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（一）原理
凡鹽析所獲得的粗制蛋白質(zhì)（鹽析得到的IgG）中均含有硫酸銨等鹽類,，這類將影響以后的純化，所以純化前均應(yīng)除去,，此過程稱為“脫鹽”（desalthing）,。脫鹽常用透析法和凝膠過濾法,，這兩種方法各有利弊。前者的優(yōu)點是透析后析品終體積較小,，但所需時間較長,，且鹽不易除盡,；凝膠過濾法則能將鹽除盡，所需時間也短,，但其凝膠過濾后樣品體積較大,。所以，要根據(jù)具體情況選擇使用,。前實驗中樣品體積較小，凝膠達(dá)濾后樣品體積不會太增加,，所以選用凝膠過濾法,。

（二）試劑與器材
（1）Sephadex G-25,。
（2）0.0175mol/L，pH6.7磷酸鹽緩沖液,。
（3）奈氏（Nessler）試劑：于500ml錐形瓶內(nèi)加入碘化鉀150g，碘110g,，汞150g及蒸餾水100ml,。用力振蕩7～15min,，至碘的棕色開始轉(zhuǎn)變時，混合液溫度升高,，將此瓶浸于冷水內(nèi)繼續(xù)振蕩，直到棕色的碘轉(zhuǎn)變?yōu)閹ЬG色的碘化鉀汞液為止,。將上清液傾入2000ml量筒內(nèi),，加蒸餾水至2000ml,，混勻備用,。
（4）20%（W/V）磺基水楊酸溶液。
（5）1.5cm×20cm層析柱,。
（6）黑、白比色磁盤,。

（三）操作
（1）取層析柱1支（1.5cm×20cm），垂直固定在支架上,，關(guān)閉下端出口。將已經(jīng)溶脹好的Sephadex G-25中的水傾倒出去,，加入2倍體積的0.0175mol/L,，pH6.7磷酸鹽緩沖液，并攪拌成懸浮液,，然后灌注入柱，打開柱的下端出口,，繼續(xù)加入攪勻的Sephadex G-25，使凝膠自然沉降高度到17cm左右,，關(guān)閉出口。待凝膠柱形成后,，在洗脫瓶中加入0.0175mol/L，pH6.7磷酸鹽緩沖液以3倍柱體積的磷酸鹽緩沖流過凝膠柱,，以平衡凝膠。
（2）凝膠平衡后,，用皮頭滴管除去凝膠柱面的溶液，將鹽析所得全部IgG樣品加到凝膠柱表面,，打開柱下口，控制流速讓IgG樣品溶液慢慢浸入凝膠內(nèi),。凝膠柱面上加一層的0.0175mol/L,，pH6.7磷酸鹽緩沖液,，并用此緩沖液洗脫，控制流速為0.5ml/min左右,。用試管收集洗脫液，每管10滴,。
（3）在開始收集洗脫液的同時檢查蛋白質(zhì)是否已開始流出,。為此,，由每支收集管中取出1滴溶液置于黑色比色磁盤中，加入1滴20%磺基水楊酸，若呈現(xiàn)白色絮狀沉淀即證明已有蛋白質(zhì)出現(xiàn),，直到檢查不出白色沉淀時,，停止收集洗脫液,。
（4）由經(jīng)檢查含有蛋白質(zhì)的每管中，取1滴溶液,，放置在白色比色盤孔中,，加入1滴奈氏試劑,，若呈現(xiàn)棕黃色沉淀說明它含有硫酸銨。合并檢查后不含硫酸銨的各管收集液,，即為“脫鹽”后的IgG。

注意：在檢測時,，用皮頭滴管吸取管中溶液后應(yīng)及時洗凈,，再吸取下一管,，以免造成相互污染假象。