建議還是通透一下,，促進(jìn)抗體等試劑充分進(jìn)入?yún)⑴c反應(yīng)。

6,、以上原因,，都是針對實際中常見原因來進(jìn)行分析的，前提是排除操作者的操作錯誤而引起陰性結(jié)果,，這就需要新手還是要設(shè)置陽性對照以排除方法的問題,。還有抗體稀釋液的PH值過低等其它原因的干擾。

總之,，要想把免疫組化做好,，可能每一個環(huán)節(jié)都很重要,，但也存在主次之分，出現(xiàn)問題了,，需要通過先排除主要的,，再依次排除次要的--這是衡量你對免疫組化原理掌握與否的關(guān)鍵所在。

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