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活細(xì)菌/死細(xì)菌染色試劑盒

2019-7-22  閱讀(1373)

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產(chǎn)品信息

產(chǎn)品名稱產(chǎn)品編號規(guī)格儲存價格
Live & Dead Bacterial Staining Kit活細(xì)菌/死細(xì)菌染色試劑盒40274ES60100 T4℃避光保存3683.00

 

產(chǎn)品描述

試劑盒內(nèi)含兩種熒光染料DMAO和EthD-III,,可分別將活細(xì)菌和死細(xì)菌染上綠色和紅色。其中DMAO是一種綠色核酸熒光染料,,可染色活細(xì)菌和死細(xì)菌,。EthD-III是一種紅色核酸熒光染料,,僅染色細(xì)胞膜受損的死細(xì)菌。將DMAO和EthD-III混合使用染色時具有完整細(xì)胞膜的細(xì)菌呈現(xiàn)綠色,,而具有受損細(xì)胞膜的細(xì)菌呈現(xiàn)綠色和紅色。結(jié)果可以通過熒光顯微鏡或流式細(xì)胞儀來分析,,適用于大多數(shù)細(xì)菌類型,。

細(xì)菌活力的常見標(biāo)準(zhǔn)是細(xì)菌在合適的營養(yǎng)培養(yǎng)基中繁殖的能力,,稱為生長測定。該試劑盒通常與在液體或固體培養(yǎng)基中的生長測定結(jié)果有著很好的一致性,。在某些條件下,膜損傷的細(xì)菌可能會在營養(yǎng)培養(yǎng)基中恢復(fù)并繁殖,而這種細(xì)菌在該測定中可能會被認(rèn)為死亡,。相反,,一些具有完整膜的細(xì)菌可能無法在營養(yǎng)培養(yǎng)基中繁殖,,但這些細(xì)菌在該測定中可能被認(rèn)為是活的,。因此,如果發(fā)現(xiàn)該檢測和細(xì)菌生長測定之間有相當(dāng)大的差異,,應(yīng)該考慮上述的可能性,。

光譜特性DMAO:Ex/Em=503/530nm(withNDA),; EthD-III:Ex/Em=530/620nm(withNDA)


產(chǎn)品組分

編號組分名稱產(chǎn)品編號/規(guī)格
40274ES60(100T)
40274-ADMAO2 vials (100 μL each)
40274-BEthD-III2 vials (150 μL each)

 

運輸與保存方法

冰袋(wet ice)運輸,。儲存于 4ºC,,至少可以儲存6個月。


注意事項

操作時請采取防護(hù)措施,,穿防護(hù)服,、戴一次性手套等,。


使用方法

活、死細(xì)菌樣品對照制備

1. 在液體培養(yǎng)基中培養(yǎng)4 mL的細(xì)菌至晚期對數(shù)期,。

2. 在EP管中準(zhǔn)備兩份1mL的細(xì)菌液,并在5,000-10,000g條件下離心10-15 min,。

3. 去除上清液,,在其中一支EP管中加入0.3mL的0.85% NaCl重懸細(xì)菌,,在另一管中加入1 mL的0.85% NaCl重懸細(xì)菌。

4. 在含有0.3 mL的0.85% NaCl的管中加入0.7 mL異丙醇,,充分混合(終濃度為70% 的異丙醇)用以制備死細(xì)菌樣品,。

5. 將兩種樣品在室溫下孵育1 h,,每15 min混合一次。

6. 兩種樣品在5,000-10,000g條件下離心10-15 min,。

7. 去除上清,在兩種樣品中加入1 mL的0.85% NaCl重懸細(xì)菌,,并如步驟6再次離心,。

8. 使用分光光度計測定兩種菌懸液在670 nm處的吸光值(OD670),。

9. 將兩種菌懸液(活的和死亡的)密度調(diào)整到108個細(xì)菌/ mL(OD670≈0.3),然后用0.85% 的NaCl以1:100稀釋,,使終密度為106個細(xì)菌/ mL,。

10. 如下所示混合兩種菌懸液以獲得所需的活細(xì)胞:死細(xì)胞比率,。

表1. 活、死菌懸液按一定體積混合以達(dá)到所需的活細(xì)胞,、死細(xì)胞比例

熒光顯微鏡的染色方法

1. 將1體積的DMAO和2體積的EthD-III在微量離心管中混合,充分混合后加入8體積的0.85% NaCl溶液以得到100×染料溶液,。

2. 每100 μL菌懸液,,加1 μL的100×染料溶液,。

3. 充分混合,室溫下在黑暗中孵育15 min,。

4. 取5 μL染色后的菌懸液滴在帶有18 mm方形蓋玻片的載玻片上。

5. 在熒光顯微鏡下觀察,?;罴?xì)菌和死細(xì)菌的熒光可以在任何標(biāo)準(zhǔn)的FITC長效過濾器下同時觀察到,。或者,,活的(綠色熒光)和死的(紅色熒光)細(xì)菌可以分別用FITC和Cy3(或TexasRed)通道觀察,。

注意:
1) 在對細(xì)菌染色之前,必須注意除去生長介質(zhì)的殘留,。核酸和其他培養(yǎng)基組分可以以某種方式結(jié)合DMAO和EthD-III染料,導(dǎo)致不可接受的染色變化,。簡單的洗滌步驟通常足以從細(xì)菌懸浮液中除去干擾介質(zhì)組分,。不建議使用磷酸鹽緩沖液,因為它們會降低染色效率,。

2) 在開始正式實驗前應(yīng)調(diào)節(jié)染料濃度來使DMAO標(biāo)記活細(xì)菌、使EthD-III標(biāo)記死細(xì)菌進(jìn)行區(qū)分,。*濃度可能因細(xì)菌菌株的不同而異,。一般使用能夠提供充足信號的低染料濃度,。以下條件針對大腸桿菌活/死細(xì)胞染色進(jìn)行了優(yōu)化。


細(xì)胞流式的染色方法

實驗開始前,,請閱讀熒光顯微鏡染色步驟下的注意事項。

1. 根據(jù)表1,,在EP管中加入11種不同比例的活細(xì)菌和死細(xì)菌,。11種樣品中每種的體積1 mL,。

2. 將12 μL的DMAO儲備溶液與24 μL的EthD-III儲備液在微量離心管中混合。11個樣品中的每個加入3 μL的混合染料,,通過上下吹打幾次*混合,。(注意:需要準(zhǔn)備另外的對照細(xì)菌樣品用于單獨的DMAO和單獨的EthD-III染色)

3. 室溫下在黑暗中孵育15 min,。

4. 使用流式細(xì)胞儀分析每個樣品,使用DMAO陽性細(xì)胞的FITC通道和EthD-III陽性細(xì)胞的PI或PE通道,。

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