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不同SNP檢測技術(shù)的原理——ARMS,、KASP,、TaqMan、分子信標(biāo)及HRM

2023-8-1  閱讀(814)

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不同SNP檢測技術(shù)的原理——ARMS、KASP,、TaqMan,、分子信標(biāo)及HRM

 

單核苷酸多態(tài)性(Single Nucleotide Polymorphisms,SNP)主要是指在基因組水平上由單個核苷酸的變異所引起的DNA序列多態(tài)性,,是人類可遺傳變異中最常見的一種,,占所有已知多態(tài)性的90%以上。當(dāng)SNP發(fā)生在基因編碼區(qū)或基因的調(diào)節(jié)區(qū)域時,,它會對基因表達產(chǎn)生巨大的影響,,從而影響基因的功能,例如鐮狀細(xì)胞貧血,、β地中海貧血等單基因遺傳病的發(fā)生主要是由于SNP的出現(xiàn),。同時,研究人員發(fā)現(xiàn),,SNP可能有助于預(yù)測個體對某些藥物的反應(yīng),,為臨床基因?qū)騻€體化治療提供理論依據(jù)。如CYP2C19參與氯吡格雷,、S-美芬妥英,、奧美拉唑、伏立康唑,、安定,、去甲安定等藥物的代謝,F(xiàn)DA和CFDA分別于2010和2012年將CYP2C19基因檢測的重要性說明納入氯吡格雷的藥物說明書,。
 
SNP所表現(xiàn)的多態(tài)性只涉及到單個堿基的變異,,這種變異可由單個堿基的轉(zhuǎn)換(transition嘧啶和嘧啶之間或者嘌呤和嘌呤之間的交換)或顛換(transversion嘧啶和嘌呤之間的交換)所引起,也可由堿基的插入或缺失所致,。SNP在CG序列上出現(xiàn)較為頻繁,,由于CG中C即胞嘧啶常被甲基化,自發(fā)脫氨后即變?yōu)樾叵汆奏,,因此大多數(shù)情況下,,都是發(fā)生的C→T的轉(zhuǎn)換,而變成A和G的概率很小,,所以一般認(rèn)為SNP是二等位的,,或者是二態(tài)性。
 
圖1.基因組上的SNP位點
 

SNP檢測方法眾多,,大約有20多種,,包括基于陣列的雜交、PCR和測序等,,本文主要介紹基于PCR技術(shù)的部分基因分型方法,。

 

 

01
ARMS-PCR法

ARMS PCR的全稱是突變擴增阻滯系統(tǒng)PCR(Amplification Refractory Mutation System PCR),也稱為等位基因特異性PCR(Allele-Specific PCR, AS-PCR),是基于Taq DNA聚合酶無法修復(fù)引物3’末端的單個堿基錯配,,從而使得擴增受阻的檢測方法,。

 

ARMS PCR將SNP位點設(shè)計在上游引物3’末端,結(jié)合Taqman探針的方法檢測熒光信號值,,從而判斷野生型和突變型等位基因,。換言之,我們應(yīng)用ARMS PCR對野生型和突變型等位基因進行檢測時,,需要設(shè)計兩條3’端核苷酸分別對野生型和突變型特異的上游引物,,以及一條通用的下游引物,一條通用的探針,。在Taq DNA聚合酶作用下,,與模板不能匹配的上游引物將不能形成互補堿基對,從而產(chǎn)生錯配,,鏈延伸反應(yīng)因3’,5’-磷酸二酯鍵形成障礙而受阻,,不能進行延伸,而與模板匹配的引物體系則可以持續(xù)延伸,,由于Taq酶5’到3’外切酶活性,,可將Taqman探針上的熒光基團水解,導(dǎo)致探針上熒光基團與淬滅基團的距離增大,,從而使得熒光信號被儀器檢測到,,最終計算出對應(yīng)的△Ct值。

 

圖2.ARMS-PCR檢測原理

 

在ARMS-PCR基礎(chǔ)上也發(fā)展出了一些改良方法,,如四引物擴增阻滯突變系統(tǒng)PCR(tetra-primer amplification refractory mutation system PCR,,Tetra-primer ARMS-PCR)。該方法需要設(shè)計四條引物,,其中兩條為3’末端位于SNP位點上的內(nèi)引物,,這兩條引物方向相反,且分屬于不同基因型,;另外兩條為通用外引物,且兩條引物與SNP位點的距離應(yīng)不一樣,。將四種不同的引物添加到預(yù)混液中,,第一對引物旨在擴增包含感興趣的SNP(紅色)的DNA序列,另外兩個引物對野生型(Wt)等位基因(黃色)的正向鏈和突變型等位基因(橙色)的反向鏈具有序列特異性,。

 

圖3.四引物擴增阻滯突變系統(tǒng)PCR檢測原理

 

通過瓊脂糖凝膠電泳檢測,,如果樣本是純合的,則會擴增出兩個長度的PCR產(chǎn)物:一個長序列(紅色)和一個短序列(如果是野生型則為黃色,,如果是突變型則為橙色),;如果樣本是雜合的,將擴增出上述三種長度的 PCR 產(chǎn)物。
 
由于凝膠電泳檢測時間較長,,而且開蓋進行產(chǎn)物分析易造成污染,,因此市面上使用ARMS-PCR方法開發(fā)的產(chǎn)品,大部分采用了閉管檢測的實時熒光PCR法,。該方法理論上單個堿基的錯配即可阻礙PCR的擴增,,但在實際檢測時,單個堿基的錯配依然可以延伸擴增,,只是效率較低,。為了提高其特異性,有時需在3’端倒數(shù)第2位或第3位堿基處引入一個錯配堿基,,該錯配堿基與3’末端的錯配堿基共同作用,,以降低非靶標(biāo)序列的擴增效率。此外,,一個位點只需要一條TaqMan探針,,探針序列固定,優(yōu)化上游引物即可,,整體試劑開發(fā)成本較低,、周期較短;結(jié)果判讀方面來看,,只需要看Ct差值或者Ct值有無即可,,高效便捷。但該方法也存在一個樣本需要分兩管進行擴增檢測,、引物設(shè)計難度較大等問題,。

 

 

02
KASP法
KASP是指競爭性等位基因特異性PCR(Kompetitive Allele Specific PCR),是一種基于PCR擴增后熒光檢測的基因分型技術(shù),,最初由英國的KBioscience公司所開發(fā),,目前KBiosciences公司已被英國政府化學(xué)家實驗室(LGC)收購。該方法是基于引物末端堿基的特異性匹配對SNP進行檢測的方法,,其技術(shù)原理如下:

 

第一步
 

引物探針設(shè)計

首先,,針對SNP的等位基因設(shè)計兩條對應(yīng)的上游引物,引物3’末端分別位于各自的SNP位點上,,同時引物5’端各自帶有一段的標(biāo)簽序列,,而下游引物則是一條常規(guī)設(shè)計共用的引物。引物一共是三條,,兩條帶有標(biāo)簽序列的分型上游及一條通用下游,。其次,設(shè)計兩條與上游引物標(biāo)簽序列一致的熒光探針,,探針的5’端分別標(biāo)記不同的熒光基團,,同時對應(yīng)于熒光探針設(shè)計各自互補配對的淬滅探針,,并在淬滅探針的3’端標(biāo)記淬滅基團,探針一共是四條,,兩條熒光探針和兩條淬滅探針,。

第二步
 
普通PCR擴增

在第1輪PCR擴增中,等位基因特異引物(3'末端能配對的)就可識別特定等位基因模板,,完成等位基因識別,,反向通用引物也會結(jié)合并完成整個PCR過程,在此階段,,熒光探針仍與其互補的淬滅探針結(jié)合,,不會產(chǎn)生熒光信號。從第2輪PCR擴增開始,,產(chǎn)物中出現(xiàn)含有通用標(biāo)簽序列(tag sequence)的模板,,這步之后即可把通用標(biāo)簽序列引入與SNP對應(yīng)的PCR產(chǎn)物中。隨后熒光探針與tag互補的DNA鏈結(jié)合而添加到PCR產(chǎn)物中,,因此不再與其互補的淬滅探針結(jié)合,,從而產(chǎn)生熒光信號而被檢測到。

第三步
 
熒光檢測和分析

利用熒光信號檢測儀或熒光定量PCR儀(配有相應(yīng)熒光探針的檢測通道)進行信號讀取,,并用軟件采集信號判別等位基因類型(如果進行聚類分析,,要用到KlusterCaller或SNPviewer軟件)。

 

圖4.KASP法檢測原理

 

KASP法在整個過程中采用降落PCR的程序,,從而保證探針和引物按照預(yù)期進行結(jié)合,,當(dāng)退火溫度高時,引物因為Tm值高,,會先與模板進行特異性的結(jié)合,,然后在Taq酶作用下進行擴增,使得探針擴增的原始模板得到富集,,隨著退火溫度降低,,探針開始結(jié)合模板,然后產(chǎn)生熒光信號,,最終在低于40度情況下通過讀取終點的熒光信號來進行SNP分型,,保證了該方法很高的分型準(zhǔn)確性。另外,,該方法針對上游引物標(biāo)簽序列合成通用探針,,可以與各種不同的基因特異引物配合使用,而不需要針對每個特定的位點進行探針合成,,這極大降低了實驗的試劑成本。其次,,KASP在實驗操作上滿足低,、中,、高通量基因分型的要求,相比于其他技術(shù),,具有一定的靈活性,,更容易實現(xiàn)高通量和自動化檢測。該技術(shù)目前已在農(nóng)作物分子標(biāo)記輔助育種,、種質(zhì)資源鑒定,、遺傳圖譜構(gòu)建和種子純度鑒定等領(lǐng)域得到了廣泛的應(yīng)用。

 

 

03
TaqMan探針法

TaqMan探針是一種雙標(biāo)記,、自淬滅的水解探針,,在PCR反應(yīng)中加入兩條兩端帶有不同熒光標(biāo)記的特異探針來識別不同的等位基因。其5’和3’末端分別標(biāo)記熒光基團和淬滅基團,,在探針結(jié)構(gòu)完整時兩者距離較近,,熒光基團的信號可被淬滅。而在PCR擴增過程中,,若TaqMan探針與靶標(biāo)序列匹配,,探針則可結(jié)合在DNA模板上,此時Taq酶延伸至探針位置時,,其外切酶活性將切割水解探針,,釋放熒光基團,使得熒光信號增強,。而且,,隨著擴增產(chǎn)物的增多,熒光信號越來越強,,從而可通過儀器實時監(jiān)測熒光信號的變化過程,。

 

由于MGB探針的長度可以設(shè)計得更短(短至13個堿基),有利于提高探針的識別特異性,,因此用于檢測SNP的TaqMan探針常用MGB修飾,,在TaqMan探針的3’端結(jié)合小溝結(jié)合物(minor groove binder,MGB),,MGB與DNA螺旋的小溝(minor groove)契合,,通過穩(wěn)定DNA雙螺旋結(jié)構(gòu)來提高雜交的準(zhǔn)確性和穩(wěn)定性,。另外MGB探針包括一個不發(fā)光的淬滅基團(NFQ),,能夠真正消除傳統(tǒng)淬滅基團產(chǎn)生的背景熒光信號,提高信噪比,,提高檢測靈敏度,。

 

圖5 TaqMan探針法檢測原理

 

TaqMan探針法相對而言,,方法成熟、操作便捷,,體系/平臺相對開放,,臨床端認(rèn)可度高,,在注冊文件審核等方面更有優(yōu)勢,是最常見的SNP分型方法之一,;但是其也有不可忽視的限制性,,如每個位點需要兩條探針,探針價格昂貴,,因此TaqMan探針法通常用于少量SNP位點大量樣本的分析,,且對于近距離SNP位點探針設(shè)計也是比較困難的。

 

 

04
分子信標(biāo)法

分子信標(biāo)是一段雙標(biāo)記的寡核苷酸探針,,其5’末端和3’末端分別標(biāo)記熒光基團和淬滅基團,,且探針5’端和3’端的部分堿基可互補配對,從而形成莖環(huán)結(jié)構(gòu),,使得熒光基團和淬滅基團相互靠近而熒光信號較低,。分子信標(biāo)的環(huán)狀結(jié)構(gòu)部分包含SNP檢測位點,當(dāng)模板與分子信標(biāo)環(huán)狀結(jié)構(gòu)的核酸序列匹配時,,分子信標(biāo)可與模板雜交形成伸展?fàn)顟B(tài),,從而導(dǎo)致熒光基團和淬滅基團的空間距離拉大,熒光信號增強,,因此可被儀器檢測,,并確定SNP位點。使用不同熒光基團標(biāo)記的分子信標(biāo),,則可區(qū)分SNP類型,。

 

圖6.分子信標(biāo)法檢測原理

 

分子信標(biāo)法與TaqMan探針法類似,均是通過探針中單個堿基的識別能力區(qū)分SNP,,只是分子信標(biāo)采用莖環(huán)結(jié)構(gòu),,而TaqMan探針使用MGB修飾,以提高探針對SNP的識別特異性,。該方法本底低,,特異性高,靈敏性高,,不必與未反應(yīng)的探針分離即可檢測,,可用于活體分析;但是探針合成時標(biāo)記較復(fù)雜,,設(shè)計難度大,。在進行分子信標(biāo)的研究和應(yīng)用時,莖干區(qū)和環(huán)狀區(qū)的序列設(shè)計是關(guān)鍵所在,這種設(shè)計不僅決定了其構(gòu)象,,使在雜交后淬滅基團與熒光基團之間的距離達到足夠大,,而且決定了其合適的使用溫度。其次,,環(huán)境pH值,、純度也是影響分子信標(biāo)的重要因素,,pH值過高,分子信標(biāo)的發(fā)卡結(jié)構(gòu)可能被破壞,,出現(xiàn)假陽性結(jié)果。

 

 

05
高分辨率熔解曲線(HRM)

PCR擴增的熔解曲線取決于其擴增序列,,序列中一個堿基的突變都可以導(dǎo)致雙鏈DNA的解鏈溫度發(fā)生變化,,通過實時熒光定量PCR儀監(jiān)測這種細(xì)微的溫度變化,可以知道擴增的序列中是否有突變發(fā)生,,從而對其進行基因分型,。


高分辨率熔解曲線(high-resolution melting analysis, HRM)是通過特定染料與擴增特定的DNA區(qū)域,在高分辨率熔解條件下對擴增產(chǎn)物進行溫度升降,,通過熔解曲線的變化區(qū)分不同的基因型或等位基因,。HRM檢測通常使用飽和熒光染料(如:LC Green、LC Green Plus,、SYTO 9等),,具有更強的DNA結(jié)合能力,且不影響PCR擴增,,在DNA解鏈過程中也不會發(fā)生重排,,使得熔解曲線具有更高的分辨率。


核酸片段的固有特性,,如DNA序列的長度,、GC含量和堿基互補性差異等,均能影響高分辨率熔解曲線,,而結(jié)合高精度熒光定量PCR儀,,其分辨精度則可達到對單個堿基差異的區(qū)分,從而可用于確定SNP位點,。

 

圖7.高分辨率熔解曲線法檢測SNP結(jié)果示意圖

 

該方法引物設(shè)計簡單,,且單堿基改變、插入,、缺失都能通過HRM來檢測,,實驗操作簡單,不需要探針,,成本相對較低,,并且可以發(fā)現(xiàn)未知突變(但不能知道具體的突變類型)。但是HRM技術(shù)對實驗儀器的溫度分辨率要求相當(dāng)高,,需要達到0.02~0.1℃,,每升高1℃采集熒光25次,以滿足對單堿基差異的區(qū)分,。對溫度均一性同樣要求較高,,Tm的標(biāo)準(zhǔn)偏差為0.020-0.264℃(孔間溫度均一性要達到0.264℃以內(nèi)才能保證HRM分析結(jié)果的準(zhǔn)確性),,一般PCR兩孔間溫差在0.3~0.5℃,這就導(dǎo)致兩孔間最終熔解溫度相差較大,,無法保證HRM分析結(jié)果的準(zhǔn)確性,。

 

SNP分型原料分享

翌圣生物作為上游原料企業(yè),在分子酶領(lǐng)域深耕多年,,目前已開發(fā)了ARMS-PCR法及TaqMan探針法的SNP分型檢測通用原料,,已被下游廠家應(yīng)用于腫瘤伴隨診斷、藥物基因組學(xué),、單基因遺傳病,、疾病易感性研究等多個領(lǐng)域。

 

產(chǎn)品名稱貨號備注
2×Hieff Unicon® TaqMan SNP Genotyping Master Mix13152ESTaqMan探針法
2×Hieff® Blood Direct TaqMan qPCR Master Mix(Low ROX)13095ES
2×Hieff Unicon® Multiplex ARMS qPCR Mix13755ESARMS-PCR法
2×Hieff Unicon® Multiplex ARMS qPCR Kit13229ES
Hieff UNICON® HotStart Super Specific Taq DNA Polymerase14318ES單酶
10×Taq PCR Buffer(with MgCl2)11373ES通用Buffer

 

通過上面SNP科普般的分享,,相信大家對部分主流SNP檢測方法及特點有了基本的了解,,那SNP主要在哪些應(yīng)用領(lǐng)域起作用,以及常見的SNP問題有哪些,,限于篇幅原因,,敬請期待下篇SNP干貨分享哦!


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