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磷酸化蛋白11點經(jīng)驗之談
閱讀：1297 發(fā)布時間：2014-2-24實驗中磷酸化蛋白有哪些經(jīng)驗之談，以下為小編總結(jié)
1. 一定要在lysis buffer中加入蛋白酶抑制劑,，還要加入一定量的磷酸酶抑制劑,，否則即使band壓出來也會很淺，結(jié)果也不可信,。
2. 加一抗后4℃過一夜,，保證抗體有充分的結(jié)合時間。因為磷酸化的蛋白只占總的蛋白量的極少部分,。4℃也可使一抗重復使用多次,。畢竟磷酸化的抗體都挺貴的。二抗則室溫1小時即可,。
3. 磷酸化抗體的好壞是一個關(guān)鍵因素,，所以要選擇好的廠商。
4. 根據(jù)廠商的protocol來操作實驗,，這是實驗成功的保證,。
5. 抗體的稀釋倍數(shù)也要適當，不同廠商也會有不同要求。
6. 研究完某一蛋白的磷酸化情況后也要研究一下該蛋白總的表達量,。如壓完phospho-p38抗體后,，把相同的membrane做strip后再壓p38，然后再strip一次,，再壓內(nèi)標actin,。
7. 做磷酸化蛋白WB時，除了目標蛋白的band以外,，往往會出現(xiàn)非特異性的band,。磷酸化抗體不好的話，甚至會壓出非特異性的band,，而沒有你想要的band,，所以壓片以后，你一定要根據(jù)markers比對一下,，你壓出的band分子量是否正確,。
8. 磷酸化蛋白WB時backgroud也往往較深，所以壓片時間要適當,，不能太長或過短,，太長則backgroud太深蓋住想要的那條band，時間過短則可能沒有band或者band太淺,。
9. 磷酸化蛋白WB時,，用TBST洗時也要注意一下，搖床的轉(zhuǎn)速不要太快,，洗的時間不要太長,，孵育一抗和二抗之后分別洗5 min 3次即可，寧愿background深一些,，總比做不出來強得多,。另外，洗的時候,，不要把幾張membrane疊在一起洗,。
10. 研究完某一蛋白的磷酸化情況后也要研究一下該蛋白總的表達量。這有兩種方法,，一是：相同的sample在不同的well中上樣兩次（可在相同的 gel上,，也可在不同的gel），其一壓磷酸化蛋白,，另一壓該蛋白總的表達量（包括磷酸化和未磷酸化的該蛋白）,，甚至還可跑另一個gel，壓內(nèi)標,。但是不 建議如此做,，因為這樣比較時誤差還是較大的,。
11. Strip時一定要注意：membrane一定要*泡在strip solution中（可用較硬的塑料膜封好），然后要*浸入水中,，使受熱均勻,。這一點很重要，要不然,，隨后壓出來的總蛋白也好,，內(nèi)標也好就會不均一，無法進行比較,。
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