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供貨周期	現(xiàn)貨	應(yīng)用領(lǐng)域	綜合

產(chǎn)品描述

COSMOSIL Cholester色譜柱是反相體系的HPLC柱,，膽甾醇鍵合硅膠填料，具有和傳統(tǒng)的烷基鍵合C18,、C30硅膠填料一樣的疏水性,，但是在相同的分析條件下，Cholester對疏水化合物的立體選擇性好,。

Cholester與C18柱具有相同的疏水性,。因此使用Cholester代替C18柱或C30柱時,，不需要改變分析條件,。與傳統(tǒng)的C18柱相比,，Cholester具有更強的選擇性和分離同分異構(gòu)體或結(jié)構(gòu)類似物的能力，它可以很好的代替?zhèn)鹘y(tǒng)C18色譜柱,。

· 膽甾醇基固定相

· 使用條件與C18柱相同

· 提高了立體選擇性和幾何異構(gòu)體的分離度

· 適用于天然物的分離

<strong>COSMOSIL Cholester色譜柱</strong>

規(guī)格

色譜柱	5μm Cholester
內(nèi)徑(mm)	2.0	3.0	4.6	10		20		28
柱長(mm)	ALL	ALL	ALL	20-150	250	20-100	150-250	ALL
出廠溶劑	乙腈 / 水 = 60 / 40	甲醇 / 水 = 70 / 30			甲醇 / 水 = 80/ 20	甲醇 / 水 = 70 / 30	甲醇 / 水 = 80/ 20
沖洗方法	去除色譜柱內(nèi)的緩沖液,，鹽，酸的方法：使用不含緩沖液,，鹽,，酸的流動相沖洗10-15分鐘。例：流動相為甲醇/磷酸緩沖液（20mmol/L） =50/50時,，就使用甲醇/水 =50/50沖洗沖洗色譜柱內(nèi)附著物的方法,，基線不穩(wěn)時的解決方法樣本不是蛋白質(zhì)時，使用甲醇或四氫呋喃沖洗,。樣品是蛋白質(zhì)時,，使用含0.1%三氟·乙酸的50-70%的乙腈/水沖洗
保存方法	短期（數(shù)日）保存：使用不含緩沖液，鹽,，酸的流動相沖洗10-15分鐘,。保存。例：流動相為甲醇/磷酸緩沖液（20mmol/L） =50/50時,，就使用甲醇/水 =50/50沖洗長期（1個月以上）保存：使用后,，先用不含酸和鹽的流動相清洗色譜柱，再將流動相置換為乙腈/水=70/30或甲醇/水=70/30,，保存,。
pH范圍	pH2～pH7.5
最大耐壓	20MPa			15MPa
溫度范圍	最高可耐60度，建議在20~50度下進行分析,。
可使用的溶劑	除堿溶液和強酸溶液（pH1.5以下）以外都可以使用,。（強堿溶液會使硅膠溶化，強酸溶液會使固定相脫落）注意點：溶劑粘度過高會導(dǎo)致壓力上升,，請將壓力控制在20Mpa以下,。使用酸性流動相或凝固點高的溶劑后，必須清洗色譜柱,。
注意事項	一般情況下緩沖液濃度為0.005~0.02 mol/L即可,。流動相在使用前一定要通過0.5μm以下的濾膜過濾。蛋白質(zhì)反相模式分析時,，請使用大孔徑色譜柱（孔隙直徑300?) COSMOSIL Protein - R（粒徑5μm）,。

色譜柱	2.5μm Cholester
內(nèi)徑(mm)	2.0	3.0
柱長(mm)	ALL	ALL
出廠溶劑	乙腈 / 水 = 50 / 50
沖洗方法	去除色譜柱內(nèi)的緩沖液，鹽,，酸的方法：使用不含緩沖液,，鹽,，酸的流動相沖洗10-15分鐘。例：流動相為甲醇/磷酸緩沖液（20mmol/L） =50/50時,，就使用甲醇/水 =50/50沖洗沖洗色譜柱內(nèi)附著物的方法,，基線不穩(wěn)時的解決方法樣本不是蛋白質(zhì)時，使用甲醇或四氫呋喃沖洗,。樣品是蛋白質(zhì)時,，使用含0.1%三氟·乙酸的50-70%的乙腈/水沖洗
保存方法	短期（數(shù)日）保存：使用不含緩沖液，鹽,，酸的流動相沖洗10-15分鐘,。保存。例：流動相為甲醇/磷酸緩沖液（20mmol/L） =50/50時,，就使用甲醇/水 =50/50沖洗長期（1個月以上）保存：使用后,，先用不含酸和鹽的流動相清洗色譜柱，再將流動相置換為乙腈/水=70/30或甲醇/水=70/30,，保存,。