免疫組化未出現(xiàn)預(yù)期的原因分析

如何查找免疫組化未出現(xiàn)預(yù)期的原因,？,，別著急,，聽我慢慢道來,。當(dāng)免疫組化染色沒有出現(xiàn)預(yù)期結(jié)果時(shí)，應(yīng)系統(tǒng)地查找原因,，而每一次只能排除一種可能的原因,。

*種方案:對(duì)照/標(biāo)本無染色
① 確認(rèn)是否忽略了應(yīng)該加的某種試劑，包括一抗,、二抗,、三抗及底物等。
② 確認(rèn)所有的試劑是否按正確的順序加入,，是否孵育了足夠的時(shí)間,。
③ 對(duì)照抗體的標(biāo)簽確認(rèn)是否使用了正確的抗體，以及所用的檢測(cè)系統(tǒng)是否和一抗匹配,，這一點(diǎn)是非常重要的,。比如,，如果一抗是兔來源的抗體，二抗一定要用抗兔的二抗來匹配,；或一抗是小鼠的IgM一抗,，二抗必須是山羊/兔抗小鼠的IgM（不是IgG）二抗。
④ 檢查抗體所使用的稀釋度及稀釋溶液,。
⑤ 檢查抗體的有效期和保存條件,，尤其是標(biāo)記了酶或熒光素的抗體，現(xiàn)在大多數(shù)試劑公司的抗體均要求在4~8℃條件下保存,，應(yīng)避免反復(fù)凍融，試劑保存時(shí)一定要避免與揮發(fā)性有機(jī)溶劑同放一室,，以免降低抗體的效價(jià),。
⑥ 檢查標(biāo)本的儲(chǔ)存條件，用已知陽性的標(biāo)本來同時(shí)做陽性對(duì)照,。
⑦ 檢查色原/底物溶液,，zui簡(jiǎn)單的檢測(cè)方法是將一滴標(biāo)記有酶的抗體加入到制備好的底物溶液中，如果底物發(fā)生預(yù)期的顏色變化,，則可排除底物的因素,。需要注意的是，有些底物在制成工作液后應(yīng)在一定時(shí)間內(nèi)用完,，否則會(huì)失效,。
⑧ 檢查沖洗液是否和反應(yīng)試劑匹配，溶液的pH值很重要,，與過氧化物酶底物匹配的溶液中不應(yīng)含有疊氮鈉,。
⑨ 檢查復(fù)染劑和封片劑是否和所使用的色原匹配。

第二種方案：弱陽性
如果陰性對(duì)照沒有染色而陽性對(duì)照標(biāo)本弱陽性,，除了考慮上述因素外,，還應(yīng)考慮：
① 標(biāo)本的固定方式，不當(dāng)?shù)墓潭ǚ绞交蚬潭〞r(shí)溫度過高,，都會(huì)影響到所檢測(cè)的抗原的數(shù)量和質(zhì)量,。
② 不適當(dāng)?shù)目乖迯?fù)方式，由于石蠟切片在制作的過程中固定劑對(duì)抗原的封閉作用,，必須用抗原熱修復(fù)或酶消化或兩種同時(shí)使用的抗原雙暴露法,，至于使用哪一種方法，應(yīng)參照生產(chǎn)廠家的說明,，同時(shí)結(jié)合標(biāo)本的具體情況而定,。
③ 抗體的稀釋度是否過高或者孵育的溫度/時(shí)間是否正確。一般試劑生產(chǎn)廠家都會(huì)對(duì)試劑給出一定的使用范圍,，但是由于使用者的標(biāo)本來自各種組織,，處理過程也不盡相同,，所以應(yīng)參照使用范圍，對(duì)所使用的一抗進(jìn)行梯度測(cè)試,，找出*的使用濃度,。
④ 切片上了過多的沖洗液，當(dāng)抗體加至切片上時(shí),，等于人為地對(duì)抗體進(jìn)行了進(jìn)一步的稀釋,。
⑤ 孵育時(shí)切片是否放置水平，否則會(huì)導(dǎo)致抗體流失,。
如果陰性對(duì)照沒有反應(yīng),，陽性對(duì)照反應(yīng)良好，而標(biāo)本弱陽性,，則可能是由于陽性對(duì)照不是同一種組織,、或固定方式不同等原因所致。

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