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細胞凍存實驗重點干貨分享
閱讀:236 發(fā)布時間:2024-5-27細胞凍存是指將細胞放在低溫環(huán)境,,以達到減少細胞代謝的作用,,從而達到對細胞進行長期儲存進行保種的目的,以供后續(xù)實驗或臨床使用。細胞凍存一般采用慢凍原則,,慢凍可使細胞逐步脫水,,細胞不會因為產(chǎn)生大的冰晶而收到損害,。
一、原理
當溫度低至-70℃時,,細胞內(nèi)的代謝活動及酶活性幾乎全部停止,,低于-130℃時,,細胞能達到最佳存活率。液氮可實現(xiàn)細胞的長期保存,。
冷凍保護劑二甲基亞砜(DMSO)能快速穿透細胞膜進入細胞,,降低冰點,,延緩凍存過程,同時增加細胞膜的通透性,,提高細胞內(nèi)離子濃度,,減少細胞內(nèi)冰晶的形成,,從而達到保護細胞的目的。
二,、貼壁細胞凍存操作步驟
1、預熱凍存液;
2、用PBS沖洗細胞,,加入胰酶消化(此步驟同細胞傳代操作),;
3,、終止消化后,,重懸細胞,轉(zhuǎn)移至無菌EP管,1000rpm離心5min;
4,、棄上清,,加入預熱的細胞凍存液,細胞凍存最佳密度為5×10^6~1×10^7/ml,,一般不低于5×10^5/ml,;
5、分裝完畢后,,擰緊凍存管蓋并做好標記,;
6、將分裝好的凍存管轉(zhuǎn)入程序降溫盒,,放入-80℃冰箱過夜,;
7、將凍存管轉(zhuǎn)移至液氮長期保存,。
三,、懸浮細胞凍存操作步驟
1、用移液管將細胞懸液吹吸均勻,,將細胞懸液移入離心管,;
2、1000rpm離心 3 min,,收集細胞沉淀,;
3、用預熱的凍存液重懸細胞,,細胞凍存最佳密度為3-5×10^6/ml,,一般不低于5×10^5/ml;
4,、分裝完畢后,,擰緊凍存管蓋并做好標記;
5,、將分裝好的凍存管轉(zhuǎn)入程序降溫盒,,放入-80℃冰箱過夜;
6,、將凍存管轉(zhuǎn)移至液氮長期保存,。
貼壁細胞凍存操作示意圖
注意事項:
① 細胞培養(yǎng)、傳代以及凍存需要嚴格的無菌操作,。
② 傳代時需要適度的消化,,消化的時間受消化液的種類、配制時間、加入培養(yǎng)瓶中的量等諸多因素的影響,,消化過程中應該注意培養(yǎng)細胞形態(tài)的變化,,一旦胞質(zhì)回縮,連接變松散,,或有成片浮起的跡象就要立即終止消化,。
③ 傳代應在細胞處于對數(shù)期、未達到匯合狀態(tài)時進行,。
④ 細胞凍存液需提前配制,,不可直接將DMSO加入細胞懸液中。
⑤ 應選擇匯合度80%-90%左右,,并且活力達90%以上處于對數(shù)生長期時的細胞進行凍存操作,,確保細胞凍存時狀態(tài)最佳,凍存密度可根據(jù)細胞特性進行調(diào)整,。
⑥ 程序凍存盒,、細胞凍存液、全培養(yǎng)基等試劑都要復溫至室溫備用,。
⑦ 凍存前注意切勿消化時間過長,、吹打力度過重、離心轉(zhuǎn)速過大或離心時間過長,,以免造成細胞損傷,。
⑧ 凍存管的蓋子一定要擰緊,否則水浴復蘇時水會滲入造成污染,。
⑨ 細胞不可長期保存在-80℃冰箱中,,放置時間不要超過3天,。
⑩ 液氮或冰箱距離細胞房較遠,,細胞需要放在干冰或冰盒上運送至細胞房。