qubit可以用于蛋白濃度測定
常用紫外分光光度法測定蛋白質(zhì)含量,。
以下引用：

6種方法測定蛋白質(zhì)含量
一、微量凱氏（kjeldahl）定氮法
樣品與濃硫酸共熱,。含氮有機物即分解產(chǎn)生氨（消化）,，氨又與硫酸作用，變成硫酸氨,。經(jīng)強堿堿化使之分解放出氨,，借蒸汽將氨蒸至酸液中，根據(jù)此酸液被中和的程度可計算得樣品之氮含量,。若以甘氨酸為例,，其反應(yīng)式如下：
nh2ch2cooh+3h2so4——2co2+3so2+4h2o+nh3 (1)
2nh3+h2so4——(nh4)2so4 (2)
(nh4)2so4+2naoh——2h2o+na2so4+2nh3 (3)  
反應(yīng)（1）、(2)在凱氏瓶內(nèi)完成,，反應(yīng)（3）在凱氏蒸餾裝置中進行,。
為了加速消化，可以加入cuso4作催化劑,，k2so4以提高溶液的沸點,。收集氨可用硼酸溶液，滴定則用強酸,。實驗和計算方法這里從略,。
計算所得結(jié)果為樣品總氮量，如欲求得 樣品中蛋白含量,，應(yīng)將總氮量減去非蛋白
氮即得,。如欲進一步求得樣品中蛋白質(zhì)的含量，即用樣品中蛋白氮乘以6．25即得,。
二,、雙縮脲法（biuret法）
（一）實驗原理
雙縮脲（nh3conhconh3）是兩個分子脲經(jīng)180℃左右加熱，放出一個分子氨后得到的產(chǎn)物,。在強堿性溶液中,，雙縮脲與cuso4形成紫色絡(luò)合物，稱為雙縮脲反應(yīng),。凡具有兩個酰胺基或兩個直接連接的肽鍵,，或能過一個中間碳原子相連的肽鍵，這類化合物都有雙縮脲反應(yīng),。
紫色絡(luò)合物顏色的深淺與蛋白質(zhì)濃度成正比,，而與蛋白質(zhì)分子量及氨基酸成分無關(guān)，故可用來測定蛋白質(zhì)含量,。測定范圍為1-10mg蛋白質(zhì),。干擾這一測定的物質(zhì)主要有：硫酸銨、tris緩沖液和某些氨基酸等。
此法的優(yōu)點是較快速 ,，不同的蛋白質(zhì)產(chǎn)生顏色的深淺相近,，以及干擾物質(zhì)少。主要的缺點是靈敏度差,。因此雙縮脲法常用于需要快速,，但并不需要十分精確的蛋白質(zhì)測定。
（二）試劑與器材
1. 試劑：
（1）標準蛋白質(zhì)溶液：用標準的結(jié)晶牛血清清蛋白（bsa）或標準酪蛋白,，配制成10mg/ml的標準蛋白溶液,，可用bsa濃度1mg/ml的a280為0.66來校正其純度。如有需要,，標準蛋白質(zhì)還可預(yù)先用微量凱氏定氮法測定蛋白氮含量,，計算出其純度，再根據(jù)其純度,，稱量配制成標準蛋白質(zhì)溶液,。牛血清清蛋白用h2o 或0.9%nacl配制，酪蛋白用0．05n naoh配制,。
（2）雙縮脲試劑：稱以1.50克硫酸銅（cuso4•5h2o）和6.0克酒石酸鉀鈉（knac4h4o6•4h2o）,，用500毫升水溶解，在攪拌下加入300毫升10% naoh溶液,，用水稀釋到1升,，貯存于塑料瓶中（或內(nèi)壁涂以石蠟的瓶中）。此試劑可長期保存,。若貯存瓶中有黑色沉淀出現(xiàn)，則需要重新配制,。
2. 器材：
可見光分光光度計,、大試管15支、旋渦混合器等,。
（三）操作方法
1. 標準曲線的測定：取12支試管分兩組,，分別加入0，0.2,，0.4,，0.6，0.8,，1.0毫升的標準蛋白質(zhì)溶液,，用水補足到1毫升，然后加入4毫升雙縮脲試劑,。充分搖勻后,，在室溫（20～25℃）下放置30分鐘，于540nm處進行比色測定。用未加蛋白質(zhì)溶液的第一支試管作為空白對照液,。取兩組測定的平均值,，以蛋白質(zhì)的含量為橫座標，光吸收值為縱座標繪制標準曲線,。
2,、樣品的測定：取2～3個試管，用上述同樣的方法,，測定未知樣品的蛋白質(zhì)濃度,。注意樣品濃度不要超過10mg/ml。