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德國耶拿分析儀器有限公司

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原位在線拉曼光譜分析儀在藥物研發(fā)及生產(chǎn)領(lǐng)域的應(yīng)用

閱讀:834      發(fā)布時間:2023-5-10
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?01 引言

制藥和生物制藥研發(fā)及生產(chǎn)中的許多單元操作都受到機(jī)械設(shè)計過程的限制。在線過程監(jiān)控提供了實時過程調(diào)整的能力,,從而優(yōu)化過程結(jié)果,。本文將介紹拉曼光譜在各種單元操作中的應(yīng)用。

 

02 實驗

作為生物工藝或制藥中的PAT,,拉曼光譜分析儀實時提供多個反應(yīng)過程參數(shù)的原位測量,,允許自動監(jiān)測和控制各種單元操作1-4。

圖片

在本文所描述的研究中,,耶拿的Rxn系列拉曼分析儀用于在實驗室/工藝開發(fā)(左)或生產(chǎn)(右)環(huán)境中的細(xì)胞培養(yǎng)和制藥單元操作期間收集拉曼光譜,。

 

圖片

探頭種類多樣、探頭插入方式靈活多樣

 

單元操作

API制造過程‍

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預(yù)測集:55個數(shù)據(jù)點

 驗證集:60個數(shù)據(jù)點

 硬件:Rxn系列拉曼分析儀和帶浸入式光學(xué)元件Rxn-10探頭

 光譜采集:曝光時間50s


混粉過程

 

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硬件:帶Rxn-20探頭的Rxn系列拉曼分析儀

光譜采集:曝光時間1秒

測試條件:對移動的粉末進(jìn)行光譜測量,;低載藥量(<5%w/w)


包衣過程

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 硬件:帶Rxn-20探頭的Rxn系列拉曼分析儀

 光譜采集:2秒/10秒

 測試條件:探頭直接安裝到包衣滾筒中


細(xì)胞培養(yǎng)過程

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硬件:Rxn系列拉曼分析儀和帶生物光學(xué)采集元件的Rxn-10探頭

光譜采集:150×5秒

測試條件:葡萄糖和乳酸的預(yù)測模型和反饋

 

03 結(jié)果與討論

原位在線拉曼光譜定量監(jiān)測奧美拉唑合成反應(yīng)過程4

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  • 隨著API濃度的升高,,奧美拉唑合成過程中API轉(zhuǎn)化為副產(chǎn)物的比率也越來越大;

  • 原位在線拉曼分析儀可以實時確定反應(yīng)終點,,為反應(yīng)以最佳比率進(jìn)行反應(yīng)淬火提供依據(jù),;

  • API含量的最終預(yù)測誤差小于0.1%

 

連續(xù)生產(chǎn)過程中低載藥量制劑的在線監(jiān)測2

圖片

圖片

在最低載藥量條件下(1%w/w),檢測限±1.1%,,與HPLC相當(dāng),。

 

 

原位在線拉曼分析儀實時監(jiān)測多層包衣過程3

圖片

6次光譜采集的滾動平均值提供了最佳結(jié)果

  • 第1層有效值:1.39%

  • 第2層有效值:1.46%

  • 第3層有效值:1.67%

 

 

拉曼光譜控制乳酸補(bǔ)料調(diào)節(jié)mAb半乳糖基化1

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  • 預(yù)測和驅(qū)動葡萄糖和乳酸進(jìn)料的自動化被證明是銨積累的出色控制機(jī)制;

  • 雙重對照條件顯示所需G1F糖型持續(xù)增加約50%,。

 

結(jié)論

原位在線拉曼分析儀在制藥和生物制藥生產(chǎn)的各單元操作中都表現(xiàn)出高度的功能和靈活性。

原位在線拉曼分析儀具有必需的化學(xué)特異性,,可以在API合成過程中區(qū)分奧美拉唑等簡單分子和副產(chǎn)的砜,,預(yù)測誤差<0.1%1

原位在線拉曼分析儀能夠?qū)崟r監(jiān)控混粉過程,,數(shù)據(jù)采集時間為1s,,精度與更費(fèi)力的HPLC相當(dāng)2

傳統(tǒng)的片劑包衣分析需要破壞性取樣,, 指標(biāo)必須從非常小的樣本量中確定,。原位在線拉曼分析儀可以實時監(jiān)測,從而實現(xiàn)自動化和釋放,采集時間為2s,,精度為可接受的精度(<2%)3,。

原位在線拉曼分析儀還可以對蛋白質(zhì)治療劑生產(chǎn)中的最終轉(zhuǎn)譯后修飾提供了前所未有的控制工具或參考4

為了應(yīng)對不斷增加的壓力,,提高藥品質(zhì)量,,同時降低成本和生產(chǎn)時間,該行業(yè)必須采用新一代技術(shù),。原位在線拉曼分析儀已顯示出明顯的優(yōu)勢來滿足許多這些需求,。

 

參考文獻(xiàn)

 

1.

Eyster, T., Talwar, S., Fernandez, J., Foster, S., Hayes, J., Allen, R., Reidinger, S., Wan, B., Ji, X., Aon, J., Patel, P., & Ritz, D. B. (2020). Tuning monoclonal antibody Galactosylation using RAMAN spectroscopy‐controlled lactic acid feeding. Biotechnology Progress, 37(1). https://doi.org/10.1002/btpr.3085

 


2.

Harms,Z.D.,Shi, Z., Kulkarni, R. A., & Myers, D. P. (2019). Characterization of near-infrared and Raman spectroscopy for In-Line monitoring of A Low-drug Load formulation in a Continuous manufacturing process. Analytical Chemistry, 91(13), 8045–8053. https://doi.org/10.1021/acs.analchem.8b05002

 


3.

Radtke, J., & Kleinebudde, P. (2020). Real-time monitoring of multi-layered film COATING processes using Raman spectroscopy. European Journal of Pharmaceutics and Biopharmaceutics, 153, 43–51. https://doi.org/10.1016/j.ejpb.2020.05.018

 


4.

Šahni?, D., Meštrovi?, E., Jedna?ak, T., Habinovec, I., Parlov Vukovi?, J., & Novak, P. (2016). Monitoring and quantification of omeprazole synthesis reaction by in-line raman spectroscopyand characterization of the reaction components. Organic Process Research & Development, 20(12), 2092–2099. https://doi.org/10.1021/acs.oprd.6b00323

 

 

 

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