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【技術(shù)帖】NGS文庫質(zhì)檢方法與注意事項
——文庫大小,、質(zhì)量,、污染物評測
文庫的質(zhì)量對于高通量測序(NGS)產(chǎn)出的數(shù)據(jù)質(zhì)量至關(guān)重要。過低估計文庫的質(zhì)量,,導(dǎo)致Clusters或多重模板太多,,數(shù)據(jù)質(zhì)量不高;過高估計文庫的質(zhì)量,,導(dǎo)致數(shù)據(jù)讀取量少,,基因組覆蓋率低,所以低估或者高估文庫質(zhì)量都會影響測序效果。
那么,,如何判斷你做出來的文庫是可以用于上機測序的,,而不是白費力氣建了個沒用的文庫?或者更糟糕,,構(gòu)建出的文庫可以上機測序,,但是得到了一堆沒有用的數(shù)據(jù)?
不要擔(dān)心,,如果你的實驗設(shè)計精良,,你只需要做3步簡單的質(zhì)控就可以判斷文庫是否合格。
Bioanalyzer——文庫長度檢測
qPCR/Qubit——文庫定量
Nanodrop——文庫污染物檢測
1. 文庫長度檢測
文庫長度檢測是文庫質(zhì)控的關(guān)鍵步驟,。測序上機時,,要求文庫等摩爾上樣(否則可能造成不同文庫簇生成密度不同,而影響測序質(zhì)量),,文庫的平均長度是計算文庫摩爾數(shù)的要素之一,。
文庫摩爾數(shù)(pmol)≈ 文庫質(zhì)量(ng)/ [0.66×文庫平均長度(bp)]
Agilent Bioanalyzer是進(jìn)行文庫長度檢測zui常用的儀器,它基于微控流技術(shù)對樣本進(jìn)行分離檢測,。根據(jù)加樣要求,,在DNA芯片中加入Ladder、Marker,、Gel,、Dye以及Sample,當(dāng)給芯片加入電壓時,,樣品便在芯片上的顯微蝕刻管道中進(jìn)行毛細(xì)管電泳,,在樣本流動過程中,不同DNA根據(jù)其大小被分離,。同時凝膠-染料基質(zhì)中的熒光染料可嵌入DNA雙鏈,,通過激光激發(fā)熒光,使其被儀器檢測到,,儀器依據(jù)收集到的熒光信號強度對樣本粗略定量,。
一般情況下,好的文庫應(yīng)該呈現(xiàn)出單一的,、圓滑的峰,,且接近正態(tài)分布,長度范圍在150-700bp之間,。如下圖為使用100 ng E.coli gDNA建庫,,接頭連接后進(jìn)行雙輪分選(0.6×/0.2×和0.55×/0.15×)的檢測結(jié)果。
有時,,文庫也可能在150-700bp的范圍之外出現(xiàn)雜峰,。不同的雜峰大小與峰形可參照以下情況進(jìn)行分析和實驗改進(jìn),。
1) 在150bp以下出現(xiàn)雜峰
這種情況可認(rèn)為是文庫擴增時的引物二聚體殘留或接頭殘留導(dǎo)致的,可以通過稍微降低磁珠使用比例重新純化文庫解決,。注意,,磁珠使用過程中的移液操作,切勿擾動磁珠,。
2)在700bp以上出現(xiàn)雜峰
這種情況可認(rèn)為是文庫擴增循環(huán)數(shù)過高,,出現(xiàn)文庫過度擴增自我交聯(lián)導(dǎo)致的,可以通過文庫重新分選解決,。
3)整個文庫呈現(xiàn)大小不對稱
這種情況可認(rèn)為文庫分選操作不良或Input DNA的片段化不*導(dǎo)致的,可以通過重新進(jìn)行文庫分選或者重新構(gòu)建文庫解決,。
2. 文庫濃度檢測
文庫質(zhì)量也是計算文庫上機摩爾數(shù)的要素,。常規(guī)使用qPCR法和熒光計法(以Qubit®常用)。
1)qPCR法
qPCR法使用特異性引物僅定量樣品中兩端接頭連接完整的文庫(即可測序的文庫),,可排除單端或雙端都不連接接頭的不可測序文庫的干擾,,是目前業(yè)內(nèi)進(jìn)行文庫定量的金標(biāo)準(zhǔn)。使用qPCR法時,,需要以不同濃度的已知長度DNA的片段(常為452bp)作為標(biāo)準(zhǔn)品進(jìn)行標(biāo)曲制作,,進(jìn)而進(jìn)行文庫定量。
由于標(biāo)準(zhǔn)品與文庫的實際長度可能不同,,因此計算時,,需要對文庫質(zhì)量進(jìn)行校正。
原始文庫濃度(nM)= [452 bp /文庫平均長度(bp)] × 稀釋文庫的濃度(pM)× 稀釋倍數(shù)/1000
一般情況下,,理想的文庫濃度應(yīng)在10-100nM之間,。如果文庫測定結(jié)果在100nM以上,表明文庫的PCR循環(huán)數(shù)過高,,這可能會增加測序數(shù)據(jù)中的Duplicate rate,,此時可以通過減低1個PCR循環(huán)數(shù)來獲得10-100nM之間的文庫。
為了獲得的定量結(jié)果,,在使用qPCR方式進(jìn)行文庫定量時,,建議遵循以下原則:
Ø 等量分裝qPCR Mix和DNA標(biāo)準(zhǔn)品,避免模板污染和反復(fù)凍融的影響
Ø 在進(jìn)行qPCR之前,,將反應(yīng)體系配制區(qū)和模板制備區(qū)進(jìn)行物理隔離,,并定時使用0.5%次氯酸鈉或10%漂白劑對各實驗區(qū)域進(jìn)行擦拭清理。
Ø 待測樣本做梯度稀釋,,并且同時做3個平行重復(fù)
Ø 檢查梯度稀釋液以及平行樣本具有一致性的可重復(fù)的測定值
Ø 檢查確定待測文庫Ct在標(biāo)準(zhǔn)曲線以內(nèi)時,,使用標(biāo)準(zhǔn)曲線計算文庫濃度
2)熒光計法(Qubit®, Picogreen)
Qubit®是核酸和蛋白定量熒光儀,采用熒光染料檢測特定目標(biāo)分子的濃度,,能夠?qū)?/span>DNA和RNA進(jìn)行定量,。Picogreen是一種極為靈敏的熒光核酸染料,其僅在與DNA雙鏈結(jié)合后才發(fā)出熒光,且所產(chǎn)生的熒光與DNA濃度呈正比,,是定量DNA文庫的zui常用染料,。
由于染料與DNA雙鏈結(jié)合,但無法有效區(qū)分文庫雙鏈和其他不完整雙鏈結(jié)構(gòu)(如單端連接接頭產(chǎn)物或未連接接頭產(chǎn)物),,所以相對qPCR法定量文庫來說,,Qubit®方法的度稍弱一些,但是Qubit®出眾的簡便性,、靈敏度以及低成本使得Qubit®成為測序?qū)嶒炇?的儀器之一,。此外,Input DNA由于沒有添加接頭,,是無法使用qPCR方式定量的,,此時Qubit®方法相對其他如Nanodrop等方法來說,是zui為的方法,。
使用Qubit®熒光計方法得到的文庫濃度以ng/μL為單位,,而測序上機文庫以nM(nmol/L)為單位,因此測定值需要根據(jù)以下公式進(jìn)行換算:
文庫摩爾數(shù)(nM)≈ 文庫質(zhì)量(ng/μL)×106/[660×文庫平均長度(bp)]
3. 文庫污染物檢測
Nanodrop是檢測樣本污染物zui快的方法之一,,能夠在包括紫外及可見光區(qū)域在內(nèi)的光譜范圍內(nèi)檢測污染物的吸光度信號,,核酸污染物的常用參考標(biāo)準(zhǔn)是A260/280和A260/230。
理想文庫的標(biāo)準(zhǔn)是A260/280>1.8,,A260/230>2.0,,不在該范圍時,建議重新進(jìn)行文庫純化或者重新建庫,,否則,,可能造成文庫簇生成量少,測序數(shù)據(jù)質(zhì)量差,。
需要注意,,不要使用Nanodrop做建庫過程中的DNA或RNA定量!
4. 相關(guān)產(chǎn)品
產(chǎn)品名稱 | 產(chǎn)品編號 | 規(guī)格 | 價格(元) |
Hieff NGSTM MaxUp II DNA Library Prep Kit for Illumina | 12200ES08 | 8 libraries | 2456.00 |
12200ES24 | 24 libraries | 6486.00 | |
12200ES96 | 96 libraries | 23567.00 | |
Hieff NGSTM DNA selection Beads(Superior AMPure XP alternative) | 12601ES03 | 1 mL | 296.00 |
12601ES08 | 5 mL | 986.00 | |
12601ES56 | 60 mL | 6286.00 | |
12601ES75 | 450 mL | 26186.00 | |
dsDNA HS Assay Kit for Qubit® | 12640ES60 | 100 T | 686.00 |
12640ES76 | 500 T | 2696.00 | |
Hieff NGSTM Library Quantification Kit for Illumina, qPCR Master Mix | 12302ES05 | 500 T | 1526.00 |
Hieff NGSTM Library Quantification Kit for Illumina, DNA Standard (1-6) | 12307ES09 | 6×96 μL | 2126.00 |
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