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團(tuán)聚細(xì)胞計(jì)數(shù)的應(yīng)用解決方案:Cell Type參數(shù)優(yōu)化

時(shí)間:2024-7-26 閱讀:870
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前言

團(tuán)聚細(xì)胞計(jì)數(shù)的應(yīng)用解決方案:Cell Type參數(shù)優(yōu)化



Vi-CELL BLU細(xì)胞計(jì)數(shù)和活率分析儀最少僅需170uL樣品體積即可得到細(xì)胞密度和活率結(jié)果,。為了準(zhǔn)確分析不同細(xì)胞,,Vi-CELL BLU提供了創(chuàng)建和優(yōu)化自定義Cell Type設(shè)置的功能。本文我們拿容易團(tuán)聚的HEK293細(xì)胞給大家介紹下Cell Type的設(shè)置是如何影響樣品的處理和圖像分析,。

在分析團(tuán)聚細(xì)胞時(shí),,Cell Type設(shè)置中首先會(huì)使用到的參數(shù)是Decluster degree,我們可以設(shè)置為None,,Low,,Medium或High,并且使用更靠后的值會(huì)增加軟件對(duì)團(tuán)聚細(xì)胞的識(shí)別能力,。

當(dāng)出現(xiàn)過多的團(tuán)聚,,我們還需要考慮增加對(duì)樣品的Aspiration和Mixing Cycles次數(shù)。在每次Aspiration過程中,,細(xì)胞樣品會(huì)在樣品管和注射器之間來回吹打混懸,。對(duì)于那些很難混懸分散或傾向于粘到樣品杯壁上的細(xì)胞樣品,建議使用這種方法,。在Mixing Cycle過程中,,臺(tái)盼藍(lán)和細(xì)胞樣品一起在樣品管和注射器之間來回混勻。增加Mixing Cycles次數(shù)會(huì)讓臺(tái)盼藍(lán)混勻地更好,。Vi-CELL BLU細(xì)胞計(jì)數(shù)和活率分析儀的設(shè)計(jì)降低了剪切力對(duì)細(xì)胞的傷害,。另外,低剪切力可以提高結(jié)果的重現(xiàn)性,。但增加Aspiration或Mixing Cycles會(huì)提高額外剪切力,,從而對(duì)比較脆弱的細(xì)胞產(chǎn)生潛在的危害。但是,,對(duì)于團(tuán)聚細(xì)胞系,,這些額外的剪切力則可以用于破壞細(xì)胞的團(tuán)聚。

Decluster degree和Aspiration/Mixing Cycles之間重要的區(qū)別在于它們是在哪個(gè)時(shí)刻影響的分析結(jié)果。Decluster degree只對(duì)測試結(jié)束后保存在軟件上的細(xì)胞照片根據(jù)不同設(shè)置的Decuster degree重新進(jìn)行分析,。而Aspiration和Mixing Cycles是在拍照前對(duì)細(xì)胞樣品就產(chǎn)生了影響,,測試結(jié)束后無法再修改Aspiration和Mixing Cycles數(shù)值,得到再分析的結(jié)果,。

團(tuán)聚細(xì)胞計(jì)數(shù)的應(yīng)用解決方案:Cell Type參數(shù)優(yōu)化

因此,,優(yōu)化Cell Type對(duì)于得到好的結(jié)果很重要,本文中對(duì)于團(tuán)聚細(xì)胞分析,,如何調(diào)整Cell Type提供了一些指導(dǎo),。

團(tuán)聚的細(xì)胞懸液也是細(xì)胞培養(yǎng)條件欠佳的指標(biāo),包括但不限于過度消化,、環(huán)境應(yīng)激,、過度生長和污染。細(xì)胞團(tuán)聚限制了細(xì)胞對(duì)資源和可用增殖空間的獲取,。這將阻礙細(xì)胞生長,,降低通量,并影響下游分析結(jié)果,,譬如像流式細(xì)胞儀分析方法需要單細(xì)胞溶液,。此外,ISO 20391-1(4)中聲明,,為了獲得最佳計(jì)數(shù)結(jié)果(與所使用的分析方法無關(guān)),,需要單細(xì)胞懸浮液,并且需要正確的樣品制備流程,。Vi-CELL BLU 細(xì)胞計(jì)數(shù)和活率分析儀用紅色框標(biāo)記(非常)大的細(xì)胞團(tuán),。由于對(duì)大細(xì)胞團(tuán)進(jìn)行計(jì)數(shù)容易出錯(cuò),因此這些大細(xì)胞團(tuán)不會(huì)進(jìn)行去團(tuán)聚處理,,并會(huì)自動(dòng)從計(jì)數(shù)中排除,。這些大細(xì)胞團(tuán)的數(shù)量可以在結(jié)果文件的“Cluster Count"中找到,這是培養(yǎng)物中細(xì)胞團(tuán)聚的良好指標(biāo),。如果觀察到細(xì)胞團(tuán)較多時(shí),,建議進(jìn)一步優(yōu)化培養(yǎng)條件或進(jìn)行樣品處理。


方法


這些實(shí)驗(yàn)中使用的是FreeStyle 293-F 細(xì)胞(Thermo Fisher,,Cat.編號(hào):R79007),。將 HEK 懸浮細(xì)胞在含有FreeStyle 293(30 mL)表達(dá)培養(yǎng)基的 50 mL Falcon 管中培養(yǎng),每 3-4 天傳代培養(yǎng)一次,,接種細(xì)胞密度為 0.2x106 個(gè)細(xì)胞/mL,。它們?cè)?37°C、250 rpm 和 5% CO2 濃度下孵育,。

使用培養(yǎng) 4 天的細(xì)胞樣品進(jìn)行初始測量,,在Normal模式下使用Mammalian Cell Type重復(fù)測量 5 次,。然后結(jié)果被導(dǎo)出(每 10 張圖像照片保存一張)并離線重新分析。為了重新分析,,基于默認(rèn)的Mammalian Cell Type創(chuàng)建了另外兩個(gè)Cell Type,,但將去團(tuán)聚度設(shè)置為Low和High。為了研究不同去團(tuán)聚度設(shè)置的有效性,,比較了這三種Cell Type總細(xì)胞密度和活細(xì)胞密度以及活率的結(jié)果,。

之后,開始用 HEK 293-F 細(xì)胞進(jìn)行新鮮培養(yǎng),,并在第 0,、1、2,、3 和 6 天取樣,。然后,,測試了其他采樣參數(shù),,因?yàn)樗腥掌诘臉悠范加媚J(rèn)的Mammalian Cell Type,以及將Aspiration和Mixing Cycles增加到10次的Cell Type,。在所有采樣日,,將細(xì)胞培養(yǎng)液用 5 mL 移液器混合 2 次,然后將 5 mL 細(xì)胞培養(yǎng)液轉(zhuǎn)移到 15 mL  Facon管中,。接著,,用 1000 μL 移液器將樣品再混合 3 次,再將 3 x 500 μL 細(xì)胞樣品轉(zhuǎn)移到 Vi-CELL XR 細(xì)胞計(jì)數(shù)和活率分析儀樣品管中,,以及將 6 x 200 μL 細(xì)胞樣品轉(zhuǎn)移到 Vi-CELL BLU 96 孔板中,。Vi-CELL XR 細(xì)胞計(jì)數(shù)和活率分析儀上的樣品,使用圖 1 所示的Cell Type分析,;在Vi-CELL BLU細(xì)胞計(jì)數(shù)和活率分析儀上,,兩種Cell Type交替進(jìn)行。然后,,將 2 x 10 μL 細(xì)胞樣品與臺(tái)盼藍(lán) 1:1 混合并轉(zhuǎn)移到一次性血球計(jì)數(shù)板中手動(dòng)計(jì)數(shù),。


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圖1:Vi-CELL XR上的分析設(shè)置,選擇的設(shè)置類似于Vi-CELL BLU上的設(shè)置


然后,,在Vi-CELL BLU細(xì)胞計(jì)數(shù)和活率分析儀上運(yùn)行的樣品以High Decluster degree重新分析,,在 Vi-CELL BLU 細(xì)胞計(jì)數(shù)和活率分析儀上共生成4種不同的細(xì)胞計(jì)數(shù)結(jié)果,以與 Vi-CELL XR細(xì)胞計(jì)數(shù)和活率分析儀的結(jié)果和手動(dòng)計(jì)數(shù)結(jié)果進(jìn)行比較,。


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表1. Vi-CELL BLU分析HEK 293-F的Cell Type,,Mammalian Cell Type作為其他3個(gè)Cell Types的模板。




結(jié)果

在三個(gè)Decluster degree下(Low,,Normal和High)得到的平均總細(xì)胞密度和活細(xì)胞密度(分別為 TCD 和 VCD)和活率進(jìn)行了比較(圖2),。更高的去團(tuán)聚度使得TCD 和 VCD 值均明顯增加(R2 > 0.98)。然而,使用較低或較高的Decluster degree時(shí),,細(xì)胞活率卻并不顯著增加或減少,。


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圖2:Vi-CELL BLU使用不同Decluster degree設(shè)置分析HEK 293-F的結(jié)果。平均總細(xì)胞和活細(xì)胞密度顯示在左軸上,,平均活率顯示在右軸上,。誤差線表示標(biāo)準(zhǔn)差。


表 2 中的圖像顯示了Decluster degree如何影響樣品分析,,從而影響細(xì)胞濃度結(jié)果,。所選圖像是圖2中其中一個(gè)測量樣品的圖像(部分),并且很好地表示了細(xì)胞樣品的狀態(tài),。如前所述,,HEK 293 F細(xì)胞傾向于形成團(tuán)聚體,而這些團(tuán)聚體中的細(xì)胞可能難以計(jì)數(shù)準(zhǔn)確,。當(dāng) Decluster degree 設(shè)置為 low 時(shí),,某些團(tuán)聚將不再被解聚,并且標(biāo)有藍(lán)色圓圈,,表示Vi-CELL軟件錯(cuò)誤地將它們識(shí)別為單個(gè)顆粒,,因?yàn)槠涑叽巛^大,根據(jù)所選Cell Type參數(shù)未歸為一個(gè)細(xì)胞,。通過更高的去團(tuán)聚度,,可以分析更多這些團(tuán)聚細(xì)胞,從而產(chǎn)生單個(gè)團(tuán)聚標(biāo)記為Normal Decluster degree,,所有團(tuán)聚細(xì)胞均在High declustering下進(jìn)行分析,。更高的Decluster degree設(shè)置會(huì)導(dǎo)致識(shí)別出額外的細(xì)胞,可能導(dǎo)致人為地提高細(xì)胞密度,,因?yàn)閱蝹€(gè)細(xì)胞可能(幾乎)分裂成兩個(gè)或多個(gè)顆粒,。這些顆粒是被忽略還是算作活細(xì)胞或死細(xì)胞取決于其他Cell Type參數(shù),例如大小,、圓度和亮度,。因此,優(yōu)化Cell Type設(shè)置對(duì)于獲得準(zhǔn)確的結(jié)果很重要,。


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表2. 不同Decluster degree設(shè)置的分析結(jié)果,,隨著Declustering增加,更多的細(xì)胞團(tuán)聚被分析,,細(xì)胞團(tuán)聚體中更多的細(xì)胞被識(shí)別,。


請(qǐng)注意,Cluster count不受Decluster degree的影響,。對(duì)于“Low"和“High"設(shè)置,,每次測量平均計(jì)數(shù) 1.6 個(gè)Clusters,。Cluster count指示在樣本中發(fā)現(xiàn)了多少個(gè)過大的細(xì)胞團(tuán)聚體。這些Cluster用紅色框標(biāo)記,,并且無論Decluster degree如何,,都全部排除在分析之外。因此,,高的Cluster count是大細(xì)胞團(tuán)聚體的良好指示,,需要在培養(yǎng)處理或樣品制備方面進(jìn)行額外優(yōu)化,以獲得準(zhǔn)確的細(xì)胞計(jì)數(shù)結(jié)果,。

最終,,在優(yōu)化Cell Type設(shè)置時(shí),Vi-CELL BLU 軟件還提供了增加Aspiration和Mixing cycles的可能性,。增加Aspiration和Mixing的影響評(píng)估,,是使用默認(rèn)的Mammalian Cell Type,將其中的Aspiration和Mixing cycles都設(shè)為10,,每天對(duì) HEK 293-F 細(xì)胞樣品進(jìn)行采樣,,并一式三份測定細(xì)胞密度。之后,,使用表1所述的High Decluster degree重新分析所有測量值,。將結(jié)果與使用Vi-CELL XR細(xì)胞計(jì)數(shù)和活率分析儀及手動(dòng)計(jì)數(shù)獲得的值進(jìn)行比較(圖3),。


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圖3: Vi-CELL BLU用4種不同Cell Types檢測的總細(xì)胞密度和活率(藍(lán)-灰色),,Vi-CELL XR(紅色)和手動(dòng)細(xì)胞計(jì)數(shù)(綠色),。誤差線表示標(biāo)準(zhǔn)差。


圖 3 顯示了 Vi-CELL XR細(xì)胞計(jì)數(shù)和活率分析儀,、血球計(jì)數(shù)板、Vi-CELL BLU 細(xì)胞計(jì)數(shù)和活率分析儀(使用默認(rèn)Mammalian Cell Type)測試6天得到的細(xì)胞密度和活率具有可比性,。此外,,Mixing增加和/或High declustering的Cell Type會(huì)導(dǎo)致更高的細(xì)胞密度。在第3天,,測量的平均 TCD 介于 2.81 – 4.12 百萬個(gè)細(xì)胞/mL 之間,,分別使用默認(rèn)的 Mammalian 和 Mammalian A10M10  High decluster。因此,,與默認(rèn)設(shè)置相比,,更改兩個(gè)參數(shù)后結(jié)果增加了 47%。

然而,,在第6天存活率下降到~70%,,而且手動(dòng)計(jì)數(shù)的TCD明顯比自動(dòng)細(xì)胞計(jì)數(shù)儀的TCD更高。表 3 中的圖像(通過顯微鏡顯示 Neubauer 分析室)為這種偏差提供了清晰地解釋,,因?yàn)榕c第 3 天相比,,第 6 天的細(xì)胞樣品中顯示有更多的細(xì)胞聚集體,。這些細(xì)胞聚集體很難計(jì)數(shù),在分析過程中大的團(tuán)聚細(xì)胞將被全部忽略,。


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表3: 第3和第6天HEK 293-F細(xì)胞計(jì)數(shù)顯微鏡下的照片,。第6天可以看到更多的細(xì)胞團(tuán)聚體,細(xì)胞活率降低,。


專注于培養(yǎng)的前 3 天(圖 4)可以進(jìn)一步研究不同的Cell Type設(shè)置如何影響計(jì)數(shù)結(jié)果,。第 3 天血球計(jì)數(shù)板圖像(表 3)顯示,到目前為止,,細(xì)胞主要以小聚集體或單細(xì)胞形式生長,。仔細(xì)觀察Cluster count可以發(fā)現(xiàn),Clusters的平均數(shù)量從第 1 天的 0.7 個(gè)增加到第 2 天的 3.7 個(gè)和第 3 天的 8.7 個(gè),。同時(shí),,更高的Mixing和Aspiration cycles的效果似乎有所增加,第 1 天的 TCD 增加了 4%,,而第 2 天和第 3 天分別增加了 17% 和 25%,。在Mammalian A10M10 High decluster設(shè)置下的結(jié)果一直是最高濃度。


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圖4: HEK培養(yǎng)的前3天,。在 Vi-CELL BLU 上以藍(lán)灰色以及 Vi-CELL XR(紅色)和手動(dòng)計(jì)數(shù)(綠色)測定四種不同的細(xì)胞密度和活率,。誤差線表示標(biāo)準(zhǔn)差。


總之,,每日采樣結(jié)果進(jìn)一步證明了正確Cell Type設(shè)置的重要性,。僅改變?nèi)齻€(gè)參數(shù)就導(dǎo)致 TCD 增加 47%。測量團(tuán)聚的HEK細(xì)胞時(shí),,調(diào)整Decluster degree和Mixing/Aspiration cycles可以得到更高的TCD,。然而,第6天的數(shù)據(jù)(圖3)表明,,應(yīng)避免過度團(tuán)聚的細(xì)胞樣品,,因?yàn)榕c手動(dòng)計(jì)數(shù)相比,所有Cell Type的結(jié)果都明顯較低,。

討論

本文討論了使用 Vi-CELL BLU 細(xì)胞計(jì)數(shù)和活率分析儀優(yōu)化細(xì)胞計(jì)數(shù)結(jié)果的幾種選擇,。除了優(yōu)化一般的培養(yǎng)處理 - 這將改善細(xì)胞健康、通量和產(chǎn)率 – 可以通過調(diào)整樣品處理和分析來改進(jìn),。通過演示使用不同Cell Type設(shè)置的影響,,可以清楚地看出針對(duì)所用細(xì)胞系和應(yīng)用優(yōu)化這些設(shè)置對(duì)于獲得好的分析結(jié)果至關(guān)重要。

在處理傾向于形成聚集體的細(xì)胞系時(shí),,對(duì)Decluster degree,、Aspiration cycles和Mixing cycles的擬議更改是優(yōu)化計(jì)數(shù)性能的良好起點(diǎn)。但是,,當(dāng)可能需要進(jìn)一步優(yōu)化時(shí),,請(qǐng)隨時(shí)向貝克曼庫爾特生命科學(xué)的相關(guān)技術(shù)人員尋求支持,。





● 參考資料:

1. Cell Culture Problems: Cell Clumping – Causes, How to Unclump Cells & How to Avoid Cell Clumping. akadeum.co m. [Online] Akadeum Life Sciences, February 2021. [Cited: 25 July 2023.]

2. Cell Clumping Troubleshooting. Sigma Aldrich. [Online] Merck KGaA. [Cited: 25 July 2023.]

3. Biomass and Aggregation Analysis of Human Embryonic Kidney 293 Suspension Cell Cultures by Particle Size Measurement. Yung-Shyeng Tsao, Russell G. G. Condon, Eugene J. Schaefer, David A. Lindsay, and Zhong Liu. s.l. : Biotechnology progress, 2000, Bd. 16(5). 809-814.

4. ISO 20391-1. Biotechnology — Cell counting — Part 1: General guidance on cell counting methods. s.l. : ISO/TC 276, Biotechnology, 2018-01. First edition. ISO 20391-1:2018(E). 5. Cluster Count Analysis and Sample Preparation Considerations for the Vi-CELL BLU Cell Viability Analyzer. Wu, Andrew. s.l. : Beckman Coulter Life Sciences, 2023. 2023-GBL-EN-101754.

5. Cluster Count Analysis and Sample Preparation Considerations for the Vi-CELL BLU Cell Viability Analyzer. Wu, Andrew. s.l. : Beckman Coulter Life Sciences, 2023. 2023-GBL-EN-101754.





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