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技術(shù)文章

實時熒光定量PCR技術(shù)實驗準備與步驟

閱讀:141          發(fā)布時間:2024-7-22

         實時熒光定量PCR技術(shù),,是指在PCR反應(yīng)體系中加入熒光基團,利用熒光信號積累實時監(jiān)測整個PCR進程,,最后通過標準曲線對未知模板進行定量分析的方法,。PCR實驗是分子生物學(xué)中常見用的實驗之一,在基因擴增,、核酸檢測,、基因檢測等方面廣泛應(yīng)用。
一,、PCR實驗前的準備:
在開始PCR實驗之前,,必須準備好DNA模板(基因組DNA或逆轉(zhuǎn)錄制備的cDNA)、特異性引物(自己設(shè)計或用軟件設(shè)計),,并選擇合適的商業(yè)酶(選擇符合您實驗?zāi)康牡拿?span style="font-family:Calibri;box-sizing: border-box;">)

1,、DNA聚合酶。有許多商業(yè) DNA 聚合酶,,它們具有不同的特性,。一般分為兩類:高保真聚合酶和普通Taq聚合酶。如果您想對沒有任何突變的特定 DNA 片段進行 PCR,,請選擇高保真聚合酶,。如果只是想檢測特定序列的存在,就選擇普通的Taq聚合酶,。如果要對T-vector連接的片段進行PCR,,要注意,因為大多數(shù)高保真聚合酶的產(chǎn)物都沒有A-tailing,所以應(yīng)該選擇普通的Taq聚合酶或在PCR實驗后添加A-tailing,。

2,、引物的特異性影響 PCR 成功的概率,良好的引物設(shè)計對 PCR 擴增的成功至關(guān)重要,。當您開始設(shè)計引物時,,應(yīng)仔細考慮以下幾個原則:
①引物的長度。PCR引物一般在18-22bp左右,。這對于引物特異性和在退火溫度下的結(jié)合來說是足夠長的,。
②熔化溫度(Tm)Tm 定義為在此溫度下,,DNA 雙鏈體的一半將解離成單鏈 DNA,。52-58C 范圍內(nèi)的引物 Tm 是最佳的。
GC 含量,。最佳 GC 含量應(yīng)為 40-60%,。
④許多軟件可用于引物設(shè)計,例如primer5Oligo,。這些軟件推薦的引物通??梢詽M足我們的需求。
,、PCR實驗步驟方法如下:
根據(jù)PCR使用說明進行試劑混合預(yù)配,,并設(shè)置 PCR 循環(huán)。簡而言之,,PCR需要經(jīng)過以下循環(huán):

1,、初始化步驟
這僅對熱啟動 PCR 必須的。此步驟將溶液加熱至 94-98°C,,以激活 DNA 聚合酶,。該步驟的時間取決于所使用的聚合酶。
2,、變性步驟
DNA是雙鏈分子,,DNA擴增需要引物與單鏈DNA模板相互作用。在此步驟中,,將反應(yīng)混合物加熱至 94-98°并保持 20-30 秒,,以破壞兩條鏈之間的氫鍵并生成單鏈 DNA 分子。此時進入 PCR 循環(huán),。
3,、退火步驟
變性后,反應(yīng)混合物中的 DNA 模板是單鏈的,。由于引物與DNA模板互補,,當反應(yīng)溫度降低到50-65℃時,,引物會與模板序列匹配,互補堿基之間形成氫鍵,。退火溫度取決于所用引物的Tm,,一般比引物Tm3-5℃左右。該步驟將持續(xù)約 20-40 秒以全退火,,然后聚合酶將定位到引物-模板雜交體以開始 DNA 組裝,。
4伸長步驟
在此步驟中,,DNA 聚合酶開始合成 DNA,,因此溫度應(yīng)為 DNA 聚合酶的最適溫度。一般選擇 72°C,,但有些酶在 68°時效果更好,。這一步與體內(nèi)DNA復(fù)制非常相似,DNA聚合酶將dNTPs添加到引物中,,以5'3'方向與模板互補,,最終產(chǎn)生新的雙鏈DNA片段,。延伸時間取決于目標 DNA 片段的長度和 DNA 聚合酶的能力,。一般來說,DNA 聚合酶每 60 秒產(chǎn)生一千個堿基,。
5,、2~4步稱為一個循環(huán),每循環(huán)一次,,目標片段量翻倍,。一個 PCR 過程使用 30-35 個循環(huán)。在 PCR 循環(huán)的早期,,PCR 產(chǎn)物以指數(shù)速率積累,,而在 PCR 循環(huán)的后期,隨著 dNTPs,、引物的減少和 DNA 聚合酶在變性溫度下的失活,,反應(yīng)減慢,PCR 速率逐漸下降,。
6,、最終伸長率。
30-35個循環(huán)結(jié)束后,,在68-74℃的溫度下最終延伸約5-10分鐘,,以充分延伸剩余的單鏈DNA
7,、貯存,。
最終產(chǎn)品可以在 PCR 機器中維持溫度在 4-10℃,。


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