固體樣本處理方法：
        固體樣本處理原則：稱取1g的固體樣本,，用9g的合適緩沖液溶解,，分泌蛋白可以直接離心取上清檢測,，細(xì)胞內(nèi)的蛋白,，要先收集細(xì)胞,，再用合適方法破碎,，離心取上清測試。

1,、組織標(biāo)本：切割標(biāo)本后,，稱取1g組織，加入9g的pH7.2-7.4左右的PBS,，用手工或勻漿器將標(biāo)本勻漿充分,。離心20分鐘左右（2000-3000轉(zhuǎn)/分），仔細(xì)收集上清,。分裝一份待檢測,，其余冷凍備用，保存過程中如有沉淀形成,，應(yīng)再次離心,。對于植物組織，不好勻漿的話,，就用液氮研磨,，將植物組織放在研缽中，加入適量液氮,，充分研磨,。

2、細(xì)胞內(nèi)蛋白樣本：
許多待測蛋白不是分泌蛋白,，而是存在于細(xì)胞內(nèi)的蛋白,，這個時候，要先收集細(xì)胞,，洗滌干凈,，再破碎細(xì)胞,，離心取上清。
（1）培養(yǎng)的細(xì)胞
A,、動物細(xì)胞：用PH7.2-7.4的PBS稀釋細(xì)胞懸液,，使細(xì)胞濃度達到100萬/ml左右。通過反復(fù)凍融（如果反復(fù)凍融,，破碎效果不好,，就采用超聲波破碎），以使細(xì)胞破壞并放出細(xì)胞內(nèi)成份,。2-8℃條件離心20分鐘左右（2000-3000轉(zhuǎn)/分）,，仔細(xì)收集上清，保存過程中如有沉淀形成,，應(yīng)再次離心,。
B、植物細(xì)胞：用PH7.2-7.4的PBS稀釋細(xì)胞懸液,，使細(xì)胞濃度達到100萬/ml左右,，置于冰盒上，用超聲破碎儀,，設(shè)置破碎2s,，冷卻30s的方式，充分破碎細(xì)胞,，以使細(xì)胞破壞并放出細(xì)胞內(nèi)成份,。2-8℃條件離心20分鐘左右（2000-3000轉(zhuǎn)/分），仔細(xì)收集上清,，保存過程中如有沉淀形成,，應(yīng)再次離心。
（2）組織的細(xì)胞
切割標(biāo)本后,，稱取1g組織,，加入9g的pH7.2-7.4左右的PBS，用手工或勻漿器將標(biāo)本勻漿充分,。2-8℃條件離心20分鐘左右（2000-3000轉(zhuǎn)/分）,，去除上清，再用pH7.2-7.4左右的PBS小心洗滌沉淀的細(xì)胞三遍,。再用上述的細(xì)胞破碎方法破碎細(xì)胞,。

3、土壤：稱取1g土壤,，加入9g的pH7.2-7.4左右的PBS,，用手工將標(biāo)本充分混勻。2-8℃條件離心20分鐘左右（2000-3000轉(zhuǎn)/分），仔細(xì)收集上清,。分裝一份待檢測,，其余冷凍備用，保存過程中如有沉淀形成,，應(yīng)再次離心,。如果是測分泌蛋白，直接取上清檢測,，測試細(xì)胞內(nèi)蛋白,，要破碎細(xì)胞。

4,、咽拭子：加入2g的pH7.2-7.4左右的PBS,，溶解咽拭子頭部，搖勻,，用鑷子取出咽拭子并擠干液體，2-8℃條件離心20分鐘左右（2000-3000轉(zhuǎn)/分）,，仔細(xì)收集上清,。分裝一份待檢測，其余冷凍備用,，保存過程中如有沉淀形成,，應(yīng)再次離心。如果是測分泌蛋白,，直接取上清檢測,，測試細(xì)胞內(nèi)蛋白，要破碎細(xì)胞,。

5. 植物標(biāo)本的采集及保存
1,、 稱取0.1g（誤差±3%以內(nèi)）新鮮植物組織樣本，在液氮中充分研磨,；
2,、 加入1ml的提取液（80%甲醇）, 置于-20度過夜；
3,、 于4度,，8000rpm，離心1小時,，取上清,；
4、 上清液過C-18固相萃取柱,。具體步驟是： 80%甲醇（1ml）平衡柱→上樣→收集樣品→移開樣品后用100%甲醇（5ml）洗柱→100%乙m（5ml）洗柱→100%甲醇（5ml）洗柱→循環(huán),。過柱后的樣本真空干燥或氮氣吹干，保存?zhèn)溆茫?br style="box-sizing: border-box; margin: 0px; padding: 0px;"/>5、 上樣前加入pH7.4 PBS緩沖液（1ml定容）,?；靹蚝笫覝胤胖?0分鐘，然后4度離心（8000rpm,，15分鐘）,，取上清并暫時保存于4度待用。

樣本收集注意事項
1,、不能檢測含NaN3的樣品,，因NaN3抑制辣根過氧化物酶的（HRP）活性。
2,、標(biāo)本采集后盡快進行實驗,，若不能馬上進行試驗，可將標(biāo)本放于-20℃保存,，但應(yīng)避免反復(fù)凍融,。
3、我們羅列的是通用的樣本處理方法,，無法涵蓋各種樣本,，對于一些特殊樣本，建議實驗人員多參考已發(fā)表的文獻,，自行設(shè)計合理的樣本處理方法,。