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漲知識 | qPCR專場七:認(rèn)識不同熒光定量PCR方法

2023-10-8  閱讀(200)

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漲知識 | qPCR專場七:認(rèn)識不同熒光定量PCR方法

 

熒光定量PCR是實(shí)驗(yàn)室中出鏡率非常高的一種檢測方法。該方法通過在PCR體系中添加熒光基團(tuán)來記錄DNA產(chǎn)物的累積情況,,從而達(dá)到對PCR過程進(jìn)行實(shí)時監(jiān)控的目的,并且可以通過數(shù)據(jù)分析計(jì)算出起始模板量,,這就是“熒光定量"中“定量"一詞的來源。

熒光定量PCR實(shí)驗(yàn)因?yàn)殪`敏度高所以經(jīng)常是差之毫厘謬以千里,,所以在實(shí)驗(yàn)過程中,,我們需要注意諸多細(xì)節(jié),謹(jǐn)慎操作,。小伙伴們看到這里就要著急了,,我怎樣才能做好qPCR實(shí)驗(yàn),拿到實(shí)驗(yàn)結(jié)果,,發(fā)表高分文章,,走上人生呢?

 

 

熒光定量PCR其本質(zhì)是通過熒光探針或熒光DNA結(jié)合染料和實(shí)時熒光定量PCR儀器對PCR擴(kuò)增產(chǎn)物進(jìn)行檢測和定量,,儀器在PCR熱循環(huán)的過程中測量熒光,。市面上有多種不同類型的熒光定量PCR試劑,這些熒光定量PCR試劑的差別是什么,?如何根據(jù)自己的實(shí)驗(yàn)?zāi)繕?biāo)去選擇呢,?小翌為大家細(xì)細(xì)道來~

 

圖.PCR循環(huán)流程

 

 

 
染料法與探針法的區(qū)別
 
 
非特異性熒光標(biāo)記:染料法
 
 

 

SYBR Green 染料是一種熒光DNA結(jié)合染料,能夠結(jié)合在任何雙鏈DNA中的小溝上,。該染料在游離狀態(tài)下,,僅發(fā)出微弱的熒光,一旦和雙鏈DNA結(jié)合,,熒光信號便大大增強(qiáng),。在PCR循環(huán)中,,每形成一條DNA雙鏈,,就有一定數(shù)量染料結(jié)合上去。隨著PCR反應(yīng)的進(jìn)行,,越來越多的雙鏈DNA形成,,熒光強(qiáng)度也隨之增強(qiáng)。

 

 

由于SYBR Green 染料會和任意雙鏈DNA結(jié)合并發(fā)出熒光信號,。當(dāng)反應(yīng)中出現(xiàn)引物二聚體或者非特異擴(kuò)增時,,便有可能產(chǎn)生明顯的假陽性信號。具體的表現(xiàn)是熔解曲線呈現(xiàn)雙峰或多峰,,擴(kuò)增曲線中的Ct值相比正常值偏小,。

 

 
特異性熒光標(biāo)記:探針法
 
 
目前市面上幾乎所有的探針法熒光定量PCR都是利用了熒光共振能量轉(zhuǎn)移現(xiàn)象,探針上存在一定對能產(chǎn)生熒光共振能量轉(zhuǎn)移的基團(tuán),,利用PCR反應(yīng)中的一些類似酶切,、雜交等過程,,使兩個基團(tuán)的距離發(fā)生變化,使得整個PCR系統(tǒng)中的熒光強(qiáng)度或者熒光種類發(fā)生變化,,這種變化與PCR產(chǎn)物類型和產(chǎn)物量有直接關(guān)系,。

 

 

探針法熒光定量有多種類型,例如TaqMan探針法,、雙雜交探針法,、分子信標(biāo)探針法和蝎形探針法等。其中TaqMan探針是最常見的探針方法,,通常是設(shè)計(jì)一條與擴(kuò)增產(chǎn)物能互補(bǔ)能互補(bǔ)雜交的探針,,在探針的5’端標(biāo)記報(bào)告基團(tuán),在探針3’端標(biāo)記淬滅基團(tuán),。當(dāng)探針完整時,,報(bào)告基團(tuán)和淬滅基團(tuán)之間距離很近,由于熒光共振能量轉(zhuǎn)移存在,,報(bào)告基團(tuán)在入射光激發(fā)下不會發(fā)出熒光信號,。PCR反應(yīng)進(jìn)行時,探針雜交在引物下游的位置,,當(dāng)DNA擴(kuò)增酶移動到探針位置上時,,酶本身5’-3’端的外切酶活性會從5’端切割探針,從而使5’端報(bào)告基團(tuán)和3’端標(biāo)記淬滅基團(tuán)分離,,當(dāng)基團(tuán)之間的距離超過熒光共振能量轉(zhuǎn)移的范圍,,報(bào)告基團(tuán)在光照射下,就可發(fā)出一定的熒光,。由于探針是針對目標(biāo)序列設(shè)計(jì),,是特異性的,故而熒光的種類和光信號強(qiáng)度能特異性指示目標(biāo)序列的種類和數(shù)量,。

 

 
染料法VS.探針法
 
 

 


染料法熒光定量PCR

探針法熒光定量PCR

特異性

靈敏度

可重復(fù)性

多重反應(yīng)

-

可多重

探針/引物設(shè)計(jì)

引物

探針+引物

實(shí)驗(yàn)成本

應(yīng)用

特定基因表達(dá)差異分析,;DNA定量

特定基因表達(dá)分析;DNA定量,;SNPs基因分析,;基因突變檢測;產(chǎn)前遺傳病檢測,;傳染病早期病原體檢測

 

 

 
不同應(yīng)用的染料法熒光定量
 
進(jìn)行熒光定量時,,靶標(biāo)均為DNA模板,但是不同來源的DNA,,會存在一定的差異,。通常進(jìn)行染料法熒光定量時,選用的最適DNA產(chǎn)物長度為80-300bp。但是當(dāng)DNA由18-28個核苷酸組成的miRNA反轉(zhuǎn)錄得到時,,選用正確的熒光定量試劑變得尤為重要,。

 

 
miRNA的染料法熒光定量檢測
 
 
miRNA的長度很短,通常約18-28個核苷酸,,因此無法采用常見的普通反轉(zhuǎn)錄試劑盒和熒光定量PCR試劑進(jìn)行miRNA的檢測,。目前,市面上采用兩種方法對miRNA進(jìn)行反轉(zhuǎn)錄,,一種是加尾法(加A法),,另一種是莖環(huán)法。兩種方式均是通過人為加長序列的方式獲取第一鏈cDNA,,該cDNA的長度通常在60-80nt左右,。

另外不同miRNA之間堿基序列的差異不大,在僅有的18-28個核苷酸內(nèi),,不同miRNA甚至?xí)霈F(xiàn)僅1個核苷酸不同的現(xiàn)象,,高效特異性區(qū)分不同miRNA也十分重要。因此,,常規(guī)的熒光定量可能難以滿足miRNA實(shí)驗(yàn)?zāi)繕?biāo)所需,,需要選用專門針對短片段擴(kuò)增,且能高特異性準(zhǔn)確定量的熒光定量試劑,。

 

 

miRNA的定量檢測不僅可以選用染料法熒光定量,,也可選用適宜的探針法熒光定量。

 

 
常見DNA的染料法熒光定量檢測
 
 
市面上常見的染料法熒光定量試劑均可滿足常見DNA的熒光定量檢測,,但需要注意的是,,由于染料法熒光定量中染料結(jié)合任意雙鏈DNA的特性,除需要精心設(shè)計(jì)引物和進(jìn)行熔解曲線分析以外,,最好選用保證靈敏度和特異性雙兼顧的染料法熒光定量試劑,,減少因?yàn)镈NA擴(kuò)增酶本身特異性原因造成的非特異擴(kuò)增。

 

 

 
不同應(yīng)用的探針法熒光定量
 
探針法熒光定量按照檢測靶標(biāo)數(shù)量可分為單重?zé)晒舛縋CR和多重?zé)晒舛縋CR,。單重?zé)晒舛縋CR相對來說比較簡單,,即在單個孔中通過一次PCR反應(yīng)針對一個基因進(jìn)行擴(kuò)增檢測。而多重?zé)晒舛縋CR則是在單孔中通過一次PCR反應(yīng)同時針對多個靶標(biāo)進(jìn)行擴(kuò)增,,利用一定的檢測方式實(shí)現(xiàn)對多個靶標(biāo)進(jìn)行檢測,。那么,,在實(shí)際使用時,,有什么具體的差別呢?

 

 
場景模擬
 
 
采用相對定量法分析并確定某個生物體經(jīng)過藥物處理后目的基因的表達(dá)情況,。采用單重?zé)晒舛縋CR試劑,,則每個孔中只有一個基因(內(nèi)參基因或目的基因)擴(kuò)增,若技術(shù)重復(fù)為三次,則需要將樣品分成6份,,3個用于內(nèi)參基因檢測,,3個用于目的基因檢測,用以檢測目的基因的表達(dá)情況,。而采用多重?zé)晒舛縋CR,,進(jìn)行三次技術(shù)重復(fù),,僅需將樣品分成3份,,3個孔中通過用一個PCR反應(yīng)擴(kuò)增內(nèi)參基因和目的基因,,從而檢測目的基因的表達(dá)情況,。

多重?zé)晒鈾z測,,可以通過單個PCR反應(yīng)中進(jìn)行多個基因的擴(kuò)增從而減少qPCR反應(yīng)所需要的樣品量,且該方式和單重?zé)晒舛繖z測一樣靈敏準(zhǔn)確。除了節(jié)省樣本量外,還可節(jié)省試劑以及設(shè)置實(shí)驗(yàn)程序和分析實(shí)驗(yàn)結(jié)果所需要的時間。單孔擴(kuò)增多個基因也可最大限度地減少移液誤差,。

使用多重?zé)晒舛縋CR也有需要注意的事項(xiàng),其中最為重要的是,,需要保證不同基因在單重?zé)晒舛糠磻?yīng)中和多重?zé)晒舛糠磻?yīng)中的結(jié)果是一致的,。尤其是擴(kuò)增的基因中同時存在著低豐度表達(dá)基因和高豐度表達(dá)基因。

 

 
兩步RT-qPCR與一步RT-qPCR的區(qū)別
 
兩步RT-qPCR首先在一管中使用反轉(zhuǎn)錄酶將RNA反轉(zhuǎn)錄成cDNA,,通常選用隨機(jī)引物,、oligo dT或基因特異性引物進(jìn)行反轉(zhuǎn)錄,。完成反轉(zhuǎn)錄后,吸取約10%左右的cDNA用于后續(xù)熒光定量PCR,。

 

 

 
兩步法RT-qPCR的優(yōu)點(diǎn)
 
 
  • cDNA量充足:反轉(zhuǎn)錄后產(chǎn)生的cDNA可選擇通過稀釋或者直接使用的方式滿足多次實(shí)時熒光定量實(shí)驗(yàn),;

  • 滿足多靶標(biāo):通過oligo dT和隨機(jī)引物,,可以從單個RNA樣本中擴(kuò)增多個靶標(biāo),。

 

 
兩步法RT-qPCR的缺點(diǎn)
 
 
  • 便捷性差:兩步反應(yīng)需要更多的處理,不太適合高通量應(yīng)用,;

  • 污染風(fēng)險(xiǎn):由于每個步驟都需要使用單獨(dú)的管子,,污染的風(fēng)險(xiǎn)增加;

  • cDNA產(chǎn)物中殘留試劑的抑制:反轉(zhuǎn)錄酶和反轉(zhuǎn)錄緩沖液殘留會一定程度抑制熒光定量PCR,,因此在熒光定量PCR中建議僅使用10%的cDNA進(jìn)行反應(yīng),。若稀釋不當(dāng),相關(guān)殘留組分可能會抑制DNA聚合酶,。

 

當(dāng)起始模板是RNA時,,可選用一步RT-qPCR進(jìn)行定量檢測。和常規(guī)的兩步RT-qPCR不同的是,,該方法在同一管封閉狀態(tài)下,,完成了反轉(zhuǎn)錄和熒光定量PCR,節(jié)省了操作步驟和操作時間,,并減少了反復(fù)開蓋帶來的風(fēng)險(xiǎn),。基因特異性引物是必須的,,用于反轉(zhuǎn)錄和定量擴(kuò)增,。若采用Oligo dT或隨機(jī)引物將會在一步法中產(chǎn)生非特異性產(chǎn)物并減少目標(biāo)產(chǎn)物的量,。

 

 

 
一步法RT-qPCR的優(yōu)點(diǎn)
 
 
  • 減少污染:一管一步式可防止在反轉(zhuǎn)錄和熒光定量PCR階段之間引入污染物;

  • 便捷:移液步驟減少,,手動操作時間減少,;

  • 高通量檢測:每個樣本獲得結(jié)果的總時間縮短且可重現(xiàn)性高;

  • 靈敏度高:所有產(chǎn)生的第一鏈cDNA都可用于實(shí)時PCR擴(kuò)增,,一定程度上提高靈敏度,。

 

 
一步法RT-qPCR的缺點(diǎn)
 
 
  • 二聚體風(fēng)險(xiǎn)增加:上下游基因特異性引物在42℃-50℃下更易發(fā)生二聚體聚合,從而導(dǎo)致非特異擴(kuò)增,;

  • 檢測靶標(biāo)數(shù)少:單一RNA模板能夠檢測的靶標(biāo)數(shù)量相對較少,。

 

以上是對不同熒光定量PCR方法的介紹,相信小伙伴們通過小翌的介紹,,對如何選擇適合自己的熒光定量PCR方法已經(jīng)有一定的了解啦,。關(guān)于如何做好qPCR實(shí)驗(yàn),小翌會陸續(xù)在公眾號里傳授秘籍噠,,敬請期待哦,。

 

 
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