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河豚毒素（TTX）是一種強神經毒素,，其性質穩(wěn)定,，加熱,、鹽腌及高溫烹煮均不易使其被破壞,。河豚魚中常含有河豚毒素,。我國
沿海居民素有食用河豚魚的習慣。因誤食或食用加工不當?shù)暮与圄~而發(fā)生人畜中毒的事件每年都有發(fā)生,。故準確檢測河豚魚中
產品簡介
詳細介紹
河豚毒素酶聯(lián)免疫測試盒 96孔板
河豚毒素（TTX）定量酶聯(lián)免疫檢測試劑盒說明書
ELISA-kit for TTX
本測試盒用間接競爭免疫分析法定量測定河豚魚中的河豚毒素（TTX）,。該測試盒反應孔可拆卸，可測單份樣品,，也可測多份樣
品,。定量分析時需有含450nm波長的微孔板酶標儀。
1 概要
河豚毒素（TTX）是一種強神經毒素,，其性質穩(wěn)定,，加熱、鹽腌及高溫烹煮均不易使其被破壞,。河豚魚中常含有河豚毒素,。我國
沿海居民素有食用河豚魚的習慣。因誤食或食用加工不當?shù)暮与圄~而發(fā)生人畜中毒的事件每年都有發(fā)生,。故準確檢測河豚魚中
的河豚毒素對預防和控制河豚毒素中毒,，具有重要意義。本檢測方法具有靈敏,、快速,、簡便、特異性好,、取樣量小并可同時檢
測大量樣品等優(yōu)點,。
2 測定原理
本試劑盒采用固相酶聯(lián)免疫吸附原理，利用間接競爭ELISA法進行測定,。用抗原包被微孔板,，加入河豚毒素標準品或樣品、抗河
豚毒素單克隆抗體進行孵育后,，將未與包被抗原結合的抗體洗去,；再加入酶標記的抗鼠IgG抗體孵育，加入顯色液,，經過終止液
終止后,，用酶標儀在450nm處測定OD值。
3 提供的物品
微孔板
5個濃度的TTX標準溶液（各0.5mL）
標準1：0ng/mL ……………………………………………………………直接使用
標準2：10.0ng/mL ………………………………………………………直接使用
標準3：20.0ng/mL ………………………………………………………直接使用
標準4：50.0ng/mL ………………………………………………………直接使用
標準5：200.0ng/mL ………………………………………………………直接使用
抗體溶液（6mL） …………………………………………………………………直接使用
酶標物（12mL） …………………………………………………………………直接使用
顯色液（12mL） …………………………………………………………………直接使用
終止液（6mL） ………………………………………………………………………直接使用
濃縮洗液（30mL） …………………………………………………………………稀釋使用
4 盒中未提供,，需自備物品
微孔板酶標儀（含450nm）,、離心機、電爐,、微量移液器,、磁力攪拌器
量筒、漏斗,、容量瓶,、快速定性濾紙,、分液漏斗
乙酸、氫氧化鈉,、去離子水或蒸餾水,、PBS緩沖液
5 操作者注意事項
標準溶液中含有TTX毒素，應特別小心,。
終止液為0.5M硫酸,，避免接觸皮膚。
每次加樣后立即將所有試劑放回2~8 ℃,。
每步加樣時間應控制在5min內,。
孵育過程中應避光。
不要使用過期試劑盒,。
不要交叉使用不同批號試劑盒中的試劑,。
6 儲存條件
保存試劑盒于2~8℃,。不要冷凍
顯色液對光敏感,，因此要避免直接暴露在光線下。
將不用的微孔板放進原鋁箔袋中,，置2~8℃保存,。
7 試劑變質的標志
標準1的吸光度值小于0.5個單位（A450nm<0.5）時，表示試劑可能變質,。
8 樣品處理
8.1 鮮河豚魚中河豚毒素的檢測
----稱取5g河豚魚樣品（肌肉,、皮或內臟），剪碎,，加入25mL 0.1%的乙酸,，用燒杯在電爐上煮沸攪拌10min。此步驟應注意不要
讓液體沸出容器,，應控制加熱溫度,，并不斷攪拌。
----待冷卻至室溫后,，上清用快速定性濾紙過濾于50mL離心管中
----沉淀用20mL0.1% 乙酸洗到燒杯中,，再煮沸3min
----冷卻至室溫后，所有的液體及煮沸的樣品都加到離心管中,，3000rpm離心10min,。
----取上清，量體積,，置分液漏斗中
----加入等體積乙醚,，振搖1分鐘，靜置分層,。放出水層,，量體積后至另一分液漏斗中,，再加入等體積的乙醚，振搖1分鐘,，靜
止分層,。
----將水層放入50mL容量瓶中，用1M氫氧化鈉調節(jié)提取液中的pH值至6.5~7.4,，然后加入PBS至50mL,，提取液4℃保存?zhèn)溆谩?/p>
8.2 魚片、魚干制品中河豚毒素的檢測
-----樣品中的TTX用0.1%乙酸在水浴中超聲提取,，提取液中的TTX用ELISA方法進行檢測,，若樣品中TTX含量低于檢出限則報告為
<100mg/kg；樣品中TTX含量在100~3000mg/kg之間,，直接按ELISA實驗結果報告,；如果樣品中TTX含量達到3000mg/kg，則需采用
小鼠生物測定法進行驗證,，確認毒性反應后再按照ELISA實驗結果報告,。
9 酶免疫分析程序
----濃縮洗液為10倍濃縮液，使用時與去離子水或蒸餾水按體積比1:9稀釋后使用,。
----取所需數(shù)量的板條插入微孔架,，用洗液洗滌微孔板3min×2次，記錄樣品及標準的位置,。
----加入50mL標準品或處理好的樣品到微孔,，每個標準和樣品必須使用新的吸頭。
----加入50mL抗河豚毒素單克隆抗體溶液到每個微孔（注意移液器管尖不要接觸到孔中的液體,，避免交叉污染）中,，37℃孵育
90min。
----甩掉孔中液體,，用洗液洗滌微孔板3min×3次,，zui后一次應在吸水紙上拍打以*除去孔中液體。
----每孔加入酶標物100mL,，37℃孵育60min,。
----用洗液洗滌微孔板3min×5次，zui后一次應在吸水紙上拍打以*除去孔中液體,。
----每孔加入顯色液100mL（2滴）,，37℃孵育12min。
----每孔加入終止液50mL（1滴）,，立即用酶標儀在波長450nm處測定吸光度值（OD值）,。
注：在定量分析中，顯色液和終止液需要用移液器準確量取,。
10 樣品濃度計算
以標準溶液OD值與標準1的OD值的比值為縱坐標（即標準品OD比）,，所對應標準溶液濃度（ng/mL）的對數(shù)值為橫坐標,，制作標
準曲線。根據(jù)樣品OD值與標準1的OD的比值（即樣品OD比）,，可從曲線上得到對應點的橫坐標,，即為TTX濃度的對數(shù)值，求得反
對數(shù)即為測定液中TTX濃度C（ng/mL）,，按下列公式計算出樣品中TTX含量：
TTX含量（mg/kg）= 10×C×K
式中：C：測定液中TTX濃度（ng/mL）
K：提取液的稀釋倍數(shù)
11 主要技術指標及參數(shù)
11.1 zui低檢出濃度10.0 ng/mL,。
11.2 加標回收率在70~120%，條內變異系數(shù)＜10%,，條件變異系數(shù)＜15%,。