特點(diǎn)

天然瓊脂（agar）是一種多聚糖,，主要由瓊脂糖（agarose,，約占80%）及瓊脂膠（agaropectin）組成,。瓊脂糖是由半乳糖及其衍生物構(gòu)成的中性物質(zhì),，不帶電荷,，而瓊脂膠是一種含硫酸根和羧基的強(qiáng)酸性多糖,，由于這些基團(tuán)帶有電荷，在電場(chǎng)作用下能產(chǎn)生較強(qiáng)的電滲現(xiàn)象,，加之硫酸根可與某些蛋白質(zhì)作用而影響電泳速度及分離效果,。因此，多用瓊脂糖為電泳支持物進(jìn)行平板電泳,，其優(yōu)點(diǎn)如下,。

（1）瓊脂糖凝膠電泳操作簡(jiǎn)單，電泳速度快,，樣品不需事先處理就可以進(jìn)行電泳,。

（2）瓊脂糖凝膠結(jié)構(gòu)均勻，含水量大（約占98%~99%）,，近似自由電泳,，樣品擴(kuò)散較自由電流，對(duì)樣品吸附極微,，因此電泳圖譜清晰,，分辨率高，重復(fù)性好,。

（3）瓊脂糖透明無紫外吸收,，電泳過程和結(jié)果可直接用紫外光燈檢測(cè)及定量測(cè)定。

（4）電泳后區(qū)帶易染色,，樣品極易洗脫,，便于定量測(cè)定。制成干膜可長(zhǎng)期保存,。

常用瓊脂糖作為電泳支持物,，分離蛋白質(zhì)和同工酶,。將瓊脂糖電泳與免疫化學(xué)相結(jié)合，發(fā)展成免疫電泳技術(shù),，能鑒別其他方法不能鑒別的復(fù)雜體系,，由于建立了超微量技術(shù)，0.1ug蛋白質(zhì)就可檢出,。

瓊脂糖凝膠電泳也常用于分離,、鑒定核酸，如DNA鑒定,，DNA限制性內(nèi)切核酸酶圖譜制作等,。由于這種方法操作方便，設(shè)備簡(jiǎn)單,，需樣品量少,，分辨能力高，已成為基因工程研究中常用實(shí)驗(yàn)方法之一,。

DNA電泳

瓊脂糖凝膠電泳對(duì)核酸的分離作用主要是依據(jù)它們的相對(duì)分子量質(zhì)量及分子構(gòu)型,，同時(shí)與凝膠的濃度也有密切關(guān)系。

1．核酸分子大小與瓊脂糖濃度的關(guān)系

（1）DNA分子的大小 在凝膠中,，DNA片段遷移距離（遷移率）與堿基對(duì)的對(duì)數(shù)成反比,，因此通過已知大小的標(biāo)準(zhǔn)物移動(dòng)的距離與未知片段的移動(dòng)距離時(shí)行比較，便可測(cè)出未知片段的大小,。但是當(dāng)DNA分子大小超過20kb時(shí),，普通瓊脂糖凝膠就很難將它們分開。此時(shí)電泳的遷移率不再依賴于分子大小,，因此,，就用瓊脂糖凝膠電泳分離DNA時(shí)，分子大小不宜超過此值,。

（2）瓊脂脂糖的濃度 如下表所示,，不同大小的DNA需要用不同濃度的瓊脂糖凝膠進(jìn)行電泳分離。

表 瓊脂糖濃度與DNA分離范圍

瓊脂糖濃度 /% 0.3 0.6 0.7 0.9 1.2 1.5 2.0

線狀DNA大小/kb60-520-110-0.87-0.56-0.44-0.23-0.1

2．核酸構(gòu)型與瓊脂糖凝膠電泳分離的關(guān)系

不同構(gòu)型DNA的移動(dòng)速度次序?yàn)椋汗﹥r(jià)閉環(huán) DNA（covalently closed circular,，cccDNA）>直線DNA>開環(huán)的雙鏈環(huán)狀DNA,。當(dāng)瓊脂糖濃度太高時(shí)，環(huán)狀DNA（一般為球形）不能進(jìn)入膠中,，相對(duì)遷移率為0（Rm=0）,，而同等大小的直線雙鏈DNA（剛性棒狀）則可以長(zhǎng)軸方向前進(jìn)（Rm>0），由此可見,，這三種構(gòu)型的相對(duì)遷移率主要取決于凝膠濃度,，但同時(shí)，也受到電流強(qiáng)度,、緩沖液離子強(qiáng)度等的影響,。

3．電泳方法

（1）凝膠類型

用于分離核酸的瓊脂糖凝膠電泳可分為垂直型及水平型（平板型）,。水平型電泳時(shí),，凝膠板完/全浸泡在電極緩沖液下1-2mm,，故又稱為潛水式。更多用的是后者,，因?yàn)樗颇z和加樣比較方便,，電泳槽簡(jiǎn)單，易于制作,，又可以根據(jù)需要制備不同規(guī)格的凝膠板,，節(jié)約凝膠，因而較受歡迎,。

（2）緩沖液系統(tǒng)

缺少離子時(shí),，電流太小，DNA遷移慢,；相反,，高離子強(qiáng)度的緩沖液由于電流太大會(huì)大量產(chǎn)熱，嚴(yán)重時(shí),，會(huì)造成膠熔化和DNA的變性,。

常用的電泳緩沖液有EDTA（pH8.0）和Tris-乙酸（TAE），Tris-硼酸（TBE）或Tris-磷酸（TPE）等,，濃度約為50mmol/L(pH7.5~7.8),。電泳緩沖液一般都配制成濃的貯備液，臨用時(shí)稀釋到所需倍數(shù),。

TAE緩沖能力較低,，后兩者有足夠高的緩沖能力，因此更常用,。TBE濃溶液長(zhǎng)期貯存會(huì)出現(xiàn)沉淀,，為避免此缺點(diǎn)，室溫下貯存5×溶液,，用時(shí)稀釋10倍0.5×工作溶液即能提供足夠緩沖能力,。

（3）凝膠的制備

以稀釋的電極緩沖液為溶劑，用沸水浴或微波爐配制一定濃度的溶膠,，灌入水平膠框或垂直膠膜,，插入梳子，自然冷卻,。

（4）樣品配制與加樣

DNA 樣品用適量Tris-EDTA緩沖液溶解,，緩沖液內(nèi)含有0.25%溴酚藍(lán)或其他指示染料，含有10%-15%蔗糖或5%~10%甘油,，以增加其比重,，使樣品集中,。為避免蔗糖或甘油可能使電泳結(jié)果產(chǎn)生U形條帶，可改用2.5%Ficoll（聚蔗糖）代替蔗糖或甘油,。

（5）電泳

瓊脂糖凝膠分離大分子DNA實(shí)驗(yàn)條件的研究結(jié)果表明,，在低濃度、低電壓下,，分離效果較好,。在低電壓條件下，線性DNA分子的電泳遷移率與所用的電壓呈正比,。但是,，在電場(chǎng)強(qiáng)度增加時(shí)，較大的DNA片段遷移率的增加相對(duì)較小,。因此隨著電壓的增高,，電泳分辨率反而下降，為了獲得電泳分離DNA片段的最大分辨率,，電場(chǎng)強(qiáng)度不宜高于5V/cm,。

電泳系統(tǒng)的溫度對(duì)于DNA在瓊脂糖凝膠中的電泳行為沒有顯著的影響。通常在室溫下進(jìn)行電泳,，只有當(dāng)凝膠濃度低于0.5%時(shí),，為增加凝膠硬度，可在4℃進(jìn)行電泳,。

（6）染色和拍照

常用熒光染料溴乙錠（EB）染色,，在紫外光下觀察DNA條帶，用紫外分析儀拍照,，或用凝膠成像系統(tǒng)輸出照片,，并進(jìn)行有關(guān)的數(shù)據(jù)分析。

轉(zhuǎn)移電泳

生物化學(xué)與分子生物學(xué)的研究工作經(jīng)常需要對(duì)電泳分離后的DNA進(jìn)行分子雜交,，但瓊脂糖不適合于進(jìn)行雜交操作,，1975年，Southern創(chuàng)造了將DNA區(qū)帶原位轉(zhuǎn)移到硝酸基纖維素膜（NC膜）上,，再進(jìn)行雜交的方法,，被稱為Southern印跡法。隨后,，Alwine等將類似方法用于RNA印跡,，被戲稱為Northern印跡，1979年Towbin等設(shè)計(jì)了將蛋白質(zhì)從凝膠轉(zhuǎn)移到硝酸纖維素膜的裝置,，將蛋白質(zhì)轉(zhuǎn)移到膜上,，再與相應(yīng)的抗體等配體反應(yīng)，被戲稱為Western印跡，這種裝置將膜和凝膠,、濾紙等制成夾心餅干狀,，用低電壓高電流電泳完成轉(zhuǎn)移。1982年Reinhart等用電轉(zhuǎn)移法將等電聚焦后的蛋白質(zhì)區(qū)帶從凝膠轉(zhuǎn)移到特定膜上,，稱Eastern印跡,。

國(guó)內(nèi)外有多種核酸、蛋白質(zhì)印跡轉(zhuǎn)移的電泳裝置出售,，使印跡轉(zhuǎn)移速度快效率高,、重復(fù)性好,，應(yīng)用更加廣泛,。聚丙烯酰胺凝膠也可用于印跡轉(zhuǎn)移電泳，但轉(zhuǎn)移蛋白質(zhì)時(shí),，凝膠中不可含有SDS,、尿素等變性劑。用于轉(zhuǎn)移電泳的支持膜亦有多種選擇,，近些年用尼龍膜較多,，因?yàn)槟猃埬C(jī)械性能好，烘烤不變脆,，使用時(shí)比硝酸纖維素膜更方便,。

進(jìn)行印跡轉(zhuǎn)移電泳時(shí)，要注意緩沖液的離子強(qiáng)度要低,，pH要遠(yuǎn)離pI,，使蛋白質(zhì)帶有較多電荷，一般用穩(wěn)定性較好的Tris-緩沖體系,。還要注意凝膠與支持膜之間有能有氣泡,。適當(dāng)提高電壓或電流可以提高轉(zhuǎn)移速度，但亦會(huì)增加熱效應(yīng),，故電壓或電流不可過高,。

凝膠電泳

一般瓊脂糖凝膠電泳只能分離小于20kb的DNA。這是因?yàn)樵诃傊悄z中,，DNA分子的有效直徑超過凝膠孔徑時(shí),，在電場(chǎng)作用下，迫使DNA變形擠過篩孔,，而沿著泳動(dòng)方向伸直,，因而分子大小對(duì)遷移率影響不大。如此時(shí)改變電場(chǎng)方向,，則DNA分子必須改變其構(gòu)象,，沿新的泳動(dòng)方面伸直，而轉(zhuǎn)向時(shí)間與DNA分子大小關(guān)系極為密切。1983年Schwartz等人根據(jù)DNA分子/彈性弛豫時(shí)間（外推為0的滯留時(shí)間）與DNA分子大小有關(guān)的特性,，設(shè)計(jì)了脈沖電場(chǎng)梯度凝膠,，交替采用兩個(gè)垂直方向的不均勻電場(chǎng)，使DNA分子在凝膠中不斷改變方向,，從而使DNA按分子大小分開,。后來Carle等改進(jìn)了電泳技術(shù)，并發(fā)現(xiàn)周期性的反轉(zhuǎn)換電場(chǎng)(periodic inversion of the electric field)亦能使大分子DNA通過電泳分開,。電泳系統(tǒng)是由一水平式電泳槽和兩組獨(dú)立,、彼此垂直的電極組成，一組電極負(fù)極為N,，正極為S,；另一組負(fù)極為W，正極為E,。一塊正方形瓊脂糖凝膠板（10cm*10cm或20cm*20cm）呈45度放中央,。電場(chǎng)在N-S和W-E之間交替建立。電場(chǎng)交替改變的時(shí)間長(zhǎng)短與欲分離的DNA分子大小有關(guān),。

電泳時(shí),，DNA分子處在連續(xù)間隔交替的電場(chǎng)中。首先向S極移動(dòng),，然后改向E極,。在每次電場(chǎng)方向改變時(shí)，DNA分子就要有一定的時(shí)間松弛,，改變形狀和遷移方向,。只有當(dāng)DNA分子達(dá)到一定構(gòu)型后，才能繼續(xù)前進(jìn),。DNA分子凈移動(dòng)方向與加樣線垂直,，使樣品中各組分沿同一泳道形成各自的區(qū)帶。交變脈沖電泳可有效分離數(shù)百萬堿基對(duì)的大分子DNA,。較新式的儀器電極間的角度和脈沖時(shí)間均可調(diào),，使用更加方便。

此外,，瓊脂糖平板常用于免疫擴(kuò)散技術(shù)的電泳技術(shù)相結(jié)合的多種免疫電泳,。