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基因編輯探秘系列之原理篇

2024-3-20  閱讀(278)

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CRISPR技術(shù)自2012年誕生以來(lái)憑借其 的性能,,迅速崛起為 先進(jìn)且高效的基因編輯工具,,為基因功能研究,、藥物靶點(diǎn)篩選、遺傳疾病治療,、癌癥研究以及作物育種等領(lǐng)域帶來(lái)了革命性的突破,。因其杰出的貢獻(xiàn),,科學(xué)家Emmanuelle Charpentier和Jennifer A. Doudna在2020年榮獲諾貝爾化學(xué)獎(jiǎng)。本文將對(duì)CRISPR技術(shù)的核心原理及其工作機(jī)制進(jìn)行深入剖析,。


 

圖1. 2020年諾貝爾化學(xué)獎(jiǎng)得主[1]

 

01
 

CRISPR系統(tǒng)介紹

 
 
01

CRISPR系統(tǒng)組成

 
 

CRISPR是“成簇規(guī)律間隔短回文重復(fù)序列"(clustered regularly interspaced short palindromic repeats)的縮寫(xiě),,CRISPR系統(tǒng)是原核生物(包括細(xì)菌和古生菌)的一種天然防御機(jī)制,用于抵御噬菌體病毒的感染,。

 

CRISPR/Cas系統(tǒng)由兩個(gè)部分:CRISPR基因序列與Cas基因組成,。

 

CRISPR基因序列

由前導(dǎo)序列(leader)、重復(fù)序列(repeat)和間隔序列(spacer)構(gòu)成:

1)前導(dǎo)序列:一段富含AT堿基的數(shù)百個(gè)堿基對(duì),,坐落于CRISPR基因的上游,,并發(fā)揮著啟動(dòng)子的關(guān)鍵作用。

2)間隔序列:細(xì)菌所俘獲的外源DNA片段的記錄,,它們像是CRISPR系統(tǒng)的“記憶庫(kù)",,當(dāng)相同的外源遺傳物質(zhì)再次嘗試入侵時(shí),CRISPR/Cas系統(tǒng)會(huì)精準(zhǔn)地識(shí)別并予以打擊,。

3)重復(fù)序列:長(zhǎng)度約20–50bp堿基,,內(nèi)含5–7bp的回文序列,其轉(zhuǎn)錄產(chǎn)物能夠形成發(fā)卡結(jié)構(gòu),,從而穩(wěn)定RNA的整體二級(jí)結(jié)構(gòu),。這些重復(fù)序列與間隔序列相互交錯(cuò),數(shù)量從幾個(gè)到數(shù)百個(gè)不等,。

 

cas基因

Cas基因,,位于CRISPR基因附近或散布于整個(gè)基因組的其他位置,,它們所編碼的蛋白質(zhì)包括Cas1至Cas10等。這些蛋白質(zhì)在CRISPR/Cas系統(tǒng)中扮演著關(guān)鍵角色,,與CRISPR基因序列協(xié)同工作,,共同構(gòu)成了這一強(qiáng)大的防御機(jī)制,從而保護(hù)原核生物免受噬菌體病毒的侵害,。

圖2. CRISPR位點(diǎn)結(jié)構(gòu)圖[2]

 

02
CRISPR系統(tǒng)分類(lèi)
 
 

CRISPR/Cas系統(tǒng),,根據(jù)其Cas蛋白的組成差異以及效應(yīng)復(fù)合物的特性,可以被分為兩大類(lèi):Class1和Class2,。

 

Class1系統(tǒng):

這個(gè)類(lèi)別的系統(tǒng)特征在于它包含一個(gè)由多個(gè)Cas蛋白構(gòu)成的效應(yīng)模塊,。該模塊承擔(dān)著識(shí)別目標(biāo)基因組、失活入侵DNA以及處理前CRISPR RNA(也稱為pre-crRNA)的關(guān)鍵任務(wù),。

 

Class2系統(tǒng):

與Class1不同,,Class2系統(tǒng)的標(biāo)志性特征是它包含一個(gè)單一的多結(jié)構(gòu)域CrRNA結(jié)合蛋白,比如在Class2系統(tǒng)中的Cas9,。這種蛋白質(zhì)具備實(shí)現(xiàn)干擾所需的全部活性,,并且在一些變體中,它還整合了參與前crRNA加工的活性,。

 

圖3. CRISPR系統(tǒng)分類(lèi)[3]

 

CRISPR/Cas系統(tǒng)中的Cas基因可以歸納為四個(gè)不同但部分重疊的功能模塊:適應(yīng)模塊,、表達(dá)處理模塊、干擾或效應(yīng)模塊,、信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)或輔助模塊,,這些模塊共同協(xié)作以實(shí)現(xiàn)其基因組編輯的能力。

 

1)適應(yīng)模塊:負(fù)責(zé)將新的遺傳信息整合到CRISPR序列中,。它包括編碼關(guān)鍵酶Cas1(負(fù)責(zé)間隔序列的插入)和適應(yīng)復(fù)合體亞單位Cas2的基因,。此外,它還可能包含Cas4核酸酶,、II-A亞型中的Csn2蛋白以及許多III型系統(tǒng)中的逆轉(zhuǎn)錄酶。

2)表達(dá)處理模塊:負(fù)責(zé)前crRNA處理,。在大多數(shù)Class1系統(tǒng)中,,Cas6是直接負(fù)責(zé)這一過(guò)程的酶。而在II型系統(tǒng)中,,這一任務(wù)由細(xì)菌RNase III(一種非Cas蛋白)完成,。在許多V型系統(tǒng)和所有VI型系統(tǒng)中,大型效應(yīng)Cas蛋白內(nèi)含一個(gè)專門(mén)的催化中心來(lái)處理前crRNA,。

3)干擾或效應(yīng)模塊:涉及目標(biāo)識(shí)別和核酸裂解,。在Class1系統(tǒng)中,效應(yīng)蛋白模塊由多種Cas蛋白組成,,如Cas3,、Cas5-Cas8,、Cas10和Cas11等。而在Class2系統(tǒng)中,,效應(yīng)蛋白模塊簡(jiǎn)化為單一的大蛋白,,如Cas9、Cas12或Cas13,。

4)信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)或輔助模塊:這是一個(gè)包含眾多CRISPR連鎖基因的廣泛集合,,它們?cè)贑RISPR-Cas系統(tǒng)中的作用大多是初步預(yù)測(cè)的。

由于Class2系統(tǒng)的簡(jiǎn)便性和易用性,,研究者主要關(guān)注Class2系統(tǒng)中的Cas亞型,,以尋找潛在的新基因組編輯和診斷工具。Class2 CRISPR-Cas系統(tǒng)主要包括三種類(lèi)型:II型(cas9),、V型(cas12)和VI型(cas13),。

 

II型系統(tǒng)

Ⅱ型系統(tǒng)中的代表為CRISPR/Cas9蛋白系統(tǒng),Cas1,、Cas2,、Cas4蛋白負(fù)責(zé)重復(fù)間隔區(qū)的建立,RNaseⅢx協(xié)助crRNA的形成,,而剩余的工作由Cas9蛋白完成,。Cas9發(fā)揮功能時(shí)需要tracrRNA與crRNA共同作用(tracrRNA促進(jìn)crRNA加工成熟,通過(guò)堿基配對(duì)與crRNA結(jié)合形成tracrRNA/crRNA復(fù)合,,用于結(jié)合Cas9蛋白,;crRNA與基因組DNA互補(bǔ)配對(duì),用于結(jié)合模板DNA),,當(dāng)向?qū)NA與Cas9蛋白形成復(fù)合物后,,Cas9蛋白的兩個(gè)DNA切割結(jié)構(gòu)域(HNH和RuvC)發(fā)揮切割活性,HNH結(jié)構(gòu)域切割與crRNA互補(bǔ)的鏈,,RuvC結(jié)構(gòu)域切割另一條鏈,,從而實(shí)現(xiàn)了對(duì)目標(biāo)DNA的雙鏈切割,這種精準(zhǔn)的切割能力使得CRISPR/Cas9系統(tǒng)成為了基因編輯領(lǐng)域中強(qiáng)大,、高效的工具之一,。

 

V型系統(tǒng)

V型系統(tǒng)的單一效應(yīng)蛋白為Cas12,與II型系統(tǒng)存在顯著差異,。II型系統(tǒng)依賴于兩個(gè)DNA切割結(jié)構(gòu)域——HNH和RuvC,,而V型系統(tǒng)則僅擁有一個(gè)與RuvC相似的切割活性結(jié)構(gòu)域;在guideRNA上,,Cas9系統(tǒng)需要tracrRNA與crRNA的協(xié)同作用,,而Cas12a系統(tǒng)則僅憑單一的crRNA便能完成使命。

 

值得一提的是,,Cas9蛋白在切割雙鏈DNA后,,產(chǎn)生的DNA末端為平末端,。相比之下,Cas12a系統(tǒng)則會(huì)產(chǎn)生粘性末端,,這一特性為其在基因編輯和核酸檢測(cè)等領(lǐng)域的應(yīng)用提供了更多可能性,。

 

此外,像Cas12a,、Cas12b這樣的系統(tǒng)還具有反式切割活性,。在crRNA的引導(dǎo)下,Cas12a能夠特異性地識(shí)別和切割雙鏈DNA(dsDNA),,并隨后釋放單鏈脫氧核糖核酸酶(ssDNase)活性,。這種活性使得Cas12a能夠無(wú)差別地裂解附近的單鏈DNA(ssDNA)。因此,,Cas12a系統(tǒng)可以與LAMP等技術(shù)相結(jié)合,,為核酸檢測(cè)等領(lǐng)域提供強(qiáng)大的工具。

 

圖4. 主要的CRISPR/Cas基因編輯工具[4]

 

VI型系統(tǒng)

VI型系統(tǒng)的單一的效應(yīng)蛋白為Cas13,,具有靶向切割目標(biāo)RNA的能力,。Cas13含有兩個(gè)高等真核生物和原核生物核苷酸(HEPN)結(jié)合域結(jié)構(gòu),其上的RxxxxH保守基序是Cas13核酸酶催化活性位點(diǎn),。Cas13僅憑單個(gè)crRNA的引導(dǎo),,便能催化自身的前體pre-crRNA轉(zhuǎn)化為成熟的crRNA,當(dāng)crRNA-Cas13a復(fù)合物形成時(shí),,crRNA便會(huì)引導(dǎo)復(fù)合物與靶標(biāo)RNA進(jìn)行堿基互補(bǔ)配對(duì),。通過(guò)這種機(jī)制,Cas13能夠特異性地對(duì)靶標(biāo)RNA進(jìn)行順式剪切,,從而實(shí)現(xiàn)RNA敲除的目的,。此外,Cas13還能以非特異性的方式對(duì)附近的RNA進(jìn)行反式剪切,,這一特性使其在基因編輯和RNA調(diào)控領(lǐng)域具有廣闊的應(yīng)用前景,。

02
 

CRISPR/Cas系統(tǒng)的作用機(jī)理

 
 

CRISPR/Cas系統(tǒng)的具體作用機(jī)可分為以下三個(gè)階段:

 

01

獲得CRISPR的高度可變的間隔區(qū)

 
 

當(dāng)被外源噬菌體或質(zhì)粒侵入時(shí),含有CRISPR的細(xì)菌和古菌獲得插入間隔區(qū)的外源DNA片段,;

 

02

CRIPSR基因座的表達(dá)

 
 

當(dāng)與間隔區(qū)同源的外來(lái)核酸再次進(jìn)入細(xì)菌時(shí),,CRISPR陣列會(huì)被激活并轉(zhuǎn)錄產(chǎn)生前體crRNA(pre-crRNA)。同時(shí),,與pre-crRNA序列互補(bǔ)的tracrRNA也會(huì)被轉(zhuǎn)錄出來(lái),tracrRNA在轉(zhuǎn)錄后會(huì)首先與Cas9蛋白結(jié)合,,隨后與pre-crRNA通過(guò)互補(bǔ)堿基配對(duì)形成雙鏈RNA,。這個(gè)雙鏈RNA與Cas9蛋白結(jié)合,形成一個(gè)功能強(qiáng)大的復(fù)合物,。

 

在RNase III的作用下,,pre-crRNA經(jīng)歷初級(jí)和二次加工,,多余的重復(fù)序列和間隔序列被去除,從而生成成熟的crRNA,。這個(gè)成熟的crRNA具備了靶向特定DNA鏈的能力,。

 

03

CRISPR/Cas系統(tǒng)活性的發(fā)揮(靶向干擾)

 
 

若細(xì)菌再次遭受同源DNA的感染,它會(huì)啟動(dòng)CRISPR區(qū)域的轉(zhuǎn)錄,,經(jīng)過(guò)一系列的加工和成熟過(guò)程,,生成單鏈向?qū)NA(sgRNA),sgRNA會(huì)引導(dǎo)Cas9蛋白精確地剪切并破壞同源間隔區(qū)域的DNA鏈,,導(dǎo)致雙鏈DNA斷裂(DSB),,隨后,細(xì)胞會(huì)通過(guò)非同源末端連接(NHEJ)或同源重組(HDR)的方式對(duì)靶基因進(jìn)行修復(fù),。這一過(guò)程中,,CRISPR/Cas系統(tǒng)展現(xiàn)出了其精確的靶向干擾能力,從而有效地抵御了外源遺傳物質(zhì)的入侵,。

 

圖5. CRISPR-Cas9介導(dǎo)的DNA干擾細(xì)菌適應(yīng)性免疫[5]

 

 

03
 

CRISPR/Cas系統(tǒng)編輯基因組原理

(CRISPR/Cas9系統(tǒng))

 
 

RISPR/Cas9基因編輯系統(tǒng)依賴于兩大核心組件:具備導(dǎo)向功能的gRNA和Cas9蛋白,。其技術(shù)原理涵蓋了兩個(gè)基本過(guò)程:gRNA引導(dǎo)的Cas9靶向DNA切割,以及隨后的DNA修復(fù),。

 

01

Cas9靶向DNA切割

 
 

在Cas9靶向DNA切割階段,,CRISPR系統(tǒng)識(shí)別DNA上的特定位置,這一識(shí)別過(guò)程依賴于crRNA(負(fù)責(zé)識(shí)別)和tracrRNA(作為Cas9的結(jié)合支架)的序列,。當(dāng)這兩者融合轉(zhuǎn)錄出sgRNA后,,sgRNA與Cas9蛋白結(jié)合形成復(fù)合體,通過(guò)sgRNA與20bp靶序列的互補(bǔ)配對(duì),,Cas9核酸內(nèi)切酶被精確引導(dǎo)至靶切割位點(diǎn),,切割從PAM(即復(fù)合體識(shí)別的富含GC的三堿基序列,如5′-NGG-3′)上游的第三個(gè)堿基開(kāi)始,。Cas9核酸內(nèi)切酶包含兩個(gè)關(guān)鍵結(jié)構(gòu)域:HNH核酸酶結(jié)構(gòu)域和RuvC-like核酸酶結(jié)構(gòu)域,。這兩個(gè)結(jié)構(gòu)域協(xié)同工作,共同切割DNA,。其中,,HNH核酸酶結(jié)構(gòu)域負(fù)責(zé)切割與crRNA互補(bǔ)的DNA鏈,而RuvC-like結(jié)構(gòu)域則切割另一條非互補(bǔ)鏈,。切割位點(diǎn)位于PAM上游原始間隔序列的第3和第4個(gè)核苷酸之間,,產(chǎn)生平末端的DSB(雙鏈斷裂)。一旦Cas9/sgRNA復(fù)合物誘導(dǎo)產(chǎn)生DSBs,,機(jī)體將啟動(dòng)兩種修復(fù)方式,,從而實(shí)現(xiàn)對(duì)靶基因表達(dá)的精準(zhǔn)調(diào)控。

 

圖6. CRISPR-Cas9介導(dǎo)的基因編輯機(jī)制[6]

 

02

DNA修復(fù)

 
 

1)非同源末端連接(NHEJ)

非同源末端連接(NHEJ)是修復(fù)雙鏈斷裂(DSB)的經(jīng)典通路。在這一過(guò)程中,,斷端會(huì)經(jīng)歷核酸酶的精細(xì)修剪和DNA聚合酶的空隙填補(bǔ),,然而,這種修復(fù)方式會(huì)在DNA上留下“痕跡",,可能是修復(fù)過(guò)程中錯(cuò)誤插入或缺失的堿基,。當(dāng)這些“痕跡"出現(xiàn)在基因組的編碼蛋白基因區(qū)域時(shí),會(huì)導(dǎo)致基因編碼的蛋白序列出現(xiàn)異常,,進(jìn)而造成相應(yīng)蛋白功能的失調(diào),。

 

然而如果“痕跡"出現(xiàn)在基因組的非編碼區(qū),其對(duì)細(xì)胞的整體功能通常不會(huì)造成顯著影響,。例如,,在基因敲除實(shí)驗(yàn)中,我們常常選擇在翻譯起始位點(diǎn)后的外顯子區(qū)域設(shè)計(jì)gRNA,,以確保其盡可能靠近mRNA的5’端,。這樣做的目的是,插入或缺失的堿基會(huì)干擾正常的密碼子讀碼,,導(dǎo)致翻譯過(guò)程提前終止,,從而破壞目標(biāo)基因的表達(dá)或使其功能喪失。

 

2)同源重組修復(fù)(HDR)

同源重組修復(fù)(HDR)是一種基于遺傳重組的DNA修復(fù)機(jī)制,,它發(fā)生在兩個(gè)相似或相同的DNA分子核苷酸序列之間,。HDR的一個(gè)顯著特點(diǎn)是,在修復(fù)過(guò)程中不會(huì)引入額外的核苷酸缺失或增加,,因此它能夠精確地修復(fù)DNA雙鏈的斷裂,。例如,在制備疾病相關(guān)突變模型時(shí),,我們可以通過(guò)外源提供包含所需突變的靶基因模板,,然后利用HDR機(jī)制,在Cas9蛋白切割DNA后,,將突變模板精確地整合到基因組中,。

 

CRISPR/Cas技術(shù)作為新一代基因編輯技術(shù)的代表,具有極為廣闊的應(yīng)用前景,。在本文中,,我們向大家介紹了CRISPR/Cas系統(tǒng)的基本組成和編輯機(jī)制。而在接下來(lái)的文章中,,我們將深入探討CRISPR/Cas技術(shù)的遞送形式及應(yīng)用,,敬請(qǐng)期待!

 

 

為了助力廣大用戶更深入地理解并運(yùn)用CRISPR技術(shù),,翌圣特別推出基因編輯產(chǎn)品組合包

 

活動(dòng)細(xì)則:

1,、活動(dòng)時(shí)間:2024年3月18日-2024年5月18日;

2、活動(dòng)對(duì)象:本活動(dòng)面向全國(guó)終端客戶,;

3、本活動(dòng)限制參與次數(shù),,不支持多筆訂單累積,,僅支持單筆訂單累計(jì);

4,、本活動(dòng)不與其他任何活動(dòng)疊加,,非產(chǎn)品質(zhì)量問(wèn)題,活動(dòng)訂單內(nèi)產(chǎn)品不支持退換貨行為,;

5,、 活動(dòng)期間內(nèi)所有訂單及贈(zèng)品均需在活動(dòng)結(jié)束后5天內(nèi)完成出庫(kù),過(guò)期兌換無(wú)效,;

6,、活動(dòng)名額有限,每位客戶限購(gòu)一次,,每種組合 20套,,售完即止。

 

參考文獻(xiàn):

[1] The Nobel Prize in Chemistry 2020, Retrieved October 7, 2020, 

[2] Marraffini LA, Sontheimer EJ. CRISPR interference: RNA-directed adaptive immunity in bacteria and archaea. Nat Rev Genet. 2010;11(3):181-190.

[3] Makarova KS, Wolf YI, Iranzo J, et al. Evolutionary classification of CRISPR-Cas systems: a burst of class 2 and derived variants. Nat Rev Microbiol. 2020;18(2):67-83.

[4] Pickar-Oliver A, Gersbach CA. The next generation of CRISPR-Cas technologies and applications. Nat Rev Mol Cell Biol. 2019;20(8):490-507.

[5] Jiang F, Doudna JA. CRISPR-Cas9 Structures and Mechanisms. Annu Rev Biophys. 2017;46:505-529.

[6] Westermann L, Neubauer B, K?ttgen M. Nobel Prize 2020 in Chemistry honors CRISPR: a tool for rewriting the code of life. Pflugers Arch. 2021 Jan;473(1):1-2.

 

 
 
 
 
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