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細胞損傷模型
點擊次數(shù):973 發(fā)布時間:2014-10-16
體外肝細胞損傷模型建立(CCl4和H2O2)
1 ,、 大鼠肝細胞的分離和培養(yǎng)
大鼠4%戊巴比妥麻醉,,門靜脈插管,先以無鈣灌流液灌流,,繼以37℃通入O2的Ⅳ型膠原酶灌流液繼續(xù)循環(huán)灌流15 min,。將肝臟移至一平皿內(nèi),輕輕撕去肝包膜后,,加入含5%小牛血清的清洗液,,用吸管吹打成單個肝細胞懸液,,200目尼龍網(wǎng)過濾,,低速離心(500 r·min-1,1 min,,4℃)棄上清,,同法用清洗液反復(fù)洗3次。然后用*1640培養(yǎng)液(內(nèi)含10%小牛血清,105 U·L-1青霉素,,100 mg·L-1鏈霉素和10 mg·L-1胰島素)制成1×109個·L-1肝細胞懸液,。分離的肝細胞經(jīng)0.6%臺盼藍拒染法測得細胞活力大于90%,高碘酸雪夫反應(yīng)顯示糖原法鑒定99%為肝實質(zhì)細胞,。
將上述肝細胞懸液分別加入24孔(每孔1 ml)和96孔(每孔0.1 ml)培養(yǎng)板中,,置37℃,5%CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng),。12~16 h后可見肝細胞貼壁于培養(yǎng)板孔底上生長,。
2 、 CCl4誘導(dǎo)肝細胞壞死性損傷模型的建立
肝細胞培養(yǎng)12 h后,,吸棄上清,,更換培養(yǎng)液并加入不同濃度的CCl4〔(1~16 mmol·L-1),以少量的二甲亞砜助溶,,二甲亞砜終濃度為0.1%(體積分數(shù))〕,,作用不同時間(1~12 h)后,收集24孔板中培養(yǎng)上清檢測AST,,以及肝細胞的MDA含量和GSHpx活性,;同步測定96孔板中培養(yǎng)肝細胞的MTT反應(yīng)。根據(jù)檢測結(jié)果制備CCl4誘導(dǎo)肝細胞損傷的量效和時效曲線,。選擇zui造損傷濃度和損傷時間制備肝細胞的損傷模型,,同時設(shè)溶媒對照組,每組至少設(shè)3個復(fù)孔,。
3 ,、 H2O2誘導(dǎo)肝細胞壞死性損傷模型的建立
同法更換培養(yǎng)液,加入不同濃度的H2O2(0.2~3.2 mmol·L-1),,作用不同時間(0.5~4 h)后,,收集24孔板中培養(yǎng)上清檢測ALT,測定肝細胞的MDA含量,;同步測定96孔板中培養(yǎng)肝細胞的MTT反應(yīng),。根據(jù)檢測結(jié)果制備H2O2誘導(dǎo)肝細胞損傷的量效和時效曲線,選擇zui適損傷濃度和損傷時間制備肝細胞的損傷模型,,同時設(shè)溶媒對照組,,每組至少設(shè)3個復(fù)孔。
4 ,、 檢測指標
(1)AST,、ALT的測定 培養(yǎng)的肝細胞經(jīng)離心(1 800 r·min-1,10 min)后收集上清,,按試劑盒說明書步驟測定上清液中AST和(或)ALT活性,,結(jié)果以U·(106 cell)-1表示,。
(2)肝細胞增殖試驗 采用MTT比色法。
(3)肝細胞谷胱甘肽過氧化物酶(GSHpx)活性的測定 先制備GSH標準曲線,。棄肝細胞培養(yǎng)上清,,加入0.2% Triton-100水溶液0.5 ml,混勻,,2 min后,,離心(2 500 r·min-1,10 min),,取上清液(肝細胞樣品)0.4 ml,,另設(shè)樣品空白管,非酶反應(yīng)管和試劑空白管,,加入各種試劑,。混勻后立即計時,,靜置12 min后,,以樣品空白管調(diào)零點,于423 nm波長處讀得吸光度(A)值,。在GSH標準曲線上查出對應(yīng)的GSH波度,。GSHpx酶活力單位是在37℃,pH6.5條件下,,每106個肝細胞,、每分鐘使GSH濃度下降1 μmol為1個酶活力單位。計算公式為:GSHpx活力單位=([GSH]非酶管-[GSH]樣品管-[GSH]試劑空白管)/3,。結(jié)果以U·(106 cell)-1表示,。
(4) 肝細胞丙二醛(MDA)含量的測定 先制備MDA標準曲線。棄肝細胞培養(yǎng)上清,,加入生理鹽水1 ml,,混勻,移入離心管中,,離心(2 500 r·min-1,,10 min),棄上清,,加15% TCA 2 ml,,破壞細胞并沉淀蛋白質(zhì),加入0.67% TBA 2 ml,,于沸水浴中加熱30 min,。根據(jù)樣本的吸光度值在標準曲線上查出對應(yīng)的濃度,結(jié)果以 nmol·(106 cell)-1表示,。
5 ,、 數(shù)據(jù)處理
數(shù)據(jù)以±s表示,計量資料組間比較采用t檢驗,。兩變量間相互關(guān)系,,采用直線相關(guān)和回歸分析。