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ELISA試劑盒實驗原理,、步驟以及問題分析
閱讀：2988 發(fā)布時間：2018-3-9ELISA試劑盒實驗原理
酶聯(lián)免疫吸附測定(enzyme linked immunosorbent assay,，ELISA)原理
1971年Engvall和Perlmann發(fā)表了酶聯(lián)免疫吸附劑測定(enzyme linked immunosorbent
assay,，ELISA)用于IgG定量測定的文章,，使得1966年開始用于抗原定位的酶標(biāo)抗體技術(shù)發(fā)展成
液體標(biāo)本中微量物質(zhì)的測定方法。
ELISA的基礎(chǔ)是抗原或抗體的固相化及抗原或抗體的酶標(biāo)記,。結(jié)合在固相載體表面的抗原或抗
體仍保持其免疫學(xué)活性,，酶標(biāo)記的抗原或抗體既保留其免疫學(xué)活性，又保留酶的活性,。在測定
時,，受檢標(biāo)本(測定其中的抗體或抗原)與固相載體表面的抗原或抗體起反應(yīng)。用洗滌的方法使
固相載體上形成的抗原抗體復(fù)合物與液體中的其他物質(zhì)分開,。再加入酶標(biāo)記的抗原或抗體,，也
通過反應(yīng)而結(jié)合在固相載體上。此時固相上的酶量與標(biāo)本中受檢物質(zhì)的量呈一定的比例,。加入
酶反應(yīng)的底物后,，底物被酶催化成為有色產(chǎn)物，產(chǎn)物的量與標(biāo)本中受檢物質(zhì)的量直接相關(guān),，故
可根據(jù)呈色的深淺進行定性或定量分析,。
由于酶的催化頻率很高，故可極大地地放大反應(yīng)效果,，從而使測定方法達到很高的敏感度
類型及步驟
ELISA的主要常用類型及步驟
1. 間接法測抗體
間接法是檢測抗體常用的方法,。其原理為利用酶標(biāo)記的抗抗體(二抗)以檢測與固相抗原結(jié)合的
受檢抗體，故稱為間接法,。操作步驟如下：
1)將特異性抗原與固相載體聯(lián)結(jié),，形成固相抗原，洗滌除去未結(jié)合的抗原及雜質(zhì),。
2)加稀釋的樣本,，保溫反應(yīng)。樣本中的特異抗體與固相抗原結(jié)合，形成固相抗原抗體復(fù)合物,。
經(jīng)洗滌后,，固相載體上只留下特異性抗體，樣本中的其他成份在洗滌過程中被洗去,。
3)加酶標(biāo)抗抗體,。固相免疫復(fù)合物中的抗體與酶標(biāo)抗抗體結(jié)合，從而間接地標(biāo)記上酶,。洗滌后
,，固相載體上的酶量與樣本中受檢抗體的量正相關(guān)。
4)加底物顯色,。
2.競爭法測抗原
小分子抗原或半抗原因缺乏可作夾心法的兩個以上的位點,，因此不能用雙抗體夾心法進行測定
，可以采用競爭法模式,。其原理是標(biāo)本中的抗原和一定量的酶標(biāo)抗原競爭與固相抗體結(jié)合,。標(biāo)
本中抗原量含量愈多，結(jié)合在固相上的酶標(biāo)抗原愈少,，后的顯色也愈淺,。小分子激素、藥物
等ELISA測定多用此法,。
如何選擇合適的陽性對照?
陽性對照的基本組成應(yīng)該盡量與檢測樣本的組成一致,，一般陽性對照多以含蛋白保護劑的緩沖
液為基質(zhì)，加入一定量的待檢物質(zhì),。比如,，以人血清為標(biāo)本的測定，陽性對照多用確定的病人
血清或者以復(fù)鈣人血漿為原料加入一定量標(biāo)準(zhǔn)品,。
如何選擇合適的陰性對照?
陰性對照的基本組成也應(yīng)該盡量與檢測樣本的組成一致,，先行檢測確定其中不含待檢物質(zhì)
。比如,，檢測人血清標(biāo)本時,，陰性對照應(yīng)該選擇正常人血清;檢測免疫動物血清中抗體效價時，
陰性對照應(yīng)該選擇該動物的免疫前血清,。
如何選擇優(yōu)化的包被條件?
1.包被抗原的選擇
包被抗原可分為天然蛋白,、重組蛋白和小分子抗原三大類。天然蛋白需經(jīng)純化才能用直接吸附
法包被,，對于含雜質(zhì)較多的抗原可以采用間接捕獲法包被(先用能夠與目的抗原反應(yīng)的物質(zhì)如抗
體直接吸附在酶標(biāo)板上,，再通過特異性反應(yīng)使抗原固相化)。經(jīng)純化的重組蛋白一般皆可直接包
板,。小分子抗原比如多肽以及一些小分子有機化合物,，由于分子量太小,，往往難于直接吸附在
酶標(biāo)板上，一般都先使其與無關(guān)蛋白質(zhì)如BSA等偶聯(lián),，偶聯(lián)物吸附于固相載體上,。
2.包被液的選擇
一般常用的是pH9.6的碳酸鹽緩沖液，如果包被的抗原在堿性條件下不穩(wěn)定的話,，也可以使用
pH7.2的磷酸鹽緩沖液,。
3.包被溫度的選擇
通常是4-8度條件下過一夜或者37度保溫2小時，我們強烈建議4-8度條件下包被,，有利于蛋白
活性的保持,。
4.包被濃度的選擇
包被的適濃度隨固相載體和包被物的性質(zhì)變化，一般蛋白質(zhì)的包被濃度為1-5ug/ml,，要明確
針對特定包被抗原的適包被濃度需要通過實驗來確定。
包板后需要封閉嗎?應(yīng)該選擇什么樣的封閉體系?
封閉是否必要,，取決于ELISA的模式及具體的實驗條件,。一般說來，雙抗體夾心法,，只要酶標(biāo)
記物是高活性的,，操作時洗滌*，不經(jīng)封閉也可得到滿意的結(jié)果,。而在間接法測定中,，封閉
一般是*的。
常用的封閉劑有0.05%-0.5%的BSA,、10%的小牛血清,、1%明膠、5%的脫脂奶粉,，AbMART推薦使
用5%脫脂奶粉,，價廉而且封閉能力強，不過5%脫脂奶粉只適合短期內(nèi)使用,，不宜長期保存,，所
以試劑盒中較少使用。
如何正確使用酶結(jié)合物?
1.酶結(jié)合物的稀釋液
在稀釋液中常加入高濃度的無關(guān)蛋白質(zhì)(例如1%BSA或5%脫脂奶粉),，通過競爭抑制酶結(jié)合物在
固相載體上的非特異性吸附,。一般還加入能夠抑制蛋白質(zhì)吸附于塑料表面的非離子型表面活性
劑，如吐溫20(0.05%的濃度較為適宜),。
2.正確稀釋酶結(jié)合物
酶結(jié)合物的合適工作濃度需要通過預(yù)實驗來確定,，濃度過高易導(dǎo)致本底偏高，濃度過低則會導(dǎo)
致陽性信號的減弱,。
酶結(jié)合物在使用前稀釋,，稀釋后的酶結(jié)合物不宜長期保存,，因為低濃度的酶結(jié)合物極易失
活。
問題/可能的原因/解決方法
1,、問題：陰性對照產(chǎn)生了陽性的結(jié)果
可能的原因：試劑或者耗材污染
解決方法：更換試劑,，使用一次性耗材
2、問題：洗板出現(xiàn)問題
解決方法：更換更強配方的洗滌液,，增加洗板次數(shù),，延長洗板時間
（如果是在雙抗體夾心法中出現(xiàn)，有可能是包被抗體與二抗間有交叉反應(yīng),，則要更換包被抗體或二抗）
3,、問題：二抗產(chǎn)生了非特異性吸附
解決方法：減少二抗使用量，縮短二抗反應(yīng)時間
4,、問題：顯色液不新鮮
解決方法：使用現(xiàn)配的顯色液
5,、問題：反應(yīng)信號偏低
可能的原因：包被條件不合適
解決方法：提高包板濃度，延長包板時間
6,、問題：梯度稀釋做ELISA時產(chǎn)生跳孔現(xiàn)象
可能的原因：酶標(biāo)板疊放導(dǎo)致傳熱不均勻,，各孔反應(yīng)溫度有差異
解決方法：盡量避免酶標(biāo)板疊放在一起
7、問題：移液器稀釋時未能保持連續(xù)性
解決方法：定期校準(zhǔn)移液器,，確保移液器的正確使用