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蛋白純化實(shí)驗(yàn)一些常見問(wèn)題總結(jié)

閱讀:1850      發(fā)布時(shí)間:2015-3-27
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蛋白純化過(guò)程中常遇見一些問(wèn)題,,這里整理了下幾個(gè)蛋白純化實(shí)驗(yàn)中的遇見的問(wèn)題及其解決方式。

1)我現(xiàn)在手頭有個(gè)融合蛋白,,純化的時(shí)候用助溶劑溶解后做了GST親和層析,,之后用蛋白酶切割后卻發(fā)現(xiàn)目的蛋白沒(méi)有活性。

請(qǐng)問(wèn)有哪些可能會(huì)出現(xiàn)這種原因?怎么解決?測(cè)過(guò)基因序列,,沒(méi)有問(wèn)題,。細(xì)胞破碎后,融合蛋白在沉淀里,,我用助溶劑提取后,,可以用GST做親和層析,但效率只有50~60%左右,。洗脫完融合蛋白不需要助溶劑,,但這樣的條件下切割完后目的蛋白會(huì)沉淀,我用0.5%CHAPS助溶可勉強(qiáng)溶解部分,,目的蛋白疏水性比較強(qiáng),。

既然是疏水性很強(qiáng)你可以加點(diǎn)甘油或者乙二醇降低極性,這樣溶解就會(huì)好得多,,此外你也直接加2%的PEG這樣也降低極性,,同時(shí)保護(hù)你的蛋白,你再做純化就可以了,,我以前遇到這樣的蛋白是用10%的乙醇加3-5%的PEG5000,,這樣的情況下蛋白還是活性回收率很高,我覺(jué)得那些表面活性劑能不用還是不用的好,,你失去活性你可以監(jiān)測(cè)一下提取,,純化,酶切到底哪里失去了活性,,這樣更容易解決你的問(wèn)題,。還有注意緩沖液PH值,,看看改變它對(duì)溶解度有沒(méi)有影響。蛋白有沉淀那你可以稍微把蛋白的濃度降低點(diǎn),,這也是個(gè)辦法,。

2)請(qǐng)問(wèn)有沒(méi)有合成過(guò)配體為FMN的親和膠?

親和的填料合成過(guò)20來(lái)種,你是希望用它來(lái)純化某種脫氫酶嗎,,我看FMN可偶聯(lián)的有限,,倒是FAD有活潑的氨基好偶聯(lián),何況它們幾乎是同一個(gè)輔酶,,你是不是考慮把FAD連上去,。當(dāng)然FMN的結(jié)構(gòu)上也有個(gè)仲胺,可以偶聯(lián)到帶長(zhǎng)手臂的環(huán)氧活化的填料上,,而溴化氰活化或別的活化的介質(zhì)都不大好,,因此我覺(jué)得這個(gè)沒(méi)有什么問(wèn)題。

此外如果是以FMN為輔酶的,,那我還可以建議你試試藍(lán)色瓊脂糖凝膠,,因?yàn)樗呐浠慕Y(jié)構(gòu)和FMN的三個(gè)環(huán)很相似,它能純化不少脫氫酶和激酶,。

我已經(jīng)給你發(fā)了相關(guān)一些偶聯(lián)的材料,,請(qǐng)查收,現(xiàn)在一般要自己合成親和填料,,有很多公司都提供活化好的介質(zhì),,自己偶聯(lián)就可以,其中比較常用的有溴化氰瓊脂糖凝膠,,環(huán)氧瓊脂糖凝膠,,氨基瓊脂糖凝膠,羧基瓊脂糖凝膠,,活化酯瓊脂糖凝膠,,以及巰基瓊脂糖凝膠等,但是如果是小分子的配基選擇有3-10碳作為手臂的活化介質(zhì)為好,,此外也曾經(jīng)有文獻(xiàn)報(bào)導(dǎo)固定輔酶時(shí),,偶聯(lián)位置不同,選擇性有差別,,因此你可以選擇自己適合的活化介質(zhì),。

不同的活化的介質(zhì)對(duì)偶聯(lián)的配基有不同的要求,所以要對(duì)自己的配基了解比較清楚就可以選擇合適的活化介質(zhì),。

我一般在合成的時(shí)候大多選擇環(huán)氧瓊脂糖凝膠,,它能應(yīng)用的范圍廣氨基巰基羥基都可以,而且合成的介質(zhì)剛性好,,非特異吸附少,,所以不需要特殊處理未反應(yīng)基團(tuán),。此外鍵合的鍵很穩(wěn)定,配基脫落少,。我覺(jué)得是不錯(cuò)的選擇,。

包涵體的蛋白復(fù)性做得不多,但是我記得有個(gè)哥們說(shuō)zui管用的辦法也是zui簡(jiǎn)單的方法,,他說(shuō)在復(fù)性的時(shí)候盡量別想什么太高難的技術(shù),,那些時(shí)髦但不一定好用,常用的有透析復(fù)性,,稀釋復(fù)性,,包括國(guó)外的專家也這么說(shuō)。我覺(jué)得有時(shí)候開始摸不出來(lái)未必就是方法不行,,關(guān)鍵要經(jīng)常改變條件,。

層析復(fù)性很時(shí)髦,但是真正能用的不很多,,我覺(jué)得蛋白這東西難就在于大多都不相同,所以關(guān)鍵要多看文獻(xiàn),,多琢磨自己蛋白的特性,,多嘗試。

3)Sephadex G-25(medium)柱脫鹽時(shí),,鹽濃度太高對(duì)柱效有影響嗎?若有,,一般對(duì)鹽濃度限度如何?

大家別客氣,除鹽對(duì)于濃度應(yīng)該也是有一定的限制的,,同樣的樣品鹽濃度高的自然要比濃度低的要在柱子上走的峰要寬些,,相對(duì)需要的柱子的分辨率也要高點(diǎn),但是在正常的范圍如1-2M應(yīng)該影響不大,,不過(guò)要除得很干凈還是盡量少上點(diǎn)樣品,,我覺(jué)得上樣的體積畢竟比濃度的影響更大。

4)我的蛋白17kd左右,,能跟肝素親和,,一般用離子交換和親和層析純化,現(xiàn)在我用聚乙二醇修飾它,,分子量增加5000左右,,修飾率不可能達(dá)到100%,請(qǐng)問(wèn)修飾后能用什么純化方法可以把修飾的和未經(jīng)修飾的分開?(當(dāng)然修飾后還殘留有聚乙二醇,,這個(gè)小分子也要除掉)

他們大多用凝膠過(guò)濾,,我覺(jué)得這也不錯(cuò)的做法,畢竟PEG是鏈狀的分子,,在柱子上和普通蛋白行為不一樣,,修飾度越高那么出峰也越后,,因此你的蛋白選擇sephadex G50試試,它的范圍在1000-30000,,應(yīng)該是不錯(cuò)的選擇,。此外PEG是個(gè)疏水性的鏈,修飾后的蛋白疏水性增強(qiáng),,修飾度越高,,疏水性越強(qiáng),可以用這個(gè)原理分離,。離子交換也可以選擇,,因?yàn)橥瑯拥览恚揎椂仍礁?,電荷被屏蔽也越多,,電荷也越少,因此?yīng)該修飾度越高越先出,。親和也離子交換一樣的道理,,你可以試試,你手頭的親和能不能分開,,你在這幾個(gè)方法里選擇看哪個(gè)更經(jīng)濟(jì)好用就可以,。

5)我是個(gè)新手,謝謝樓主給我解決了許多難題,。

我有個(gè)問(wèn)題困繞很久,,從細(xì)菌中提取酶,好象用常規(guī)的方法(超聲波破壁,,緩沖液提取),,總是拿不到我要的蛋白。是不是這種蛋白也是疏歲水性較強(qiáng),,需要加助溶劑才能提取出來(lái)?另外,,我是不是也可以加點(diǎn)甘油或者PEG來(lái)提取?

其實(shí)這個(gè)問(wèn)題我覺(jué)得是這樣的,既然你是提取那肯定是有沉淀和上清,,你的目標(biāo)蛋白的分子量你是應(yīng)該知道的,,那么跑電泳先看它到底是在上清還是沉淀里,剩下的問(wèn)題你再解決如何提取,。

對(duì)于不同的酶要看酶穩(wěn)定如何,,你可以用不同的PH去提取,我曾經(jīng)提取一個(gè)酶用水就是提取不出來(lái),,需要用鹽才能提取出來(lái),,多試試,設(shè)計(jì)個(gè)方案,,這樣才能解決問(wèn)題,,所以不一定加甘油就管用,,你還得注意破碎本身會(huì)不會(huì)有問(wèn)題,倒回去做做也許能找到真正的原因,。有什么問(wèn)題繼續(xù)探討,。

6)HPLC是用來(lái)分析檢測(cè)or分離純化?

如果可以用來(lái)純化,上樣量那么小有什么意義呢?

如果是用來(lái)分析檢測(cè),,怎樣指導(dǎo)以后的分離純化工作呢?

HPLC既可以做分析也可以做制備,,純化上樣量小,這樣分離效果好,,就可能得到很純的物質(zhì),,同時(shí)配合質(zhì)譜等就何以得到很多單一蛋白的特性包括序列等,這些純度高的組分是用一般的純化方法做不到的,。HPLC重現(xiàn)性好,,定量準(zhǔn)確,所以也可以用于定量和定性,,是分析中*的工具,。

分析出來(lái)后如果這個(gè)物質(zhì)很穩(wěn)定,直接線性放大就可以做大規(guī)模的制備,,因此摸好了分析的條件也就相應(yīng)有了制備的條件,。

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