目錄:北京索萊寶科技有限公司>>生化檢測試劑盒-微量法>>微量法生化試劑盒>> BC5255-100T/48S超氧化物歧化酶分型活性檢測試劑盒 微量法
CAS | 詳詢 | 純度 | 詳詢 |
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分子量 | 詳詢 | 分子式 | 詳詢 |
供貨周期 | 現(xiàn)貨 | 規(guī)格 | 100T/48S |
貨號 | BC5255 | 應(yīng)用領(lǐng)域 | 環(huán)保,化工,生物產(chǎn)業(yè),農(nóng)業(yè),綜合 |
主要用途 | 超氧化物歧化酶分型活性檢測 |
超氧化物歧化酶(SOD)分型活性檢測試劑盒(WST法)說明書
(測Cu-Zn、Mn,、總SOD活性)
微量法
注意:本產(chǎn)品試劑有所變動,,請注意并嚴(yán)格按照該說明書操
貨號:BC5255
規(guī)格:100T/48S
產(chǎn)品組成:使用前請認(rèn)真核對試劑體積與瓶內(nèi)體積是否一致,有疑問請及時聯(lián)系索萊寶工作人員,。
試劑名稱 | 規(guī)格 | 保存條件 |
提取液一 | 液體110 mL×1瓶 | 2-8℃保存 |
提取液二 | 液體18 mL×1瓶 | 2-8℃保存 |
試劑一 | 液體10 mL×1瓶 | 2-8℃保存 |
試劑二 | 液體50 μL×1支 | 2-8℃保存 |
試劑三 | 液體8 mL×1瓶 | 2-8℃保存 |
試劑四 | 液體0.5 mL×1支 | 2-8℃保存 |
溶液的配制:
1,、 試劑二:使用前先使用掌上離心機離心至管底再吹打混勻;
2,、 試劑二工作液:根據(jù)樣本數(shù)量按試劑二:蒸餾水=5μL:245μL(共250μL,,可做約12個Cu-Zn-SOD樣本或6個Mn-SOD樣本)的比例配制試劑二工作液,現(xiàn)用現(xiàn)配,;
3,、 試劑四工作液:根據(jù)樣本量按試劑四:蒸餾水=20μL:180μL(共200μL,,約20T)的比例配制試劑四工作液,現(xiàn)用現(xiàn)配,。
產(chǎn)品說明:
SOD(EC 1.15.1.1)廣泛存在于動物,、植物、微生物和培養(yǎng)細(xì)胞中,,根據(jù)其輔基結(jié)合金屬離子的不同,,可分為銅鋅SOD、錳SOD等類型,,銅鋅SOD主要位于細(xì)胞質(zhì),,錳SOD主要位于線粒體。SOD催化超氧化物陰離子發(fā)生歧化作用,,生成H2O2和O2,。SOD不僅是超氧化物陰離子清除酶,也是H2O2主要生成酶,,在生物抗氧化系統(tǒng)中具有重要作用,。
通過黃*呤及黃*呤氧化酶反應(yīng)系統(tǒng)產(chǎn)生超氧陰離子(O2-),O2-可與WST-1反應(yīng)生成水溶性黃色甲臜,,后者在450nm處有吸收峰,;SOD可清除O2-,從而抑制了甲臜的形成,;反應(yīng)液黃色越深,,說明SOD活性愈低,反之活性越高,。樣本經(jīng)過處理后銅鋅SOD活性不變,,錳SOD活性喪失。通過測定總SOD活性和銅鋅SOD活性,,可計算得到錳SOD活性,。
注意:實驗之前建議選擇2-3個預(yù)期差異大的樣本做預(yù)實驗。如果樣本吸光值不在測量范圍內(nèi)建議稀釋或者增加樣本量進(jìn)行檢測,。
需自備的儀器和用品:
可見分光光度計/酶標(biāo)儀,、臺式離心機、漩渦混勻儀/振蕩器,、水浴鍋/恒溫培養(yǎng)箱,、電子天平、可調(diào)式移液器,、微量玻璃比色皿/96孔板,、研缽/勻漿器/細(xì)胞超聲破碎儀、冰和蒸餾水。
操作步驟:
一,、樣本處理
1. 總SOD活性測定
1) 細(xì)菌或培養(yǎng)細(xì)胞樣本:收集細(xì)菌或細(xì)胞到離心管內(nèi),,離心后棄上清,按照細(xì)菌或細(xì)胞數(shù)量(104個):提取液一體積(mL)=500-1000:1的比例(建議500萬細(xì)菌或細(xì)胞加入1mL提取液一)超聲波破碎細(xì)菌或細(xì)胞(冰浴,,功率200W,,超聲3s,間隔10s,,重復(fù)30次),,8000g 4℃離心10min,取全部上清,,部分用于測定總SOD活性,。
2) 組織樣本:按照組織質(zhì)量(g):提取液一體積(mL)為1:5-10的比例(建議稱取約0.1g組織,加入1mL提取液一)進(jìn)行冰浴勻漿,;8000g 4℃離心10min,,取全部上清,部分用于測定總SOD活性,。
3) 血清(漿)樣本:直接用于測定總SOD活性,,若有渾濁可離心后取上清進(jìn)行測定。
2. 銅鋅SOD活性測定
1) 取上一步提取得到的上清,,按照上清體積(mL):提取液二體積(mL)=2:3的比例(建議取0.2mL上清加入0.3mL提取液二)混合,,震蕩混勻1min,4000g 4℃離心10min,,取最上層的上清用于測定銅鋅SOD活性,此上清即樣本處理上清,,上清中銅鋅SOD活性不變,,錳SOD活性喪失。
注:混合液離心后分為3層,,取最上層溶液測定即可,。
2) 按照蒸餾水體積(mL):提取液二體積(mL)=2:3的比例(建議取0.2mL蒸餾水加入0.3mL提取液二)混合,震蕩混勻1min,,4000g 4℃離心10min,,取最上層的上清用于測定銅鋅SOD活性的空白管,此上清即蒸餾水處理上清,。
二,、測定步驟
1. 可見分光光度計/酶標(biāo)儀預(yù)熱30min以上,調(diào)節(jié)波長至450nm,,分光光度計蒸餾水調(diào)零,。
2. 測定前將試劑一、試劑三和試劑四工作液37℃水浴5min以上。
3. 加樣表(按順序在EP管或96孔板中加入下列試劑)
試劑名稱(μL) | 總SOD活性 | 銅鋅SOD活性 | ||||||
測定管1 | 對照管1 | 空白管1 | 空白管2 | 測定管2 | 對照管2 | 空白管3 | 空白管4 | |
樣 本 | 20 | 20 | - | - | - | - | - | - |
樣本處理上清 | - | - | - | - | 20 | 20 | - | - |
蒸餾水處理上清 | - | - | - | - | - | - | 20 | 20 |
試劑一 | 45 | 45 | 45 | 45 | 45 | 45 | 45 | 45 |
試劑二工作液 | 20 | - | 20 | - | 20 | - | 20 | - |
試劑三 | 35 | 35 | 35 | 35 | 35 | 35 | 35 | 35 |
蒸餾水 | 70 | 90 | 90 | 110 | 70 | 90 | 70 | 90 |
試劑四工作液 | 10 | 10 | 10 | 10 | 10 | 10 | 10 | 10 |
充分混勻,,37℃水浴鍋/恒溫培養(yǎng)箱反應(yīng)30min后,,置于微量玻璃比色皿/96孔板測定450nm下的吸光度,空白管1,、空白管2,、空白管3和空白管4只需做1-2次,每個樣本測定管需設(shè)置一個對照管,。
總SOD的記為A1測定,、A1對照、A1空白,、A2空白,,計算ΔA1測定=A1測定-A1對照,ΔA1空白=A1空白-A2空白,。
銅鋅SOD的記為A2測定,、A2對照、A3空白,、A4空白,,計算ΔA2測定=A2測定-A2對照,ΔA3空白=A3空白-A4空白,。
三,、SOD活性計算
1、抑制百分率的計算
總SOD抑制百分率=(ΔA1空白-ΔA1測定) ÷ΔA1空白×100%
銅鋅SOD抑制百分率=(ΔA3空白-ΔA2測定) ÷ΔA3空白×100%
盡量使樣本的抑制百分率在30-70%范圍內(nèi),,越靠近50%越準(zhǔn)確,。如果計算出來的抑制百分率小于30%或大于70%,則通常需要調(diào)整加樣量后重新測定,。如果測定出來的抑制百分率偏高,,則需適當(dāng)稀釋樣本;如果測定出來的抑制百分率偏低,,則需重新準(zhǔn)備濃度比較高的待測樣本或者提高加樣表中的樣本量,,但需相應(yīng)減少測定管和對照管中蒸餾水的體積。注意同步修改計算公式,。
2,、SOD酶活性單位:在上述黃*呤氧化酶偶聯(lián)反應(yīng)體系中抑制百分率為50%時,反應(yīng)體系中的SOD酶活力定義為一個酶活力單位,。
3,、SOD酶活性計算:
(1)血清(漿)SOD活性(U/mL)=[抑制百分率÷(1-抑制百分率)×V反總] ÷V樣×F
=10×抑制百分率÷(1-抑制百分率) ×F
(2)組織、細(xì)菌或培養(yǎng)細(xì)胞SOD活力計算:
A按樣本蛋白濃度計算
SOD活性(U/mg prot)=[抑制百分率÷(1-抑制百分率)×V反總] ÷(V樣×Cpr)×F
=10×抑制百分率÷(1-抑制百分率) ÷Cpr×F
B按樣本質(zhì)量計算
SOD活性(U/g 質(zhì)量)=[抑制百分率÷(1-抑制百分率)×V反總] ÷(W×V樣÷V樣總)×F
=10×抑制百分率÷(1-抑制百分率) ÷W×F
C按細(xì)菌或細(xì)胞數(shù)量計算
SOD 活力(U/104 cell)=[抑制百分率÷(1-抑制百分率)×V反總] ÷(500×V樣÷V樣總)×F
=0.02×抑制百分率÷(1-抑制百分率)×F
(3)錳SOD活性=總SOD活性-銅鋅SOD活性
V反總:反應(yīng)總體積,,0.2mL,;V樣:加入反應(yīng)體系中的樣本體積,0.02mL;V樣總:加入提取液體積,,1mL,;Cpr:蛋白樣本濃度,mg/mL,;W:樣本質(zhì)量,,g;500:細(xì)胞或細(xì)菌總數(shù),,500萬,;F:樣本稀釋倍數(shù)。
注意事項:
1,、 樣本和試劑二工作液使用時在冰上放置,。
2、 樣本較多時,,可按表格配制測定管工作液和對照管工作液(包含試劑一,、(試劑二工作液)、試劑三,、蒸餾水),,試劑四工作液必須最后加入。
3,、 本試劑盒可做48個錳-SOD樣本或者96個銅鋅-SOD樣本,。
實驗實例:
1、 取0.106g黃楊葉片加入1mL提取液一進(jìn)行勻漿研磨,,取上清稀釋10倍,,按照測定步驟操作,用96孔板測得計算ΔA1測定= A1測定-A1對照=0.399-0.088=0.311,,ΔA1空白=A1空白-A2空白=0.801-0.088=0.713,,總SOD
2、 抑制百分率=(ΔA空白-ΔA測定) ÷ΔA空白×100%=56.381%,;取0.2mL稀釋10倍的上清,加入0.3mL提取液二,,按照測定步驟操作,,用96孔板測得計算ΔA2測定= A2測定-A2對照=0.827-0.086=0.741,ΔA3空白=A3空白-A4空白=1.011-0.081=0.930,,銅鋅SOD抑制百分率=(ΔA空白-ΔA測定) ÷ΔA空白×100%=20.323%,,按樣本質(zhì)量計算酶活得:
總SOD活性(U/g 質(zhì)量)=10×抑制百分率÷(1-抑制百分率) ÷W×F =1219.438 U/g 質(zhì)量
銅鋅SOD活性(U/g 質(zhì)量)=10×抑制百分率÷(1-抑制百分率) ÷W×F =240.623 U/g 質(zhì)量
錳SOD活性(U/g 質(zhì)量)=1219.438-240.623 =978.815 U/g 質(zhì)量
3、 取0.1104g兔脾臟加入1mL提取液一進(jìn)行勻漿研磨,,取上清稀釋10倍,,按照測定步驟操作,用96孔板測得計算ΔA1測定= A1測定-A1對照=0.348-0.088=0.260,ΔA1空白=A1空白-A2空白=0.801-0.088=0.713,,總SOD抑制百分率=(ΔA空白-ΔA測定) ÷ΔA空白×100%=63.534%,;取0.2mL稀釋10倍的上清,加入0.3mL提取液二,,按照測定步驟操作,,用96孔板測得計算ΔA2測定= A2測定-A2對照=0.637-0.084=0.553,ΔA3空白=A3空白-A4空白=1.011-0.081=0.930,,銅鋅SOD抑制百分率=(ΔA空白-ΔA測定) ÷ΔA空白×100%=40.538%,,按樣本質(zhì)量計算酶活得:
總SOD活性(U/g 質(zhì)量)=10×抑制百分率÷(1-抑制百分率) ÷W×F =1578.177 U/g 質(zhì)量
銅鋅SOD活性(U/g 質(zhì)量)=10×抑制百分率÷(1-抑制百分率) ÷W×F =617.514 U/g 質(zhì)量
錳SOD活性(U/g 質(zhì)量)=1578.177-617.514 =960.663 U/g 質(zhì)量
4、 取1000萬細(xì)胞加入1mL提取液一進(jìn)行前處理并按測定步驟操作,,反應(yīng)體系中樣本量加倍,,用96孔板測得計算ΔA1測定= A1測定-A1對照=0.336-0.124=0.212,ΔA1空白=A1空白-A2空白=0.714-0.086=0.628,,總SOD抑制百分率=(ΔA空白-ΔA測定) ÷ΔA空白×100%=66.242%,;取0.2mL上清,加入0.3mL提取液二,,按照測定步驟操作,,用96孔板測得計算ΔA2測定= A2測定-A2對照=0.525-0.085=0.440,ΔA3空白=A3空白-A4空白=0.982-0.081=0.901,,銅鋅SOD抑制百分率=(ΔA空白-ΔA測定) ÷ΔA空白×100%=51.165%,,修改計算公式后按細(xì)胞數(shù)量計算酶活得:
總SOD活性(U/104 cell)=0.005×抑制百分率÷(1-抑制百分率) ×F =0.010 U/104 cell
銅鋅SOD活性(U/104 cell)=0.005×抑制百分率÷(1-抑制百分率) ×F =0.005 U/104 cell
錳SOD活性(U/104 cell)=0.010-0.005=0.005 U/104 cell
參考文獻(xiàn):
[1] Peskin A V, Winterbourn C C. A microtiter plate assay for superoxide dismutase using a water-soluble tetrazolium salt (WST-1) [J]. Clinica chimica acta, 2000, 293(1-2):157-166.
[2] Hou Z, Zhao L, Wang Y, et al. Purification and characterization of superoxide dismutases from sea buckthorn and chestnut rose[J]. Journal of food science, 2019, 84(4): 746-753.
[3] Cristiana, F. , Elena, A. and Nina, Z. Superoxide Dismutase: Therapeutic Targets in SOD Related Pathology[J]. Health, 2014, 06(10):975-988.
相關(guān)系列產(chǎn)品:
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超氧化物歧化酶分型活性檢測試劑盒 微量法 超氧化物歧化酶分型活性檢測試劑盒 微量法
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