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翌圣生物科技（上海）股份有限公司
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產品簡介
| 供貨周期 | 現貨 | 規(guī)格 | 5ML |
|---|---|---|---|
| 貨號 | 20504ES08 | 應用領域 | 生物產業(yè) |
產品介紹
HisSep Ni-NTA 6FF Chromatography Column, 5ML
His標簽蛋白純化預裝柱,，5ML
產品信息
產品名稱 | 產品編號 | 規(guī)格 | 儲存 | 價格（元） |
HisSep Ni-NTA 6FF Chromatography Column, 5ML（His標簽蛋白純化預裝柱，5ML） | 20504ES08 | 5 mL | 4℃ | 728.00 |
HisSep Ni-NTA 6FF Chromatography Column, 5ML（His標簽蛋白純化預裝柱,，5ML） | 20504ES25 | 5×5 mL | 4℃ | 2938.00 |
產品描述
HisSep Ni-NTA Agarose Resin 6FF以高度交聯的6%瓊脂糖凝膠為基質,，通過化學方法偶聯四配位的氮川三乙酸（NTA）為配體，螯合鎳離子（Ni2+）后,，形成非常穩(wěn)定的八面體結構,，鎳離子處于八面體的中心,，這樣的結構可保護鎳離子免受小分子的進攻，更加穩(wěn)定,，可以耐受一定濃度的還原劑,、變性劑或耦合劑等苛刻條件。此外,，因其基質的耐壓性（該基質可以耐受zui高0.3 MPa的壓力）,，該產品可以用于工業(yè)大規(guī)模蛋白的純化，可在相對較高的流速下,，實現對目的蛋白的純化,。
HisSep Ni-NTA 6FF Chromatography Column是一種以HisSep Ni-NTA Agarose Resin 6FF為填料的中壓預裝柱，該預裝柱具有標準接口,，可以適配商品化的各類中壓色譜系統,，如ÄKTA等，方便客戶用于純化His-tag蛋白,。
產品性質
基質（Matrix） | 高度交聯的6%瓊脂糖凝膠 |
粒徑（Bead size） | 45-165 µm |
載量（Capacity） | >40 mg 6×His-tagged protein/mL基質 |
耐壓（Tolerance Pressuremax） | 0.3 MPa,，3 bar |
儲存緩沖液（Buffer） | 含20%乙醇的1×PBS |
柱子尺寸（Column Size） | 0.7×2.5 cm（1 mL） |
運輸和保存方法
冰袋運輸。4℃保存,。有效期2年,。
注意事項
1）建議純化所用緩沖液和蛋白溶液經0.22 µm或0.45 µm濾膜過濾后上柱使用。
2）為了您的安全和健康,，請穿實驗服并戴一次性手套操作,。
使用方法
（一）純化流程
1 緩沖液的準備
緩沖液使用原理：低咪唑上樣，高咪唑洗脫,，或者高pH上樣,，低pH洗脫。Buffer 在使用前用0.22 µm或0.45 µm濾膜過濾除菌,?？扇苄越M氨酸標簽蛋白純化所需配方詳見附表1。包涵體組氨酸標簽蛋白純化所需緩沖液及配方詳見附表2,。
2 樣品準備
2.1 細菌表達的蛋白（本說明以細菌表達蛋白為例）
1）挑取單菌落到含有適合抗性的LB培養(yǎng)基中,，根據載體說明加入相應的誘導劑誘導相應的時間。
2）表達結束后,，將培養(yǎng)液轉至離心瓶，7000 rpm,，離心15 min,，收集菌體，然后加入1/10體積的裂解液（Lysis buffer）和PMSF（PMSF在破碎前加入,，其終濃度為1 mM）,，同時也可加入其他蛋白酶抑制劑,，但不能影響目的蛋白與樹脂的結合。
3）之后加入溶菌酶,，使其工作濃度為1 mg/mL,。【注】如果表達的宿主細胞內含pLysS或pLysE,，可以不加入溶菌酶,。
4）將菌體沉淀懸浮起來（如果菌液濃度高，可考慮加入10 µg/mL RNase A和5 µg/mL DNase I）,，混勻,，置于冰上超聲破碎細胞，至菌液基本保持澄清,。
5）收集上述澄清蛋白液,，10000 rpm，4℃離心20-30 min,。取上清,，0.22 µm/0.45 µm濾膜過濾，置于冰上備用或-20℃保存,。
2.2 酵母,、昆蟲和哺乳細胞分泌表達的可溶性蛋白
將細胞培養(yǎng)液轉移至離心瓶，5000 rpm離心10 min,，收集上清,。如上清中不含EDTA、組氨酸和還原劑等,，即可直接上柱純化,；如含有EDTA、組氨酸和還原劑等物質,，則需用1×PBS 4℃下透析后方可上柱,。
【注】對于大量體積的上清，需加入硫酸銨進行沉淀濃縮,，之后經1×PBS 4℃下透析后上柱,。
2.3 包涵體蛋白純化（以細菌為例）
1）將培養(yǎng)液轉移至離心瓶，7000 rpm,，離心15 min,，收集菌體去上清。
2）按照菌體：裂解液=1:10（w/v）的比例將菌體充分懸浮,，混勻,，冰浴超聲破碎。
3）將破碎液轉移至離心管,，10000 rpm,，4℃離心20-30 min,，去上清?？芍貜筒襟E2）和3）一次,。
4）按照菌體：裂解液（含8 M尿素）=1:10（w/v）的比例將包涵體充分懸浮。
5）變性條件下純化His標簽蛋白純化,。
3 樣品純化（以AKTA使用為例）
1）將泵管道注滿去離子水,。去掉產品上塞，連接至色譜系統中,，再折斷下口,，將預裝柱連接到色譜系統中，注意旋緊,。
2）3-5倍柱體積去離子水沖洗出存儲緩沖液,。
3）至少5倍柱體積的Lysis Buffer 平衡色譜柱。推薦流速為5 mL/min,。
4）利用泵或注射器上樣,。【注】若樣品粘度增加,，即使上樣體積很少也會導致層析柱很大的反壓,；上樣量不要超過柱子的結合能力；大量的樣品體積也可能造成很大的反壓,，使得進樣器更難使用,。
5）Wash Buffer 平衡柱子，直到紫外吸收達到一個穩(wěn)定的基線（一般至少10-15個柱體積）,。
【注】在樣品和結合緩沖液中加入低濃度咪唑可以提高樣品純度,。
6）Elution Buffer一步法或梯度法進行洗脫。一步法洗脫中一般5倍柱體積洗脫液即可,。梯度洗脫可以用一個小的梯度,，例如20倍柱體積或更多來分離不同結合強度的蛋白質。
7）建議用更高濃度咪唑（如500 mM）*清洗純化柱上結合的雜蛋白,。隨后依次用3倍柱體積的Lysis Buffer和5倍柱體積的去離子水清洗樹脂,。5倍柱體積的20%乙醇平衡樹脂，后將樹脂保存在20%乙醇的1×PBS中,，置于4℃保存,。
4 SDS-PAGE檢測
將純化過程中得到的樣品（包括原始樣品、流出組分,、洗雜及洗脫組分等）利用SDS-PAGE進行檢測,，判定其純化效果。
（二）在位清洗
當填料使用過程中發(fā)現反壓過高（>0.5 Mpa）或者填料上面出現明顯的污染時,，需對其進行在位清洗（Cleaning-in-Place,，CIP）。在位清洗時,，先把Ni2+脫掉,，清洗結束后，將填料保存在20%乙醇中,，后者重新掛Ni后再保存在20%乙醇中,。建議按照下面操作去除填料上殘留的污染物，如沉淀蛋白,、疏水蛋白和脂蛋白等,。
1 去除強疏水結合的蛋白，脂蛋白和脂類
使用30%異丙醇清洗5-10個柱體積,，接觸時間為15-20 min可以去除此類污染物,。之后再用去離子水清洗10倍柱體積。也可以選擇使用含有去污劑的酸性或者堿性溶液清洗填料2倍柱體積,。例如含有0.1-0.5%非離子去污劑的0.1 M醋酸溶液,，接觸時間為1-2 h。去污劑處理后,，需用70%的乙醇清洗5倍柱體積,，*去除去污劑。后利用去離子水清洗10倍柱體積,。
2 去除離子作用結合的蛋白
使用1.5 M NaCl 溶液接觸10-15 min,，之后用去離子水清洗10倍柱體積。
（三）填料再生
當填料使用過程中發(fā)現反壓過高（>0.5 Mpa）,，填料上面出現明顯的污染,，或填料載量明顯變低時，需要對其進行鎳離子剝離及重新掛鎳處理,，即填料再生,。按照下面操作流程進行：
1）使用5倍柱體積去離子水清洗填料；
2）使用5倍柱體積100mM EDTA（pH 8.0）剝落鎳離子,；
3）使用10倍柱體積去離子水清洗填料,；
4）使用0.5M NaOH清洗5倍柱體積，停留10-15min,；
5）使用10倍柱體積去離子水清洗填料,；
6）使用3-5倍柱體積100mM NiSO4再生掛鎳；
7）去離子水清洗10倍柱體積,。
填料再生后,，可立即使用，也可保存在20%乙醇中,，置于4℃?zhèn)溆谩?/span>
附表1 可溶性His標簽蛋白純化所需緩沖液及配方
緩沖液名稱 | 配方 | 配制1 L溶液所需各種試劑量 |
Lysis Buffer（pH 8.0） | 50 mM NaH2PO4 300 mM NaCl 10 mM imidazole NaOH調pH至8.0,，0.22 µm或0.45 µm過濾除菌 | NaH2PO4 ·2H2O 7.8 g NaCl 17.54 g Imidazole 0.68 g |
Wash Buffer（pH 8.0） | 50 mM NaH2PO4 300 mM NaCl 20 mM imidazole NaOH調pH至8.0,，0.22 µm或0.45 µm過濾除菌 | NaH2PO4 ·2H2O 7.8 g NaCl 17.54 g Imidazole 1.36 g |
Elution Buffer（pH 8.0） | 50 mM NaH2PO4 300 mM NaCl 250 mM imidazole NaOH調pH至8.0，0.22 µm或0.45 µm過濾除菌 | NaH2PO4 ·2H2O 7.8 g NaCl 17.54 g Imidazole 17.0 g |
附表2 包涵體His標簽蛋白純化所需緩沖液及配方
緩沖液名稱 | 配方 | 配制1 L溶液所需各種試劑量 |
Lysis Buffer（pH 8.0） | 8 M Urea 100 mM NaH2PO4 100 mM Tris·HCl 鹽酸溶液調pH至8.0,，0.22 µm或0.45 µm過濾除菌 | Urea 480.5 g NaH2PO4 ·2H2O 15.6 g Tris 15.76 g |
Wash Buffer（pH 6.3） | 8 M Urea 100 mM NaH2PO4 100 mM Tris·HCl 鹽酸溶液調pH至6.3,，0.22 µm或0.45 µm過濾除菌 | Urea 480.5 g NaH2PO4 ·2H2O 15.6 g Tris 15.76 g |
Elution Buffer（pH4.5） | 8 M Urea 100 mM NaH2PO4 100 mM Tris·HCl 鹽酸溶液調pH至4.5，0.22 µm或0.45 µm過濾除菌 | Urea 480.5 g NaH2PO4 ·2H2O 15.6 g Tris 15.76 g |
附表3 HisSep Ni-NTA Agarose Resin 6FF試劑耐受情況
試劑種類 | 濃度 |
還原劑 | 5 mM DTE 0.5-1 mM DTT 20 mM β-mercaptoethanol 5 mM TCEP 10 mM reduced glutathione |
變性劑 | 8 M urea 6 M Gua-HCl |
去污劑 | 2% TritonTM X-100,，nonionic 2% TweenTM20,，nonionic 2% NP-40，nonionic 2% Cholate,，anionic 1% CHAPS,，zwitterionic |
其他類 | 500 mM imidazole 20% ethanol 50% glycerol 100 mM Na2SO4 1.5 M NaCl 1 mM EDTA 60 mM citrate |
緩沖液 | 50 mM sodium phosphate，pH 7.4 100 mM Tris-HCl,，pH 7.4 100 mM Tris-acetate,，pH 7.4 100 mM HEPES，pH 7.4 100 mM MOPS,，pH 7.4 100 mM sodium acetate,，pH 7.4 |
附表4 問題及解決方案
問題 | 可能原因 | 推薦解決方案 |
柱子反壓過高 | 填料被堵塞 | 裂解液中可能含微小的固體顆粒，建議上柱前使用濾膜（0.22 µm或0.45 µm）過濾,，或離心去除 |
樣品中含高濃度的核酸,，延長破碎時間直至粘度降低，或添加DNaseI （終濃度為5 µg/mL）,，Mg2+(終濃度1 mM),，冰上孵育10-15 min | ||
樣品太黏稠 | 有機試劑或蛋白穩(wěn)定試劑（如甘油等）可能會引起反壓增高，降低操作流速,。 | |
洗脫組分中無目的蛋白 | 蛋白可能是包涵體 | 可通過電泳檢測裂解液,，分析上清中是否有目的蛋白，包涵體蛋白需按照包涵體蛋白的純化方式 |
表達量太低 | 優(yōu)化表達條件,，使用包涵體純化緩沖體系 | |
目的蛋白結合比較弱,，在洗雜步驟中已被洗下來 | 提高Wash Buffer的pH值，或者降低咪唑濃度 | |
目的蛋白結合過強,，不容易洗脫下來 | 降低Elution Buffer 的pH,，或者增加Elution Buffer中的咪唑濃度 | |
使用10-100 mM EDTA溶液剝離鎳離子，同時得到蛋白 | ||
蛋白降解 | 菌體破碎時需添加一些蛋白酶抑制劑 | |
在4℃下進行純化操作 | ||
洗脫組分不純（含多種蛋白） | 洗雜不* | 增加Wash Buffer 體積 |
樣品中含有其他His標簽蛋白 | 通過調節(jié)pH值或咪唑濃度來優(yōu)化洗雜條件,。再使用其他純化手段（如去離子交換,，疏水等）進一步純化洗脫組分。 | |
填料顏色變淺或變成白色 | 鎳離子脫落或者剝離 | 按照填料再生的操作重新掛鎳離子 |
填料呈現褐色 | 緩沖液中含有DTT等還原劑 | 參考附3適當降低還原劑DTT的濃度,，或改用巰基乙醇 |
上樣過程中蛋白發(fā)生沉淀 | 操作溫度太低 | 室溫下進行上樣 |
蛋白發(fā)生聚集 | 在樣品和所有緩沖液中添加穩(wěn)定劑,，如0.1%Triton X-100或Tween-20 |
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HB191216
