PCR的工作機制
PCR由一系列復(fù)雜的化學(xué)反應(yīng),，包含前,、中、后三個階段,。最重要的化學(xué)變化是熱循環(huán)期間的產(chǎn)物合成,。每次循環(huán)后產(chǎn)物、模板,、聚合酶,、引物和脫氧核苷酸的余量都會改變，處于連續(xù)的不穩(wěn)定狀態(tài),。所有的循環(huán)都是從模板和先前產(chǎn)物的變性開始,。當(dāng)溫度較低時，引物退火到模板上,。
早先若干循環(huán)的退火步驟要求引物尋找正確的染色體模板作為它們的目標(biāo),。在中期的循環(huán)中，先前合成的產(chǎn)物優(yōu)先成為模板,。最后幾個循環(huán)中,，增擴后的高濃度產(chǎn)物互相雜交，由此阻止與引物的雜交,。
引物退火后,，Taq DNA聚合酶把自己定位到引物和模板綜合體上，提取介質(zhì)中的自由dNTPs然后沿著模板延伸,。從本質(zhì)上講,，引物和模板的任何反應(yīng)都會造成產(chǎn)物擴展，它們的特異性在最初的幾個循環(huán)中可能很難控制,，得到非特異性產(chǎn)物的摩爾量超過在模板上正確退火位置的量,。PCR反應(yīng)特異性的可靠度依賴于2個引物必須定位到互補的DNA鏈上。進一步講,，退火溫度和Mg2+離子的濃度影響引物穩(wěn)定的雜交到模板上,，雜交位置間距應(yīng)小于10kb。
相比之下,，增擴階段的大部分循環(huán)里,，模板被很好的與先前增擴的片段區(qū)分開。這些片段的數(shù)量取決于早先若干個循環(huán)的嚴密性,。甄選同源性引物的退火位置是較簡單的,，增擴期間由染色體DNA貢獻的有效的模板數(shù)量只是可以忽略一小部分。甄選的復(fù)雜性被超量由引物從互補位點新增擴的片段所降低,。
PCR的化學(xué)計量
熱力學(xué)方面的影響對PCR來講是試劑濃度和模板間的對應(yīng)關(guān)系,。在起先的循環(huán)中PCR試劑的摩爾比率是最高的，隨著PCR產(chǎn)物的增加而降低,。令人驚訝的是這種減低是由增擴的目標(biāo)分子的增加引起的而不是由于試劑的消耗,。最初剩余的引物和脫氧核苷酸與模板的比率是固定的，反應(yīng)結(jié)束后,，dNTP的濃度下降超過1倍,，引物任然剩余95%，Taq DNA聚合酶沒有變化,。增擴千萬倍目標(biāo)分子后,，模板分子遠多于酶分子。當(dāng)產(chǎn)物增加后,，酶全部被占用了,，引物和模板的比率減低，推動自身退火,。當(dāng)自身退火的數(shù)量增加或酶的總量有時,，反應(yīng)處于飽狀態(tài)并停止指數(shù)級的增長。增擴階段是自我受限的,。這個階段之后,，熱循環(huán)轉(zhuǎn)向未在最初幾個循環(huán)中被選擇的欺騙性的目標(biāo)增擴，盡管能夠通過提高開始時Taq DNA聚合酶和引物的含量來維持高試劑比率，但這種修改很可能引起丟失特異性因為引物會胡亂雜交,，出現(xiàn)額外的條帶和斑點,。
熱啟動（hot start）PCR
用于引物設(shè)計的位點因為遺傳元件的定位而受時，如site-directed突變,、表達克隆或用于DNA工程的遺傳元件的構(gòu)建和操作,，熱啟動PCR對提高PCR特異性尤為有效。 盡管Taq DNA聚合酶的最佳延伸溫度在72℃,，聚合酶在室溫仍然有活性,。因此，在PCR配制過程中,，熱循環(huán)剛開始,，以及保溫溫度低于退火溫度時會產(chǎn)生非特異性的產(chǎn)物。這些非特異性產(chǎn)物一旦形成,，就會被有效擴增,。
限制Taq DNA聚合酶活性的常用方法是在冰上配制PCR反應(yīng)液，并將其置于預(yù)熱的PCR儀,。這種方法簡單便宜,，但并不能完成抑制酶的活性，無法全消除非特異性產(chǎn)物的擴增,。熱啟動通過抑制DNA合成,，直到PCR儀達到變性溫度。方法包括延緩加入Taq DNA聚合酶,，在反應(yīng)體系達到90度時,，暫停并保持溫度在70度以上。手工加入聚合酶,，這個方法過于煩瑣,， 尤其是對高通量應(yīng)用容易造成污染。其他的熱啟動方法使用蠟防護層將一種基本成分如鎂離子,、酶,、模板、緩沖液包裹起來,，物理地分隔開,。熱循環(huán)開始后，因蠟熔化而把各種成分釋放出來并混合在一起,。蠟防護層法與手動熱啟動法一樣比較煩瑣,，易受污染，不適用于高通量應(yīng)用,。
還有一種方法是使用inactive DNA Polymerase. polymerase被抗體抑制失活,，當(dāng)變性溫度超過70度時,，抗體也變性了，這樣polymerase又被激活了,。
Booster PCR
整個PCR反應(yīng)過程中引物前后擔(dān)任2種功能,，篩選探針和增擴引導(dǎo)。在最初的幾個熱循環(huán)期間,，每個引物作為探針獨立地活動，篩選所有目標(biāo),。如果一對引物與目標(biāo)雜交,，方向和位置都正確，就意味著目標(biāo)選擇的工作完成了,。接下來在以后的循環(huán)中這對引物引導(dǎo)增擴反應(yīng),。
增擴低濃度的模板（等于或小于100個模板）比如單個細胞，石蠟化的組織有不同的特點,。篩選階段相對于模板而言要有更多剩余的試劑,。稀釋的模板造成難以篩選，因為引物和模板相遇和頻率被大大的降低了,。這種情況更有可能引起引物之間形成二聚體,。Booster PCR是解決這個問題的方法。在此步驟中,，第一個循環(huán)階段使用稀釋后的引物和模板取得固定的引物/模板比例,，大約在107:1。以確保開始擴增時的準確性,，在增擴階段提高引物的濃度到正常水品,。
嵌套的引物
如果增擴出的DNA序列嵌套存在于引物退火位置之間，從大范圍看增擴出的目標(biāo)是同源的,。引物雜交的嚴密性在最初若干個循環(huán)里是寬松的,，允許較高的錯配偏差。這個效果能通過低于計算得到引物退火溫度來達到,。第二步選擇明確的產(chǎn)物,，嚴謹?shù)剡x擇一條已知染色體片段用來增擴。簡單點說就是設(shè)計兩對引物, 一對是長的,，另一對短的是包含在長引物內(nèi)的,，用長引物擴增的產(chǎn)物作為第二次擴增的模板，這樣可以增加產(chǎn)物的量而且可以減少非特異性帶和錯配的情況.
假陰性
PCR反應(yīng)的關(guān)鍵環(huán)節(jié)有①模板核酸的制備,，②引物的質(zhì)量與特異性,，③酶的質(zhì)量， ④PCR循環(huán)條件,。尋找原因亦應(yīng)針對上述環(huán)節(jié)進行分析研究,。
模板：①模板中含有雜蛋白質(zhì),，②模板中含有Taq酶抑制劑，③模板中蛋白質(zhì)沒有消化除凈,，特別是染色體中的組蛋白,，④在提取制備模板時丟失過多，或吸入酚,。⑤模板核酸變性不底,。在酶和引物質(zhì)量好時，不出現(xiàn)擴增帶,，極有可能是標(biāo)本的消化處理,，模板核酸提取過程出了毛病，因而要配制有效而穩(wěn)定的消化處理液,，其程序亦應(yīng)固定不宜隨意更改,。
酶失活：需更換新酶，或新舊兩種酶同時使用,，以分析是否因為酶的活性喪失或不夠而導(dǎo)致假陰性,。需注意的是有時PCR時忘了加Taq酶或電泳時忘了加溴化乙錠。
引物：引物質(zhì)量,、引物的濃度,、兩條引物的濃度是否對稱，是PCR失敗或擴增條帶不理想,、容易彌散的常見原因,。有些批號的引物合成質(zhì)量有問題，兩條引物一條濃度高,，一條濃度低,，造成低效率的不對稱擴增，對策為：①選定一個好的引物合成單位,。②引物的濃度不僅要看OD值,，更要注重引物原液做瓊脂糖凝膠電泳，一定要有引物條帶出現(xiàn),，而且兩引物帶的亮度應(yīng)大體一致,，如一條引物有條帶，一條引物無條帶,，此時做PCR有可能失敗,，應(yīng)和引物合成單位協(xié)商解決。如一條引物亮度高,，一條亮度低,，在稀釋引物時要平衡其濃度。③引物使用過程中應(yīng)高濃度小量分裝保存,，防止多次凍融或長期放冰箱冷藏部分,，導(dǎo)致引物變質(zhì)降解失效,。④引物設(shè)計不合理，如引物長度不夠,，引物之間形成二聚體等,。
