技術(shù)文章
免疫組化染色科研實(shí)驗(yàn)技術(shù)服務(wù)介紹
閱讀:71 發(fā)布時(shí)間:2024-10-11免疫組化染色
技術(shù)原理
免疫組化,,是應(yīng)用免疫學(xué)基本原理——抗原抗體反應(yīng),,即抗原與抗體特異性結(jié)合的原理,通過化學(xué)反應(yīng)使標(biāo)記抗體的顯色劑(熒光素,、酶,、金屬離子、同位素)顯色來確定組織細(xì)胞內(nèi)抗原(多肽和蛋白質(zhì)),,對(duì)其進(jìn)行定位,、定性及定量的研究,稱為免疫組織化學(xué)技術(shù)(immunohistochemistry)或免疫細(xì)胞化學(xué)技術(shù)(immunocytochemistry),。
實(shí)驗(yàn)步驟


1,、石蠟切片制片,組織取樣后應(yīng)立即放入固定液中,,避免凍存;
2,、冰凍切片制片應(yīng)取用新鮮組織,以免抗原丟失;
3,、組織蠟塊可以保存很長時(shí)間,,但是石蠟切片理論上不能超過半年。冰凍切片不能超過3個(gè)月,。
注意事項(xiàng)
1. 蘇木素復(fù)染時(shí)間需要摸索,,尤其陽性染色也在細(xì)胞核上。
2. DAB顯色時(shí)間需要達(dá)到優(yōu)化,,鏡下觀察達(dá)到陽性染色明顯但背景不太深,。
3. 抗體孵育時(shí)間和抗體濃度需要摸索。尤其一抗孵育最好在4度過夜,。
4. 切片脫蠟和水化要充分,;加反應(yīng)液時(shí)要覆蓋組織充分;每次加液前甩干洗滌液,,但又防止干片,;用組化筆畫圈時(shí)盡量畫大一點(diǎn),否則墨水排斥液體,,引起片周邊干片,。
常見問題
片子著色不均勻,?
脫蠟不充分??梢?0 ℃烤20 min,,立即放入新鮮的xylene1;
水化不全,。應(yīng)經(jīng)常配制新鮮的梯度乙醇,;
抗體沒混勻。用移液器充分混勻一抗/二抗等試劑,;
抗體孵育時(shí),,切片放傾斜;
抗體孵育后PBS沖洗不充分,。
制片厚薄不均勻等問題,。染片盒不平,切片傾斜,。
一抗從4 ℃拿出后,,為什么有人說要37度復(fù)溫,目的是什么,?
一方面,,防止切片從4 ℃直接放入PBS易脫片;
另一方面,,使抗原抗體結(jié)合更穩(wěn)定,。一般不需要,但對(duì)表達(dá)較弱的抗原可能有用,4 ℃和37 ℃度時(shí)分子運(yùn)動(dòng)方式不同,前者分子碰撞機(jī)率和運(yùn)動(dòng)速度小于后者,后者結(jié)合更快,但敏感性也提高了并易造成非特異染色。
切片染色后背景太深,,不易區(qū)分特異性與非特異性著色,?
抗體孵育時(shí)間過長、抗體濃度高易增加背景著色,。這可通過縮短一抗/二抗孵育時(shí)間,、稀釋抗體來控制;
一抗用多克隆抗體易出現(xiàn)非特異性著色,,建議試用單克隆抗體看看,;
內(nèi)源性過氧化物酶和生物素在肝臟、腎臟等組織含量很高,,需要通過延長滅活時(shí)間和增加滅活劑濃度來降低背景染色,;
非特異性組分與抗體結(jié)合,這需要通過延長二抗來源的動(dòng)物免疫血清封閉時(shí)間和適當(dāng)增加濃度來加強(qiáng)封閉效果,;
DAB顯色時(shí)間過長或濃度過高,;
PBS沖洗不充分,殘留抗體結(jié)果增強(qiáng)著色;
標(biāo)本染色過程中出現(xiàn)干片,,易增強(qiáng)非特異性著色,。