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膠質(zhì)細胞培養(yǎng)
最近更新時間:2014-10-29
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取材及膠質(zhì)細胞的混合培養(yǎng)
1,、P2 SD大鼠經(jīng)低溫麻醉后以碘酒和75%乙醇消毒,,無菌操作下,斷頭放入預(yù)冷的D-Hanks液中,,在解剖顯微鏡下取大腦皮層并除去腦膜,。
2、剪碎組織成1mm3大小,,加入胰酶-EDTA消化液并放入37℃孵箱內(nèi)消化20min,,中間搖晃一次。
3、隨后用滴管吸出組織轉(zhuǎn)移到裝有預(yù)冷的MEM+10%FBS(Glial Medium,,GM)的離心管內(nèi)終止消化液作用5min,。
4、吸出組織轉(zhuǎn)移到另一支裝有冷的GM的離心管內(nèi),,用火焰拋光的巴斯德滴管吹打數(shù)次,,靜置后取上清并吸到另一支離心管內(nèi)。重復(fù)上述步驟2~3次,。
5,、所得上清于800r/min離心5min,棄上清,,管內(nèi)加入新鮮GM并吹打成單細胞懸液,。細胞計數(shù),調(diào)整細胞密度按1.5×105/cm2種入25cm2培養(yǎng)瓶,,放入孵箱培養(yǎng),。以后每隔2~3d進行全量換液。
搖床振搖分離星形膠質(zhì)細胞和寡突膠質(zhì)細胞
培養(yǎng)至7~10天,,換液后放入孵箱繼續(xù)培養(yǎng)24h,,取出擰緊培養(yǎng)瓶蓋,于37℃恒溫搖床上280r/min搖動18h,。此時寡突膠質(zhì)細胞90%以上在培養(yǎng)懸液內(nèi)而與瓶底貼壁的星形膠質(zhì)細胞分離,。
分離培養(yǎng)懸液內(nèi)的寡突膠質(zhì)細胞
吸出懸液至離心管內(nèi)950r/min離心10min,棄上清后管內(nèi)加入新鮮GM,,吹打成單細胞懸液,,按1.5×105/cm2種入預(yù)先用100μg/L多聚賴氨酸包被好的35mm培養(yǎng)皿培養(yǎng)。24h后換成DF12+N2的無血清培養(yǎng)液,,此后每三天半量換液1次,。
瓶底星形膠質(zhì)細胞的繼續(xù)培養(yǎng)
25cm2培養(yǎng)瓶內(nèi)的星形膠質(zhì)細胞用D-Hanks液洗2次后常規(guī)傳代,以1.5×105/cm2種入預(yù)先用100μg/L多聚賴氨酸包被好的35mm培養(yǎng)皿培養(yǎng),。培養(yǎng)液為GM,,每三天半量換液1次。