4 PCR反應(yīng)特點(diǎn)

4.1特異性強(qiáng)   
PCR反應(yīng)的特異性決定因素為：
①引物與模板DNA特異正確的結(jié)合；
②堿基配對(duì)原則,；
③Taq DNA聚合酶合成反應(yīng)的忠實(shí)性,；
④靶基因的特異性與保守性。
4.2 靈敏度高
PCR產(chǎn)物的生成量是以指數(shù)方式增加的,，能將皮克(pg=10^-12)量級(jí)的起始待測(cè)模板擴(kuò)增到微克(μg=10^-6)水平,。能從100萬(wàn)個(gè)細(xì)胞中檢出一個(gè)靶細(xì)胞；在病毒的檢測(cè)中,，PCR的靈敏度可達(dá)3個(gè)RFU(空斑形成單位),；在細(xì)菌學(xué)中最小檢出率為3個(gè)細(xì)菌。
4.3簡(jiǎn)便,、快速
PCR反應(yīng)用耐高溫的Taq DNA聚合酶,，一次性地將反應(yīng)液加好后，經(jīng)過(guò)變性-退火-延伸反應(yīng),，一般在2～4 小時(shí)完成擴(kuò)增反應(yīng),。擴(kuò)增產(chǎn)物一般用電泳分析，不一定要用同位素,，無(wú)放射性污染,、易推廣。
4.4 對(duì)標(biāo)本的純度要求低
不需要分離病毒或細(xì)菌及培養(yǎng)細(xì)胞,，DNA粗制品及RNA均可作為擴(kuò)增模板,。可直接用臨床標(biāo)本如血液,、體腔液,、洗嗽液、毛發(fā),、細(xì)胞,、活組織等DNA擴(kuò)增檢測(cè)。

5 PCR常見(jiàn)問(wèn)題

5.1假陰性,，不出現(xiàn)擴(kuò)增條帶
PCR反應(yīng)的關(guān)鍵環(huán)節(jié)有：
（1）模板核酸的制備
①模板中含有雜蛋白質(zhì),；
②模板中含有Taq酶抑制劑；
③模板中蛋白質(zhì)沒(méi)有消 化除凈,，特別是染色體中的組蛋白,；
④在提取制備模板時(shí)丟失過(guò)多，或吸入酚,；
⑤模板核酸變性不底,。在酶和引物質(zhì)量好時(shí)，不出現(xiàn)擴(kuò)增帶,，極有可能是標(biāo)本
的消化處理,，模板核酸提取過(guò)程出了毛病,，因而要配制有效而穩(wěn)定的消化處理液，
其程序亦應(yīng)固定不宜隨意更改,。
（2）引物的質(zhì)量與特異性
引物質(zhì)量,、引物的濃度、兩條引物的濃度是否對(duì)稱(chēng),，是PCR失敗或擴(kuò)增條
帶不理想、容易彌散的常見(jiàn)原因,。有些批號(hào)的引物合成質(zhì)量有問(wèn)題,，兩條引物一
條濃度高，一條濃度低,，造成低效率的不對(duì)稱(chēng)擴(kuò)增,，對(duì)策為：
①選定一個(gè)好的引物合成單位。
②引物的濃度不僅要看OD值,，更要注重引物原液做瓊脂糖凝膠電泳,，一定要有
引物條帶出現(xiàn)，而且兩引物帶的亮度應(yīng)大體一致,，如一條引物有條帶,，一條引物
無(wú)條帶，此時(shí)做PCR有可能失敗,，應(yīng)和引物合成單位協(xié)商解決,。如一條引物亮度
高，一條亮度低,，在稀釋引物時(shí)要平衡其濃度,。
③引物應(yīng)高濃度小量分裝保存，防止多次凍融或長(zhǎng)期放冰箱冷藏部分,，導(dǎo)致引物
變質(zhì)降解失效,。
④引物設(shè)計(jì)不合理，如引物長(zhǎng)度不夠,，引物之間形成二聚體等,。
（3）酶的質(zhì)量
             酶失活：需更換新酶，或新舊兩種酶同時(shí)使用,，以分析是否因酶的活性喪失或不夠而導(dǎo)致假陰性,。需注意的是有時(shí)忘加Taq酶或溴乙錠。
（4）Mg²⁺濃度
Mg²⁺離子濃度對(duì)PCR擴(kuò)增效率影響很大,，濃度過(guò)高可降低PCR擴(kuò)增的特異
性,，濃度過(guò)低則影響PCR擴(kuò)增產(chǎn)量甚至使PCR擴(kuò)增失敗而不出擴(kuò)增條帶。
（5）反應(yīng)體積的改變
通常進(jìn)行PCR擴(kuò)增采用的體積為20ul,、30ul,、50ul或100ul,，應(yīng)用多大體積
進(jìn)行PCR擴(kuò)增，是根據(jù)科研和臨床檢測(cè)不同目的而設(shè)定,，在做小體積如20ul 后,，
再做大體積時(shí)，一定要模索條件,，否則容易失敗,。
（6）物理原因
變性對(duì)PCR擴(kuò)增來(lái)說(shuō)相當(dāng)重要，如變性溫度低,，變性時(shí)間短,，極有可能出現(xiàn)
假陰性；退火溫度過(guò)低,，可致非特異性擴(kuò)增而降低特異性擴(kuò)增效率退火溫度過(guò)高
影響引物與模板的結(jié)合而降低PCR擴(kuò)增效率,。有時(shí)還有必要用標(biāo)準(zhǔn)的溫度計(jì)，檢
測(cè)一下擴(kuò)增儀或水溶鍋內(nèi)的變性,、退火和延伸溫度,，這也是PCR失敗的原因之一。
（7）靶序列變異
如靶序列發(fā)生突變或缺失,，影響引物與模板特異性結(jié)合,，或因靶序列某段缺
失使引物與模板失去互補(bǔ)序列，其PCR擴(kuò)增是不會(huì)成功的,。
5.2 假陽(yáng)性
　　    出現(xiàn)的PCR擴(kuò)增條帶與目的靶序列條帶一致,，有時(shí)其條帶更整齊，亮度更高,。
　　   （1）引物設(shè)計(jì)不合適
選擇的擴(kuò)增序列與非目的擴(kuò)增序列有同源性,，因而在進(jìn)行PCR擴(kuò)增時(shí)，
擴(kuò)增出的PCR產(chǎn)物為非目的性的序列,。靶序列太短或引物太短,，容易出現(xiàn)假
陽(yáng)性。需重新設(shè)計(jì)引物,。
　　   （2）靶序列或擴(kuò)增產(chǎn)物的交叉污染
這種污染有兩種原因：一是整個(gè)基因組或大片段的交叉污染,，導(dǎo)致假陽(yáng)性。
這種假陽(yáng)性可用以下方法解決：操作時(shí)應(yīng)小心輕柔,，防止將靶序列吸入加樣槍
內(nèi)或?yàn)R出離心管外,。除酶及不能耐高溫的物質(zhì)外，所有試劑或器材均應(yīng)高壓消
毒,。所用離心管及樣進(jìn)槍頭等均應(yīng)一次性使用,。必要時(shí)，在加標(biāo)本前,，反應(yīng)管
和試劑用紫外線照射,，以破壞存在的核酸,。二是空氣中的小片段核酸污染，這
些小片段比靶序列短,，但有一定的同源性,。可互相拼接,，與引物互補(bǔ)后,，可擴(kuò)
增出PCR產(chǎn)物，而導(dǎo)致假陽(yáng)性的產(chǎn)生,，可用巢式PCR方法來(lái)減輕或消除,。
5.3 出現(xiàn)非特異性擴(kuò)增帶
　　       非特異性條帶的出現(xiàn)，其原因：一是引物與靶序列不全互補(bǔ),、 或引物聚合形成二聚體。二是Mg²⁺離子濃度過(guò)高,、退火溫度過(guò)低,，及PCR循環(huán)次數(shù)過(guò)多有關(guān)。其次是酶的質(zhì)和量,，往往一些來(lái)源的酶易出現(xiàn)非特異條帶而另一來(lái)源的酶則不出現(xiàn),，酶量過(guò)多有時(shí)也會(huì)出現(xiàn)非特異性擴(kuò)增。對(duì)策有：
①必要時(shí)重新設(shè)計(jì)引物,；
②減低酶量或調(diào)換另一來(lái)源的酶,；
③降低引物量，適當(dāng)增加模板量,，減少循環(huán)次數(shù),；
④適當(dāng)提高退火溫度或采用二溫度點(diǎn)法(93℃變性，65℃左右退火與延伸),。
5.4出現(xiàn)片狀拖帶或涂抹帶
　　       PCR擴(kuò)增有時(shí)出現(xiàn)涂抹帶或片狀帶或地毯樣帶,。其原因往往由于酶量過(guò)多或酶的質(zhì)量差，dNTP濃度過(guò)高,，Mg²⁺濃度過(guò)高,，退火溫度過(guò)低，循環(huán)次數(shù)過(guò)多引起,。對(duì)策為：
①減少酶量,，或調(diào)換另一來(lái)源的酶。
②減少dNTP的濃度,。適當(dāng)降低Mg²⁺濃度,。增加模板量，減少循環(huán)次數(shù),。