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HIEC細(xì)胞 HIEC細(xì)胞 HIEC細(xì)胞
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HIEC細(xì)胞 相關(guān)培養(yǎng)技術(shù) 知識(shí):
【初代培養(yǎng)原理】
將動(dòng)物機(jī)體的各種組織從機(jī)體中取出,,經(jīng)各種酶(常用胰蛋白酶)、螯合劑(常用EDTA)或機(jī)械方法處理,,分散成單細(xì)胞,,置合適的培養(yǎng)基中培養(yǎng),使細(xì)胞得以生存,、生長和繁殖,,這一過程稱原代培養(yǎng)。
儀器:培養(yǎng)箱(調(diào)整至37℃),,培養(yǎng)瓶,、青霉素瓶,、小玻璃漏斗、平皿,、吸管,、移液管、紗布,、手術(shù)器械,、血球計(jì)數(shù)板、離心機(jī),、水浴箱(37℃)
材料:動(dòng)物組織塊
試劑:1640培養(yǎng)基(含20%小牛血清),,0.25%胰酶,Hank′s液,,碘酒
【初代消化培養(yǎng)法】
(1)準(zhǔn)備:取各種已消毒的培養(yǎng)用品置于凈化臺(tái)面,,紫外線消毒20分鐘。開始工作前先洗手,、75%酒精擦拭手至肘部,。
(2)布局:點(diǎn)燃酒精燈,安裝吸管帽,。
(3)處理組織:把組織塊置于燒杯中,,用Hanks液漂洗2~3次,去除血污,;如懷疑組織可能污染,,可先置于含有青鏈霉素的混合液中30~60分鐘。
(4)剪切:用眼科剪把組織切成2~3毫米大小的塊,,以便于消化,。加入比組織塊總量多30~50倍的胰蛋白酶液,然后一并倒入三角燒瓶中,,結(jié)扎瓶口或塞以膠塞,。
(5)消化:或用恒溫水浴,或置于37℃溫箱消化均可,,消化中每隔20分鐘應(yīng)搖動(dòng)一次,,如用電磁恒溫?cái)嚢杵飨谩O瘯r(shí)間依組織塊的大小和組織的硬度而定,。
(6)分離:在消化過程中見消化液發(fā)混濁時(shí),,可用吸管吸出少許消化液在鏡下觀察,如組織已分散成細(xì)胞團(tuán)或單個(gè)細(xì)胞,,立即終止消化,,隨即通過適宜不銹鋼篩,濾掉尚未充分消化開的組織塊,。低速(500~1000轉(zhuǎn)/分)離心消化液5分鐘,,吸出上清,,加入適量含有血清的培養(yǎng)液。
(7)計(jì)數(shù):用計(jì)數(shù)板計(jì)數(shù),,如細(xì)胞懸液細(xì)胞密度過大,,再補(bǔ)加培養(yǎng)液調(diào)整后,分裝入培養(yǎng)瓶中,。對(duì)大多數(shù)細(xì)胞來說,,pH要求在7.2~7.4范圍,培養(yǎng)液呈微紅色,,如顏色偏黃,,說明液體變酸,可用NaHCO23調(diào)整,。
(8)培養(yǎng):置于36.5℃溫箱培養(yǎng),,如用CO2溫箱培養(yǎng),瓶口需用紗布棉塞或螺旋帽堵塞,,紗布塞易生霉菌,,每次換液時(shí)需要換新塞。
【初代組織塊培養(yǎng)法】
《1》剪切:把組織小塊置于小燒杯或青霉素小瓶中,,用Hanks液漂洗二三次以去掉表面血污,,吸靜Hanks液,用眼科剪反復(fù)剪切1mm3塊為止,。
《2》擺布:用彎頭吸管吸取若干小塊,,置于培養(yǎng)瓶中,用吸管彎頭把組織小塊擺布在培養(yǎng)瓶底部,,小塊相互距離以0.5cm為宜,每一25ml培養(yǎng)瓶底可擺布20~30塊,。
《3》輕輕翻轉(zhuǎn)培養(yǎng)瓶,,另瓶底向上,注意翻瓶時(shí)勿另組織小塊流動(dòng),,塞好瓶塞,,置36.5℃溫箱培養(yǎng)2小時(shí)左右(勿超過4小時(shí)),使小塊微干涸,。
《培養(yǎng)》從微箱中取出培養(yǎng)瓶,,開塞,46度斜持培養(yǎng)瓶,,箱瓶底腳部輕輕注入培養(yǎng)液少許,,然后緩緩再把培養(yǎng)瓶翻轉(zhuǎn)過來,讓培養(yǎng)液慢慢覆蓋附于瓶地上的組織小塊,。置溫箱中靜止培養(yǎng),。待細(xì)胞從組織塊游出數(shù)量增多后,。再補(bǔ)加培養(yǎng)液。
【傳代培養(yǎng)法原理】
細(xì)胞在培養(yǎng)瓶長成致密單層后,,已基本上飽和,,為使細(xì)胞能繼續(xù)生長,同時(shí)也將細(xì)胞數(shù)量擴(kuò)大,,就必須進(jìn)行傳代(再培養(yǎng)),。 傳代培養(yǎng)也是一種將細(xì)胞種保存下去的方法。同時(shí)也是利用培養(yǎng)細(xì)胞進(jìn)行各種實(shí)驗(yàn)的必經(jīng)過程,。懸浮型細(xì)胞直接分瓶就可以,,而貼壁細(xì)胞需經(jīng)消化后才能分瓶。
【材料和試劑】
1)細(xì)胞:貼壁細(xì)胞株
2)試劑:0.25%胰酶,、1640培養(yǎng)基(含10%小牛血清)
3)儀器和器材:倒置顯微鏡,,培養(yǎng)箱、培養(yǎng)瓶,、吸管,、廢液缸等
【操作步驟】
1)吸除培養(yǎng)瓶內(nèi)舊培養(yǎng)液。
2)向瓶內(nèi)加入胰蛋白酶和EDTA混合液少許,,以能覆滿瓶底為限,。
3)置溫箱中2~5分鐘,當(dāng)發(fā)現(xiàn)細(xì)胞質(zhì)回縮,,細(xì)胞間隙增大后,,立即終止消化。
4)吸除消化液,,向瓶內(nèi)注入Hanks液數(shù)毫升,,輕輕轉(zhuǎn)動(dòng)培養(yǎng)瓶,把殘余消化液沖掉,。注意加Hanks液沖洗細(xì)胞時(shí),,動(dòng)作要輕,以免把已松動(dòng)的細(xì)胞沖掉流失,,如用胰蛋白酶液單獨(dú)消化,,吸除胰蛋白酶液后,可不用Hanks液沖洗,,直接加入培養(yǎng)液,。
5)用吸管吸取營養(yǎng)液輕輕反復(fù)吹打瓶壁細(xì)胞,使之從瓶壁脫離形成細(xì)胞懸液,。
6)計(jì)數(shù)板計(jì)數(shù)后,,把細(xì)胞懸液分成等份分裝入數(shù)個(gè)培養(yǎng)瓶中,置溫箱中培養(yǎng),。
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