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“XXXX”動物外周血白細胞分離液實驗方法
(細胞培養(yǎng)及分子生物學(xué))
【產(chǎn)品規(guī)格】
200ml/Kit
【產(chǎn)品組成】
為方便廣大用戶使用,,試劑內(nèi)容如下:
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| 名稱 | 產(chǎn)品編號 |
| 規(guī)格 |
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| A | XXXX 動物外周血白細胞分離液 |
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| 200ml |
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| B | 樣本稀釋液(贈品) | 2010C1119 |
| 200ml |
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| C | 清洗液(贈品) |
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| 2010X1118 |
| 200ml |
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| D | 紅細胞裂解液(贈品) | NH4CL2009 |
| 100ml |
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| E | 說明書 |
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| 1 份 |
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【實驗前準(zhǔn)備】 |
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A. 適用儀器 |
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| zui大離心力可達 1200g 的水平轉(zhuǎn)子離心機 |
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B. 耗材 |
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| 產(chǎn)品名稱 |
| 產(chǎn)品貨號 |
| 產(chǎn)地 |
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| 15ml 離心管散裝 |
| 339650 |
| 美國 NUNC |
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| 15ml 離心管架裝 |
| 339651 |
| 美國 NUNC |
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| 50ml 離心管散裝 |
| 339652 |
| 美國 NUNC |
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| 50ml 離心管架裝 |
| 339653 |
| 美國 NUNC |
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無菌膠頭滴管或塑料滴管
【檢驗方法】
全過程樣本,、試劑及實驗環(huán)境均需在 20±2℃的條件下進行。
首先取抗凝血,,根據(jù)樣本量大小,,分以下兩種情況:
情況 A:血液樣本量小于 5ml 時,,實驗方法如下:
1.取一支 15ml 離心管,,先加入 5ml 分離液
2.用吸管小心吸取血液樣本加于分離液液面上,400-500g,,離心 20-30min(注:如改變血液樣本及分離液用量,,需相應(yīng)調(diào)整離心力及離心時間,具體離心條件需客戶自行摸索,,以達到*分離效果,。)
3.離心后用吸管小心吸取所有環(huán)狀乳白色細胞層(一層或兩層),加入 10 ml 清洗液(產(chǎn)品編號:2010X1118),,混勻細胞,。250g,離心 10min,。重復(fù)洗滌 2-3 次,,即得所需白細胞。
4.如有紅細胞殘留請使用紅細胞裂解液(產(chǎn)品編號:NH4CL2009)裂解紅細胞,,具體操作方法詳見“紅細胞裂解液使用說明”,。
情況 B:血液樣本量大于等于 5ml 時,實驗方法如下:
1.取一支適當(dāng)?shù)碾x心管,,先加入與樣本等量的分離液,。
2.將血液樣本小心加于分離液之液面上,450-650g(zui大離心力可至 1000g),,離心20-30min,。(注:根據(jù)血液樣本量確定離心條件,血液量越多,,離心力越大,,離心時間越長,具體離心條件需客戶自行摸索,,以達到*分離效果,。加入血液樣本后,樣本及分離液總體積不得超過離心管總體積的三分之二),。
3.剩余步驟同“情況 A”中步驟 3 與步驟 4,。
【注意事項】
1.全過程樣本,、試劑及實驗環(huán)境均需在 20±2℃的條件下進行。為獲得*的實驗結(jié)果,,在取血 2h 內(nèi)進行實驗,,血液存放時間越長,細胞分離效果越差,。血液放置超過 6h 后分離效果更差甚至不能達到分離目的,。
2.本實驗不要使用高聚合材質(zhì)(如聚苯乙烯)的塑料制品,應(yīng)使用無靜電,、低靜電離心管及未經(jīng)堿處理過后的玻璃制品,,因為靜電作用將導(dǎo)致細胞貼壁、堿處理的玻璃表面會變成毛面,,影響細胞分離效果,。
3.分離液用量大于稀釋后血液樣本時,分離效果更佳,。
4.當(dāng)血液樣本粘度過高需稀釋時,,*稀釋方法:將血液與樣本稀釋液(產(chǎn)品編號:2010C1119)1:1 稀釋混勻備用。注:不當(dāng)?shù)南♂尫椒〞档图毎寐始盎钚?。如血液樣本?jīng)過稀釋則分離過程中需適當(dāng)降低離心力和離心時間,。
5.如實驗后細胞得率或活性過低,請?zhí)旖驗笠詫で髱椭?,具體詳見下方生產(chǎn)企業(yè)信息,。
【儲存條件及有效期】
18-25℃保存,有效期 2 年,。本品易感染細菌,,需無菌條件操作。無菌條件下操作,,啟封后置常溫保存,。如 4℃保存,本分離液易出現(xiàn)白色結(jié)晶,,影響分離效果,。
【參考值(參考范圍)】
本實驗白細胞提取率及純度大于 80%。
下表為成年人外周血中各種細胞的數(shù)量及比例,,用戶可適當(dāng)進行參考,。
| 紅細胞 |
| 白細胞 |
| 血小板 |
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| (4.0-10.0)×109 |
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含量(個/L) | (4.0-5.5)×1012 | 中性粒細胞 | 淋巴細胞 | 單核細胞 | (1.0-3.0)×1011 |
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| 50%-70% | 20%-40% | 3%-8% |
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【相關(guān)實驗技術(shù)方案】
1.所獲得白細胞的培養(yǎng)技術(shù)。
2.所獲得白細胞的核酸提取技術(shù),。
3.所獲得白細胞的鑒定方法A.流式細胞技術(shù)B.免疫組化技術(shù)C.原位雜交技術(shù)D.PCR 技術(shù)
【可能存在的問題及解決方法】
1.由于血液粘度,、細胞密度等差異可能造成的問題及解決方案如下表所示:
出現(xiàn)情況 | 出現(xiàn)原因 | 建議解決方案 |
離心后目的細胞存在于血漿層或稀釋液層 | 轉(zhuǎn)速過小或離心時間過短 | 適當(dāng)增減轉(zhuǎn)速 |
離心后目的細胞存在于分離液中 | 轉(zhuǎn)速過大或離心時間過長 | |
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離心后白環(huán)層彌散 | 細胞密度過大 | 調(diào)整細胞密度 |
離心后白環(huán)層太淺或看不見 | 細胞密度過小 | |
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2.本分離液分離細胞的原理為密度梯度離心,其密度與溫度、大氣壓等密切相關(guān),。不同地區(qū)客戶可根據(jù)當(dāng)?shù)厍闆r對離心條件進行適當(dāng)調(diào)整,。建議對離心條件進行調(diào)整時,恒定離心時間,,對離心轉(zhuǎn)速進行調(diào)整,。
3.本分離液依照標(biāo)準(zhǔn),全部使用藥用級原料,,性能指標(biāo)與國產(chǎn)同類產(chǎn)品略有不同,,可能出現(xiàn)紅細胞沉降不*的情況,可以適當(dāng)加大離心轉(zhuǎn)速,。
注:在對離心條件進行調(diào)整時,,離心轉(zhuǎn)速的加減以 50-100g 為基數(shù),直至達到*分離效果,,
離心力zui小不得小于 400g,,zui大不得大于 1200g,。離心時間以 20-30min 為準(zhǔn),。
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